JP2007121320A - Flow-through assay method, kit, and system - Google Patents

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Toshinori Sato
俊則 佐藤
Kazuyuki Takizawa
和幸 瀧澤
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Denka Seiken Co Ltd
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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a flow-through assay method and a flow-through assay system which are operated very easily and speedily. <P>SOLUTION: Colored particles, bonded to a first receptor to an analyte and a sheet-like carrier bonded to a second receptor to the analyte, are used to form a complex of the colored particles, the first receptor, the analyte, and the second receptor in the surface of the sheet-like carrier. The complex is detected in the flow-through assay method. <P>COPYRIGHT: (C)2007,JPO&INPIT

Description

本発明は免疫測定法の一種であるフロースルーアッセイ方法及びフロースルーアッセイ装置に関する。   The present invention relates to a flow-through assay method and a flow-through assay apparatus which are a kind of immunoassay.

迅速免疫測定法の一種であるメンブランを用いたフロースルーアッセイ方法において、検体を滴下後、酵素で標識したレセプターを滴下し、リガンド(分析対象物)を検出又は測定する方法が知られている(特許文献1参照)。しかしながらこの方法は、酵素で標識したレセプターを滴下する工程、未反応の酵素を除去する工程、更にその酵素に対応する基質を反応させる工程など、多くの工程が必要であり、時間もかかるものであった。
このような酵素基質反応を行わないフロースルーアッセイ方法としては、Alice R. Arredondoらにより、IgG抗体が結合したブルーラテックスルビーズ、IgM抗体及び検体を混合後、フィルター濾過する方法が報告されている(非特許文献1参照)。しかしこの方法は、3種類の物質を混合して、その後フィルター濾過する操作が必要であるため依然として操作が煩雑であり、臨床診断の場で用いるには不便であった。
In a flow-through assay method using a membrane which is a kind of rapid immunoassay, a method is known in which a ligand (analyte) is detected or measured by dropping a sample and then dropping a receptor labeled with an enzyme ( Patent Document 1). However, this method requires many steps, such as a step of dropping a receptor labeled with an enzyme, a step of removing an unreacted enzyme, and a step of reacting a substrate corresponding to the enzyme. there were.
As a flow-through assay method in which such enzyme substrate reaction is not performed, Alice R. Arredondo et al. Reported a method of filtering blue latex beads, IgM antibody, and specimen bound with IgG antibody, followed by filtration ( Non-patent document 1). However, since this method requires an operation of mixing three kinds of substances and then performing filtration with a filter, the operation is still complicated and inconvenient to use in a clinical diagnosis.

特公平7−34016号公報Japanese Patent Publication No. 7-34016 Biotechnology Letters, 22: 547-550, 2000Biotechnology Letters, 22: 547-550, 2000

本発明は検査を行うための操作が極めて容易であり、より迅速に行えるフロースルーアッセイ方法、キット及び装置を提供することを目的とする。   It is an object of the present invention to provide a flow-through assay method, kit and apparatus that are extremely easy to operate for testing and can be performed more quickly.

上記課題は、分析対象物を含む検体液を、前記分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子と接触させ、次いで前記分析対象物に対する第二のレセプターが結合したシート状担体を通過させることにより、前記シート状担体表面に、着色粒子/第一レセプター/分析対象物/第二レセプター複合体を形成し、これを検出することを特徴とするフロースルーアッセイ方法により解決される。
上記課題はまた、上記シート状担体表面より上部に多孔質性パッドが配置されており、その多孔質性パッドの表面または中に上記着色粒子が含有されていることを特徴とする上記フロースルーアッセイ方法により解決される。
The problem is that the sample liquid containing the analyte is brought into contact with the colored particles bound to the first receptor for the analyte, and then passed through the sheet-like carrier bound to the second receptor for the analyte. Thus, a colored particle / first receptor / analyte / second receptor complex is formed on the surface of the sheet-like carrier and detected, which is solved by a flow-through assay method.
The above-mentioned problem is also characterized in that a porous pad is disposed above the surface of the sheet-like carrier, and the colored particles are contained in or on the surface of the porous pad. Solved by the method.

また、更に上記課題は、分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子及び前記分析対象物に対する第二のレセプターが結合したシート状担体を含む、フロースルーアッセイ用キット、及び多孔質性パッドをさらに含み、該多孔質性パッドの表面または中に該着色粒子が含有されている前記キット、並びに分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子を表面または中に含有する多孔質性パッド、及び前記分析対象物に対する第二のレセプターが結合したシート状担体を含む、フロースルーアッセイ装置により解決される。   Furthermore, the above-described problems further include a flow-through assay kit and a porous pad comprising colored particles bound to the first receptor for the analyte and a sheet-like carrier bound to the second receptor for the analyte. The kit containing the colored particles on or in the surface of the porous pad, and the porous pad containing the colored particles bound to the first receptor for the analyte in or on the surface. And a flow-through assay device comprising a sheet carrier to which a second receptor for the analyte is bound.

本発明はまた、該着色粒子が金コロイドまたはラテックスである、上記方法、キット及び装置に関する。本発明はまた、該シート状担体が膜またはフィルターである、上記方法、キット及び装置に関する。本発明はまた、該第一および/または第二のレセプターが抗体である、上記方法、キット及び装置に関する。本発明はまた、該分析対象物がウイルスまたは細菌である、上記方法、キット及び装置に関する。   The present invention also relates to the above method, kit and apparatus, wherein the colored particles are gold colloid or latex. The present invention also relates to the above method, kit and apparatus, wherein the sheet-like carrier is a membrane or a filter. The present invention also relates to the above methods, kits and devices wherein said first and / or second receptor is an antibody. The present invention also relates to the above method, kit and device, wherein the analyte is a virus or a bacterium.

患者等から採取した分析対象物を含む検体液を、前記分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子と混合するなどにより接触させ、次いでこの混合液を、前記分析対象物に対する第二のレセプターが結合したシート状担体に滴下することにより、着色粒子/第一レセプター/分析対象物/第二レセプター複合体がシート状担体表面に形成される。一方、複合体とならなかった検体中の他の成分や第一レセプターが結合した着色粒子などの成分は、担体に捕捉されず通過する。従って、上記複合体のみがシート状担体表面に残存し、着色粒子によりこの複合体を視覚により検出することができる。以上のように、本発明の方法により検体中の分析対象物のみを非常に簡便な操作で確実に検出することができる。   The sample liquid containing the analyte collected from a patient or the like is brought into contact with the colored particles to which the first receptor for the analyte is bound, and this mixed liquid is then contacted with the second analyte for the analyte. By dropping on the sheet-like carrier to which the receptor is bound, a colored particle / first receptor / analyte / second receptor complex is formed on the surface of the sheet-like carrier. On the other hand, other components in the specimen that have not become a complex and components such as colored particles bound to the first receptor pass through without being captured by the carrier. Therefore, only the above complex remains on the surface of the sheet-like carrier, and this complex can be detected visually by the colored particles. As described above, according to the method of the present invention, only the analyte in the sample can be reliably detected by a very simple operation.

また、第一レセプターと結合した着色粒子がシート状担体上部に配置されている多孔質性パッド表面または中に配置した場合には、分析対象物を含む検体液をこの多孔質性パッド上から滴下するのみで同様に着色粒子/第一レセプター/分析対象物/第二レセプター複合体がシート状担体表面に形成されて分析対象物を検出することができ、非常に簡便である。   In addition, when the colored particles bound to the first receptor are arranged on or in the porous pad surface arranged on the upper part of the sheet-like carrier, the specimen liquid containing the analyte is dropped from the porous pad. Similarly, the colored particles / first receptor / analyte / second receptor complex is formed on the surface of the sheet-like carrier and the analyte can be detected, which is very convenient.

本発明のフロースルーアッセイ方法及び装置を使用することにより、従来より簡便で、かつ迅速にウイルス等の検出を行うことができる。   By using the flow-through assay method and apparatus of the present invention, viruses and the like can be detected more easily and quickly than in the past.

本発明の方法及び装置について以下に説明する。
(フロースルーアッセイ方法)
フロースルーアッセイ方法の原理は、“Guide to Diagnostic Rapid Test Device Components”, 2nd edition, published by Schleicher & Schuell company, January 2000, Edited by Lisa Vickers, p6-8、にフロースルーフォーマット(Flow Through Formats)として記載されるとおりである。すなわち、メンブラン等のシート状担体を使用する免疫アッセイ法において、分析対象物を含む検体液がシート状担体を通過し、その際に担体に固定されたレセプターに分析対象物が捕捉されることを特徴とする方法である。シート状担体の下には検体液を下方に吸引する役割を果たす、液体を吸収する部材が存在することが好ましく、この部材により、より迅速な検出が可能となる。また、特公平7−34016号(ハイブリテック)公報もフロースルーアッセイ方法の一形態が記載される文献として挙げられる。
The method and apparatus of the present invention are described below.
(Flow-through assay method)
Flow principle of through assay methods, "Guide to Diagnostic Rapid Test Device Components", 2 nd edition, published by Schleicher & Schuell company, January 2000, Edited by Lisa Vickers, p6-8, the flow-through format (Flow Through Formats) As described. That is, in an immunoassay method using a sheet-like carrier such as a membrane, the sample liquid containing the analyte passes through the sheet-like carrier, and at that time, the analyte is captured by the receptor fixed to the carrier. It is a characteristic method. Under the sheet-like carrier, there is preferably a member that absorbs the liquid, which serves to suck the sample liquid downward, and this member enables more rapid detection. Japanese Examined Patent Publication No. 7-34016 (Hybrtech) is also cited as a document describing an embodiment of the flow-through assay method.

本発明の第一の方法は、上記フロースルーアッセイ方法において、分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子を用い、これと分析対象物を含む検体液とを接触させ、さらにこの検体液を、分析対象物に対する第二のレセプターが結合したシート状担体を通過させる方法である。着色粒子/第一レセプター/分析対象物/第二レセプター複合体がシート状担体表面に形成され、この複合体を前記マーカーにより検出することができる。
また、本発明の第二の方法は、上記フロースルーアッセイ方法において、該シート状担体表面より上部に配置されている、表面または中に着色粒子を含有する多孔質性パッドの表面上に、分析対象物を含む検体液を滴下する方法である。着色粒子/第一レセプター/分析対象物/第二レセプター複合体がシート状担体表面に形成され、この複合体を前記マーカーにより検出することができる。
The first method of the present invention is the above-described flow-through assay method, wherein colored particles to which a first receptor for an analyte is bound are contacted with a sample liquid containing the analyte, and the sample liquid is further contacted. Is passed through a sheet carrier to which a second receptor for the analyte is bound. A colored particle / first receptor / analyte / second receptor complex is formed on the surface of the sheet-like carrier, and this complex can be detected by the marker.
Further, the second method of the present invention is the above-described flow-through assay method, wherein the analysis is performed on the surface or the surface of the porous pad containing colored particles therein, which is disposed above the surface of the sheet-like carrier. This is a method of dropping a specimen liquid containing an object. A colored particle / first receptor / analyte / second receptor complex is formed on the surface of the sheet-like carrier, and this complex can be detected by the marker.

(着色粒子)
着色粒子とは、本明細書において、水、緩衝液等の検体浮遊液に不溶性である粒子状物質であって、色素等による着色標識化物等、視覚により検出可能な標識化物を意味する。着色粒子は第一のレセプターに結合して使用するので、吸着などの手段によりレセプターと結合できることが必要である。また、レセプターが結合した着色粒子はシート状担体中を通過して担体表面には残存しないことが必要であるので、担体のポアサイズより小さいサイズの粒子であることが必要である。担体の種類にもよるが、通常、直径が0.01〜1μm程度の大きさの粒子であることが好ましい。このような着色粒子としては、例えば金コロイド、着色ラテックス等が挙げられる。
(Colored particles)
In the present specification, the colored particles are particulate substances that are insoluble in a specimen suspension such as water or a buffer, and mean a labeled product that can be detected visually, such as a colored labeled product with a dye or the like. Since the colored particles are used by binding to the first receptor, it is necessary to be able to bind to the receptor by means such as adsorption. Further, since the colored particles to which the receptor is bound need to pass through the sheet-like carrier and do not remain on the surface of the carrier, the particles must be smaller than the pore size of the carrier. Although it depends on the type of the carrier, it is usually preferable to use particles having a diameter of about 0.01 to 1 μm. Examples of such colored particles include gold colloid and colored latex.

分析対象物に対する第一レセプターに結合した着色粒子は、分析対象物を含む検体液に固体のまま添加して混合した後にシート状担体を通過させてもよく、または着色粒子を緩衝液等に希釈し、この希釈液と分析対象物を含む検体液とを混合した後に担体を通過させてもよい。着色粒子を希釈する液は、後述する検体浮遊液について記載されるものを使用することができる。着色粒子を希釈する場合の希釈倍率は、着色粒子の種類、抗体の性能により変動するので当業者が適切な濃度となるように適宜決定することができる。
例えば抗体を結合した金コロイドの場合、530nmでの吸光度が1.0〜10の金コロイド溶液を使用した場合には、例えば金コロイド溶液1(容量)に対して、試料溶液(検体液)を0.1〜20(容量)の割合で、すなわち約1〜20倍希釈程度で使用できる。
また、着色ラテックスを使用する場合には、0.0001w/v%〜0.01w/v%程度の範囲で使用できる。
The colored particles bound to the first receptor for the analyte may be added to the sample liquid containing the analyte as a solid and mixed and then passed through the sheet-like carrier, or the colored particles are diluted in a buffer solution or the like. In addition, the carrier may be passed after mixing the diluted solution and the sample solution containing the analyte. As the liquid for diluting the colored particles, those described for the specimen suspension described later can be used. The dilution ratio in the case of diluting the colored particles varies depending on the type of the colored particles and the performance of the antibody, so that those skilled in the art can appropriately determine the concentration so as to obtain an appropriate concentration.
For example, in the case of a colloidal gold conjugated with an antibody, when a colloidal gold solution having an absorbance at 530 nm of 1.0 to 10 is used, for example, a sample solution (specimen solution) is added to the colloidal gold solution 1 (volume). It can be used at a ratio of 0.1 to 20 (volume), that is, about 1 to 20 times dilution.
Moreover, when using colored latex, it can be used in the range of about 0.0001 w / v% to 0.01 w / v%.

また、第一のレセプターが結合した着色粒子を、予め第二のレセプターが結合したシート状担体表面より上部に配置された多孔質性パッド表面または中に含有させておいてもよい。この方法では、検体液を多孔質性パッド上から滴下するのみでアッセイが行えるため、非常に簡便であり好ましい。
着色粒子を多孔質性パッドの表面または中に含有させる方法としては、着色粒子を溶液または懸濁液にして多孔質性パッド中に含浸させた後乾燥させてもよく、またはパッド表面に噴霧した後乾燥させる方法でもよい。または着色粒子を多孔質性パッド表面または中に乾燥状態で包埋してもよい。
着色粒子を溶液または懸濁液として使用する場合、または多孔質性パッドに吸着させる際に希釈するための溶媒としては、燐酸塩緩衝生理食塩水、またはGoodの緩衝液等の緩衝液が挙げられ、さらにタンパク質(カゼイン、ウシ血清アルブミン、ゼラチン、精製グロブリン画分など)、さらには糖類(マンニトール、トレハロース、ソルビトール、シュークロース、グルコースなど)等を含むことが好ましい。
Further, the colored particles bound to the first receptor may be contained in advance on or in the porous pad surface disposed above the surface of the sheet-like carrier bound to the second receptor. This method is very simple and preferable because the assay can be performed simply by dropping the sample liquid from the porous pad.
As a method for incorporating the colored particles on or in the surface of the porous pad, the colored particles may be made into a solution or suspension, impregnated in the porous pad and then dried, or sprayed on the pad surface. A method of post-drying may be used. Alternatively, the colored particles may be embedded in the porous pad surface or in a dry state.
When the colored particles are used as a solution or suspension, or as a solvent for diluting when adsorbed to the porous pad, a buffer solution such as phosphate buffered saline or Good's buffer can be used. Further, it preferably contains a protein (casein, bovine serum albumin, gelatin, purified globulin fraction, etc.), and a saccharide (mannitol, trehalose, sorbitol, sucrose, glucose, etc.).

また、分析対象物に対するレセプターを着色粒子へ結合させるには、物理的吸着法、化学的結合法等を利用することができる。物理的吸着法としては、例えば適当な溶媒中に浮遊した着色粒子を分析対象物に対するレセプターに接触させる方法が挙げられる。レセプター吸着後、着色粒子表面の吸着に関与しなかった部分を被覆するため、ウシ血清アルブミン等のタンパク性ブロッキング剤で処理し、その後遠心分離、あるいは限外濾過法などによりレセプターが結合(吸着)した着色粒子と吸着しなかった過剰のレセプターとを分離する。また、化学的結合法としては、カルボキシル基、アミノ基等の官能基を介して共有結合を形成させる方法が挙げられる。各着色粒子に結合可能なレセプター濃度は、着色粒子の材質、大きさ(粒径、表面積)等により異なるため、当業者が適宜決定することができる。   Further, in order to bind the receptor for the analyte to the colored particles, a physical adsorption method, a chemical binding method, or the like can be used. Examples of the physical adsorption method include a method in which colored particles suspended in a suitable solvent are brought into contact with a receptor for an analyte. After adsorbing the receptor, in order to cover the part of the colored particle surface that was not involved in the adsorption, it was treated with a protein blocking agent such as bovine serum albumin, and then the receptor was bound (adsorbed) by centrifugation or ultrafiltration. The colored particles are separated from the excess receptor that has not been adsorbed. Examples of the chemical bonding method include a method of forming a covalent bond via a functional group such as a carboxyl group or an amino group. The receptor concentration capable of binding to each colored particle varies depending on the material, size (particle size, surface area), etc. of the colored particle, and can be appropriately determined by those skilled in the art.

(多孔質性パッド)
多孔質性のパッドとしては、ポアの直径が10〜200μm、厚さ300〜3000μmのガラス繊維濾紙、ポリプロピレン不織布、その他のポリマー系不織布が好適に用いられる。上述したように着色粒子を表面または中に含有させた多孔質性パッドを使用する場合には、このパッドを後述するシート状担体表面より上部に配置することが好ましい。多孔質性パッドがシート状担体上に直接接触するように積載されていてもよく、または多孔質性パッドがシート状担体に接触せずに、一定の間隔でシート状担体表面より上部に配置されていてもよい。
(Porous pad)
As the porous pad, glass fiber filter paper having a pore diameter of 10 to 200 μm and a thickness of 300 to 3000 μm, a polypropylene nonwoven fabric, and other polymer nonwoven fabrics are preferably used. As described above, when a porous pad containing colored particles on the surface or inside thereof is used, it is preferable to dispose the pad above the surface of the sheet-like carrier described later. The porous pad may be stacked so as to be in direct contact with the sheet-like carrier, or the porous pad is disposed above the surface of the sheet-like carrier at regular intervals without contacting the sheet-like carrier. It may be.

(シート状担体)
シート状担体は、水に不溶性の支持体であり、レセプターを固定化し、着色粒子/第一レセプター/分析対象物/第二レセプター複合体を捕捉して他の成分から分離するために用いる。例としては膜またはフィルターが挙げられる。このような膜またはフィルターは、検体液中に含まれる分析対象物以外の物質及び第一レセプターが結合する着色粒子を通過させることができるような一定のポアサイズを有するものであれば特に制限はない。一般に市販されているものであればいずれでもよいが、好適にはニトロセルロース、アセテート混ニトロセルロース、ナイロン、ポリエーテルスルホン、ポリビニリデンジフルオライド等が用いられる。
(Sheet carrier)
The sheet-like carrier is a water-insoluble support and is used to immobilize the receptor and capture the colored particles / first receptor / analyte / second receptor complex and separate them from other components. Examples include membranes or filters. Such a membrane or filter is not particularly limited as long as it has a certain pore size capable of passing substances other than the analyte contained in the sample liquid and colored particles to which the first receptor binds. . Any commercially available one may be used, but nitrocellulose, acetate mixed nitrocellulose, nylon, polyethersulfone, polyvinylidene difluoride and the like are preferably used.

またシート状担体のポアサイズは上述したように、分析対象物及び第一レセプターが結合する着色粒子の大きさ等に依るため、特に規定されないが、0.22μm〜12μmが最もよく用いられる。
シート状担体へのレセプターの固定化(結合)方法は、物理的吸着であってもよく、または化学的な結合によるものであってもよい。レセプターが結合したシート状担体の調製は、例えば、レセプターを緩衝液等に希釈した溶液をシート状担体に吸着してその後乾燥することにより行われる。
As described above, the pore size of the sheet-like carrier is not particularly limited because it depends on the size of the colored particles to which the analyte and the first receptor bind, but 0.22 μm to 12 μm is most often used.
The method for immobilizing (binding) the receptor on the sheet-like carrier may be physical adsorption or chemical bonding. Preparation of the sheet-like carrier to which the receptor is bound is carried out, for example, by adsorbing a solution obtained by diluting the receptor in a buffer solution or the like to the sheet-like carrier and then drying it.

(フロースルーアッセイ装置)
本発明の第一のフロースルーアッセイ方法に使用される装置は、少なくとも分析対象物に対するレセプターが結合したシート状担体を含むものである。この装置を用いる方法は以下のとおりである。分析対象物を含む検体液を、前記分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子と接触させ、次いで前記装置中のシート状担体を通過させることにより、前記シート状担体表面に、着色粒子/第一レセプター/分析対象物/第二レセプター複合体を形成し、これを検出する。
この装置の模式図を図1及び図2に示す。図1は装置の平面図であり、図2は、図1のI−I’切断端面図である。図1及び2において、aは、調製した試料(検体液)を滴下する開口部を有し、底面部に試料が通過するための穴(Aホール及びBホール)を備えたアダプターである。bは分析対象物に対するレセプターが結合したシート状担体であり、cは液体を吸収する部材である。
(Flow-through assay device)
The apparatus used in the first flow-through assay method of the present invention includes at least a sheet-like carrier to which a receptor for an analyte is bound. The method using this apparatus is as follows. The sample liquid containing the analyte is brought into contact with the colored particles to which the first receptor for the analyte is bound, and then passed through the sheet-like carrier in the apparatus, whereby the colored particles are formed on the surface of the sheet-like carrier. A / first receptor / analyte / second receptor complex is formed and detected.
A schematic diagram of this apparatus is shown in FIGS. FIG. 1 is a plan view of the apparatus, and FIG. 2 is a cross-sectional end view taken along the line II ′ of FIG. 1 and 2, a is an adapter having an opening for dropping the prepared sample (specimen solution) and having holes (A hole and B hole) through which the sample passes on the bottom surface. b is a sheet-like carrier to which a receptor for the analyte is bound, and c is a member that absorbs liquid.

また、本発明の第二のフロースルーアッセイ方法に使用される装置は、分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子を表面または中に含む多孔質性パッド、及び前記分析対象物に対する第二のレセプターが結合したシート状担体を含む、フロースルーアッセイ装置である。この装置を用いる方法は以下のとおりである。分析対象物を含む検体液を、前記多孔質性パッド表面に滴下して、次いで前記シート状担体を通過させることにより、前記シート状担体表面に、着色粒子/第一レセプター/分析対象物/第二レセプター複合体を形成され、これを検出する。
図3は、レセプターが結合した着色粒子が多孔質性パッド表面または中に含有されており、前記多孔質性パッドがシート状担体表面より上部に配置されている本発明のフロースルーアッセイ装置の切断端面図を表す。図3において、dは分析対象物に対するレセプターが結合した着色粒子を表面または中に含む多孔質性パッドである。
In addition, the apparatus used in the second flow-through assay method of the present invention includes a porous pad having a colored particle bound with a first receptor bound to an analyte on the surface, and a first pad for the analyte. A flow-through assay device comprising a sheet-like carrier to which two receptors are bound. The method using this apparatus is as follows. A sample liquid containing an analysis object is dropped on the surface of the porous pad, and then passed through the sheet-like carrier, whereby the colored particles / first receptor / analyte / second A bireceptor complex is formed and detected.
FIG. 3 shows the cutting of the flow-through assay device of the present invention in which colored particles to which the receptor is bound are contained in or on the surface of the porous pad, and the porous pad is arranged above the surface of the sheet-like carrier. An end view is shown. In FIG. 3, d is a porous pad that contains colored particles on the surface or in which receptors for the analyte are bound.

上記フロースルーアッセイ装置は、シート状担体へ滴下した検体液等の液体を吸収する液体吸収部材を、シート状担体の下部に有することが好ましい。このような液体吸収部材としては、ガラス繊維、セルロース、あるいはこれらの混合物等の材料が挙げられる。また、液体の吸収が迅速に進行するように、液体吸収部材はレセプターが結合したシート状担体と接触または密着していることが好ましい。このようなシート状担体と接触または密着した液体吸収部材が存在することにより、検体液の液体等のシート状担体通過が促進され、迅速な検出を可能とする。   The flow-through assay device preferably has a liquid absorbing member that absorbs a liquid such as a sample solution dropped on the sheet-like carrier at the lower part of the sheet-like carrier. Examples of such a liquid absorbing member include materials such as glass fiber, cellulose, or a mixture thereof. Further, it is preferable that the liquid absorbing member is in contact with or in close contact with the sheet-like carrier to which the receptor is bound so that liquid absorption proceeds rapidly. The presence of such a liquid absorbing member that is in contact with or in close contact with the sheet-like carrier facilitates the passage of the sample liquid, such as a liquid, through the sheet-like carrier and enables rapid detection.

(レセプター)
分析対象物に対する第一及び第二のレセプターとは、分析対象物と特異的に反応し、複合体を形成する受容体である。従って、分析対象物により使用するレセプターが異なることは当然であるが、一般には分析対象物が細菌、ウイルス、ホルモン、その他臨床マーカー等の場合には、これらに対し特異的に反応して結合するポリクローナル抗体、モノクローナル抗体等が挙げられる。そのほか、ウイルス抗原、ウイルス中空粒子、遺伝子組換え大腸菌発現タンパク質、遺伝子組換え酵母発現タンパク質等が挙げられる。
使用する第一及び第二のレセプターは同じでも異なっていてもよい。
(Receptor)
The first and second receptors for the analyte are receptors that specifically react with the analyte to form a complex. Therefore, it is natural that the receptor to be used differs depending on the analyte, but in general, when the analyte is a bacterium, virus, hormone, other clinical marker, etc., it specifically reacts and binds to these. A polyclonal antibody, a monoclonal antibody, etc. are mentioned. In addition, virus antigens, virus hollow particles, recombinant E. coli expressed protein, recombinant yeast expressed protein and the like can be mentioned.
The first and second receptors used may be the same or different.

(分析対象物)
本発明のフロースルーアッセイ方法により、細菌、ウイルス、ホルモン、その他臨床マーカー等の様々な抗原、抗体等を分析することができる。特に、インフルエンザウイルス、小型小球ウイルス等の分析には有効である。
(Analytical object)
With the flow-through assay method of the present invention, various antigens such as bacteria, viruses, hormones, and other clinical markers, antibodies, and the like can be analyzed. In particular, it is effective for analysis of influenza viruses, small globules viruses and the like.

(検体浮遊液)
検体は、例えば患者の咽頭・鼻腔等から綿棒等を使用して採取するか、または鼻腔吸引液等を用いることができるが、このようにして得られた検体は、通常検体浮遊液に浮遊させてアッセイを行う。検体浮遊液としては、免疫拡散法、酵素免疫測定法、凝集法等の免疫学的手法による試料検出または定量法において通常使用されるバッファー類等を使用することができる。
より具体的には、生理食塩水、リン酸緩衝性生理食塩水(PBS)、ゼラチン添加PBS、ウシ血清アルブミン(BSA)添加PBS、グッドの緩衝液、子牛インフュージョンブロス(VIB)、ハートインフュージョンブロス、イーグルの最小必須培地(EMEM)、BSA添加EMEMなどが挙げられるがこの限りではない。また、上記バッファー類は2種類以上を組み合わせて用いてもよい。
また、さらに上記組成に加えて、塩基性アミノ酸、無機塩類および/または界面活性剤を添加することもできる。塩基性アミノ酸、無機塩類および界面活性剤の少なくとも二種類を含む検体浮遊液を使用することにより、検体中に含まれる分析対象物以外の成分の担体や担体に結合したレセプターへの非特異的な結合を軽減させることができ好ましい。
また、本発明の方法において、検体を検体浮遊液に浮遊した後、着色粒子と混合する前に濾過を行ってもよい。
(Sample suspension)
The specimen can be collected from the patient's pharynx, nasal cavity, etc. using a cotton swab, etc., or a nasal aspirate can be used. The specimen thus obtained is usually suspended in the specimen suspension. Perform the assay. As the specimen suspension, buffers or the like usually used in sample detection or quantification methods by immunological techniques such as immunodiffusion method, enzyme immunoassay method, and aggregation method can be used.
More specifically, physiological saline, phosphate buffered saline (PBS), gelatin-added PBS, bovine serum albumin (BSA) -added PBS, Good's buffer, calf infusion broth (VIB), heart-in Examples include, but are not limited to, fusion broth, Eagle's minimum essential medium (EMEM), and BMEM-added EMEM. Moreover, you may use the said buffers in combination of 2 or more types.
Further, in addition to the above composition, basic amino acids, inorganic salts and / or surfactants may be added. By using a sample suspension containing at least two types of basic amino acids, inorganic salts, and surfactants, non-specificity to the carrier other than the analyte contained in the sample and the receptor bound to the carrier Bonding can be reduced, which is preferable.
In the method of the present invention, after the sample is suspended in the sample suspension, filtration may be performed before mixing with the colored particles.

(フロースルーアッセイ用キット)
本発明のフロースルーアッセイ用キットは、上述したフロースルーアッセイ方法に用いるキットである。本発明のフロースルーアッセイ用キットは少なくとも以下の(i)及び(ii)を含む。
(i) 分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子又は分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子を含むパッド
(ii) 分析対象物に対する第二のレセプターが結合したシート状担体
さらに必要により、検体浮遊液、着色粒子希釈液を含んでいてもよい。(i)および/または(ii)は、上述したフロースルーアッセイ装置の形態で、キットに含まれていてもよい。
(Flow-through assay kit)
The flow-through assay kit of the present invention is a kit used in the above-described flow-through assay method. The kit for flow-through assay of the present invention comprises at least the following (i) and (ii).
(i) a pad containing colored particles bound to the first receptor for the analyte or colored particles bound to the first receptor for the analyte
(ii) A sheet-like carrier to which a second receptor for the analyte is bound. If necessary, a specimen suspension and a colored particle diluent may be included. (i) and / or (ii) may be included in the kit in the form of the flow-through assay device described above.

また、必要に応じて、キットの活性を検査するためのバッファーのみからなる陰性コントロール液、抗原性物質などの分析対象物を含むバッファーからなる陽性コントロールを含んでいてもよい。さらに、試料を濾過するためのフィルターや滅菌綿棒を含んでいてもよい。   Further, if necessary, a negative control solution consisting only of a buffer for examining the activity of the kit and a positive control consisting of a buffer containing an analyte such as an antigenic substance may be included. Further, a filter for filtering the sample and a sterilized cotton swab may be included.

[実施例1]
以下の試薬及び装置を用いた。
1.モノクローナル抗体の作製
(抗A型インフルエンザウイルスNPモノクローナル抗体(マウス)の作製)
精製A型インフルエンザウイルス抗原を免疫し、一定期間維持したBALB/cマウスから脾臓を摘出し、ケラーらの方法(Kohler et al.,Nature,vol,256,p495−497(1975))によりマウスミエローマ細胞(P3×63)と融合した。
得られた融合細胞(ハイブリドーマ)は、37℃インキュベーター中で維持し、A型インフルエンザウイルスNP抗原固相プレートを用いたELISAにより上清の抗体活性を確認しながら細胞の純化(単クローン化)を行った。
取得した該細胞株をプリスタン処理したBALB/cマウスに腹腔投与し、約2週間後、抗体含有腹水を採取した。得られた腹水から硫安分画法によってIgGを精製した。
(抗B型インフルエンザウイルスNPモノクローナル抗体(マウス)の作製)
精製B型インフルエンザウイルス抗原を免疫し、一定期間維持したBALB/cマウスから脾臓を摘出し、ケラーらの方法(Kohler et al., Nature, vol.256, p495−4397(1975))によりマウスミエローマ細胞(P3×63)と融合した。得られた融合細胞(ハイブリドーマ)は、37℃でインキュベーター中で維持し、B型インフルエンザウイルスNP抗原固相プレートを用いた。ELISAにより上清の抗体活性を確認しながら細胞の純化(単クローン化)を行った。取得した該細胞株をプリスタン処理したBALB/cマウスに腹腔投与し、約2週間後、抗体含有腹水を採取した。得られた腹水から硫安分画法によってIgGを精製した。
[Example 1]
The following reagents and equipment were used.
1. Production of monoclonal antibody (production of anti-influenza A virus NP monoclonal antibody (mouse))
Spleens were excised from BALB / c mice immunized with purified influenza A virus antigen and maintained for a certain period of time, and mouse myeloma was prepared by the method of Keller et al. (Kohler et al., Nature, vol, 256, p495-497 (1975)). Fused with cells (P3x63).
The obtained fusion cell (hybridoma) is maintained in a 37 ° C. incubator, and purification of the cell (monocloning) is performed while confirming the antibody activity of the supernatant by ELISA using an influenza A virus NP antigen solid phase plate. went.
The obtained cell line was intraperitoneally administered to pristane-treated BALB / c mice, and about 2 weeks later, antibody-containing ascites was collected. IgG was purified from the obtained ascites by an ammonium sulfate fractionation method.
(Preparation of anti-type B influenza virus NP monoclonal antibody (mouse))
Spleen was excised from BALB / c mice immunized with purified influenza B virus antigen and maintained for a certain period of time, and mouse myeloma was prepared by the method of Keller et al. (Kohler et al., Nature, vol. 256, p495-5497 (1975)). Fused with cells (P3x63). The obtained fused cells (hybridomas) were maintained in an incubator at 37 ° C., and influenza B virus NP antigen solid phase plates were used. The cells were purified (monocloned) while confirming the antibody activity of the supernatant by ELISA. The obtained cell line was intraperitoneally administered to pristane-treated BALB / c mice, and about 2 weeks later, antibody-containing ascites was collected. IgG was purified from the obtained ascites by an ammonium sulfate fractionation method.

2.金コロイドとモノクローナル抗体の結合
10mLの金コロイド溶液(BBI社、粒径40nm、塩化金酸濃度として0.01%)を取り、100mM炭酸カリウムでpHを5.5に調整する。精製した抗A型又はB型インフルエンザウイルスNPモノクローナル抗体を2mMホウ酸ナトリウム溶液(pH9.2)で透析し、100μg/mLの濃度になるように調製した。pHを5.5に調整した金コロイド溶液に、抗体の最終濃度が10μg/mLとなる量を加え、金コロイドと抗体が十分結合されるように、手でゆっくりと撹拌した。5分後、10%BSAを1mL加え、穏やかに10分間手で撹拌した。全量を遠心管に移し、14000rpm、30分、4℃で遠心した。遠心後、上清を吸引廃棄し、沈殿している抗体結合金コロイドに、1%BSA、150mM塩化ナトリウムを含む10mMトリス塩酸緩衝液pH8.5、1mLを加えて浮遊した。
3.アッセイ装置
アッセイ装置は図1および図2に示すものと同じ構成を有するものを用いた。
2. Binding of gold colloid and monoclonal antibody Take 10 mL of gold colloid solution (BBI, particle size 40 nm, 0.01% chloroauric acid concentration) and adjust the pH to 5.5 with 100 mM potassium carbonate. The purified anti-type A or type B influenza virus NP monoclonal antibody was dialyzed against a 2 mM sodium borate solution (pH 9.2) to prepare a concentration of 100 μg / mL. To the colloidal gold solution adjusted to pH 5.5, an amount such that the final concentration of the antibody was 10 μg / mL was added, and gently stirred by hand so that the colloidal gold and the antibody were sufficiently bound. After 5 minutes, 1 mL of 10% BSA was added and gently stirred by hand for 10 minutes. The whole amount was transferred to a centrifuge tube and centrifuged at 14,000 rpm for 30 minutes at 4 ° C. After centrifugation, the supernatant was aspirated and discarded, and 1 mL of 10 mM Tris-HCl buffer pH 8.5 containing 1% BSA and 150 mM sodium chloride was added to the precipitated antibody-bound gold colloid to float.
3. Assay device An assay device having the same structure as that shown in FIGS. 1 and 2 was used.

4.抗体のシート状担体への固定化
シート状担体はニトロセルロースを用いた。固定化は、2種の抗体溶液をニトロセルロースメンブランヘスポットして行った。装置のAホールには抗A型インフルエンザウイルスNPモノクローナル抗体1mgが含まれる溶液を1μL、Bホールには抗B型インフルエンザウイルスNPモノクローナル抗体1mgが含まれる溶液を12μLそれぞれスポットした。抗体を希釈する緩衝液は10mMリン酸緩衝液(pH7.0)を用いた。スポット後、45℃の乾燥室で40分間乾燥を行った。
4). Immobilization of antibody on sheet carrier Nitrocellulose was used as the sheet carrier. Immobilization was performed by spotting two antibody solutions onto a nitrocellulose membrane. 1 μL of the solution containing 1 mg of the anti-influenza A virus NP monoclonal antibody was spotted in the A hole of the apparatus, and 12 μL of the solution containing 1 mg of the anti-B influenza virus NP monoclonal antibody was spotted in the B hole. As a buffer for diluting the antibody, a 10 mM phosphate buffer (pH 7.0) was used. After spotting, drying was performed for 40 minutes in a 45 ° C. drying room.

5.抗原の検出方法
2.で調製した抗体結合金コロイドをOD530nmで吸光度が1.0となるように5mMリン酸緩衝液(pH7.4)で希釈したものと、5%BSA、4.5%TritonX−100、2%魚ゼラチンを含む5mM燐酸緩衝液(pH7.4)で希釈した検体を1:4に希釈混合し、アッセイ装置に500μL滴下した。検出は、陽性検体として希釈したA型インフルエンザウイルス及びB型インフルエンザウイルス、陰性検体として上記緩衝液を使用して行った。検体をAホール、Bホールに500μLずつ気泡を入れないように滴下し、メンブラン上に液がなくなるまで常温に静置した。その後アダプターを取り外し、目視で判定した。判定の結果、Aホールに関しては、A型インフルエンザウイルスが10の4乗pfu/mLまで検出でき、B型インフルエンザウイルスに対しては陰性と判定された。一方Bホールに関しては、B型インフルエンザウイルスが10の4乗pfu/mLまで検出でき、A型インフルエンザウイルスに対しては陰性と判定された。
5. 1. Antigen detection method The antibody-bound gold colloid prepared in step 1 was diluted with 5 mM phosphate buffer (pH 7.4) so that the absorbance was 1.0 at OD 530 nm, and 5% BSA, 4.5% Triton X-100, 2% fish. A sample diluted with 5 mM phosphate buffer (pH 7.4) containing gelatin was diluted and mixed 1: 4, and 500 μL was dropped onto the assay device. Detection was carried out using the influenza A virus and influenza B virus diluted as positive specimens and the above buffer as a negative specimen. The specimen was dropped into the A hole and B hole in such a way that 500 μL of bubbles were not added, and allowed to stand at room temperature until there was no liquid on the membrane. Thereafter, the adapter was removed and judged visually. As a result of the determination, regarding A hole, influenza A virus could be detected up to 10 4 pfu / mL, and negative for influenza B virus. On the other hand, regarding the B hole, the influenza B virus could be detected up to 10 4 pfu / mL, and it was judged negative for the influenza A virus.

[実施例2]
実施例1と同様に、1.モノクローナル抗体の作製、2.金コロイドとモノクローナル抗体の結合、4.抗体の担体への固定化を行った。
3.アッセイ装置は、図3に示されるようなシート状担体表面に着色粒子を含む多孔質性パッドが積載された構成の装置を用いた。すなわち、以下のようにしてモノクローナル抗体を結合した金コロイドを乾燥して製造したアッセイ装置を使用し、以下に記載するように抗体の検出を行った。
[Example 2]
Similar to Example 1, 1. Production of monoclonal antibodies 3. Binding of gold colloid and monoclonal antibody The antibody was immobilized on a carrier.
3. As the assay device, a device in which a porous pad containing colored particles was loaded on the surface of a sheet-like carrier as shown in FIG. 3 was used. That is, an antibody was detected as described below using an assay device prepared by drying gold colloid bound with a monoclonal antibody as described below.

5.金コロイドの乾燥
2.で調製した抗体結合金コロイドをOD530nmで吸光度が1.0となるように10%ショ糖添加10mMトリス塩酸緩衝液(pH8.0)で希釈し、パッド(Whatman製:Conjugate Release Pad F075−14(ポアサイズ:直径23μm、厚さ355μm)に載せ温風送風乾燥した。温風送風乾燥後の抗A型インフルエンザウイルスNP抗体吸着パッドはアッセイ装置のAホールヘ載せ、一方温風送風乾燥後の抗B型インフルエンザウイルスNP抗体吸着パッドはアッセイ装置のBホールヘ載せた。
5. 1. Drying of gold colloid The antibody-bound gold colloid prepared in step 1 was diluted with 10 mM sucrose-added 10 mM Tris-HCl buffer (pH 8.0) so that the absorbance was 1.0 at an OD of 530 nm, and a pad (Whatman: Conjugate Release Pad F075-14 ( The pore size was 23 μm in diameter and 355 μm in thickness) and dried with warm air.The anti-influenza A virus NP antibody adsorption pad after warm air blowing was placed in the A hole of the assay device, while anti-B type after drying with warm air The influenza virus NP antibody adsorption pad was placed in the B hole of the assay device.

6.抗原の検出方法
検体の希釈は5mMリン酸緩衝液(pH7.4)に5%BSA、4.5%TritonX−100、2%魚ゼラチンとなるように調製したものを用いた。検出は、陽性検体として希釈したA型インフルエンザウイルス及びB型インフルエンザウイルス、陰性検体として上記緩衝液を使用して行った。検体をAホール、Bホールに500μLずつ気泡を入れないように滴下し、メンブレン上に液がなくなるまで常温に静置した。その後アダプターを取り外し、目視で判定した。判定の結果、Aホールに関しては、A型インフルエンザウイルスが10の4乗pfu/mLまで検出でき、B型インフルエンザウイルスに対しては陰性と判定された。一方Bホールに関しては、B型インフルエンザウイルスが10の4乗pfu/mLまで検出でき、A型インフルエンザウイルスに対しては陰性と判定された。
6). Antigen detection method The specimen was diluted to 5% BSA, 4.5% Triton X-100, and 2% fish gelatin in 5 mM phosphate buffer (pH 7.4). Detection was carried out using the influenza A virus and influenza B virus diluted as positive specimens and the above buffer as a negative specimen. The sample was dropped into the A hole and B hole in 500 μL portions without bubbles, and allowed to stand at room temperature until no liquid was left on the membrane. Thereafter, the adapter was removed and judged visually. As a result of the determination, regarding A hole, influenza A virus could be detected up to 10 4 pfu / mL, and negative for influenza B virus. On the other hand, regarding the B hole, the influenza B virus could be detected up to 10 4 pfu / mL, and it was judged negative for the influenza A virus.

本発明のアッセイ装置の一例の平面図である。It is a top view of an example of the assay device of the present invention. 図1のI−I’切断端面図である。FIG. 2 is an end view taken along the line I-I ′ of FIG. 1. 本発明のアッセイ装置の一例の切断端面図である。It is a cut end view of an example of the assay device of the present invention.

符号の説明Explanation of symbols

A:穴
B:穴
a:アダプター
b:シート状担体
c:液体吸収部材
d:着色粒子を含む多孔質性パッド
A: Hole B: Hole a: Adapter b: Sheet-like carrier c: Liquid absorbent member d: Porous pad containing colored particles

Claims (18)

分析対象物を含む検体液を、前記分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子と接触させ、次いで前記分析対象物に対する第二のレセプターが結合したシート状担体を通過させることにより、前記シート状担体表面に、着色粒子/第一レセプター/分析対象物/第二レセプター複合体を形成し、これを検出することを特徴とするフロースルーアッセイ方法。   The sample liquid containing the analyte is brought into contact with the colored particles bound to the first receptor for the analyte, and then passed through a sheet-like carrier bound to the second receptor for the analyte. A flow-through assay method characterized by forming a colored particle / first receptor / analyte / second receptor complex on the surface of a sheet-like carrier and detecting the complex. 該シート状担体表面より上部に多孔質性パッドが配置されており、該多孔質性パッドの表面または中に該着色粒子が含有されている、請求項1に記載の方法。   The method according to claim 1, wherein a porous pad is disposed above the surface of the sheet-like carrier, and the colored particles are contained in or on the surface of the porous pad. 該着色粒子が金コロイドまたは着色ラテックスである、請求項1または2に記載の方法。   The method according to claim 1 or 2, wherein the colored particles are gold colloid or colored latex. 該シート状担体が膜またはフィルターである、請求項1〜3のいずれか一項に記載の方法。   The method according to any one of claims 1 to 3, wherein the sheet-like carrier is a membrane or a filter. 該第一および/または第二のレセプターが抗体である、請求項1〜4のいずれか一項に記載の方法。   The method according to any one of claims 1 to 4, wherein the first and / or second receptor is an antibody. 該分析対象物がウイルスまたは細菌である、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。   The method according to any one of claims 1 to 5, wherein the analyte is a virus or a bacterium. 分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子及び前記分析対象物に対する第二のレセプターが結合したシート状担体を含む、フロースルーアッセイ用キット。   A kit for flow-through assay, comprising colored particles bound to a first receptor for an analyte and a sheet-like carrier bound to a second receptor for the analyte. 多孔質性パッドをさらに含み、該多孔質性パッドの表面または中に該着色粒子が含有されている、請求項7に記載のキット。   The kit according to claim 7, further comprising a porous pad, wherein the colored particles are contained in or on the surface of the porous pad. 該着色粒子が金コロイドまたは着色ラテックスである、請求項7または8に記載のキット。   The kit according to claim 7 or 8, wherein the colored particles are gold colloid or colored latex. 該シート状担体が膜またはフィルターである、請求項7〜9のいずれか一項に記載のキット。   The kit according to any one of claims 7 to 9, wherein the sheet-like carrier is a membrane or a filter. 該第一および/または第二のレセプターが抗体である、請求項7〜10のいずれか一項に記載のキット。   The kit according to any one of claims 7 to 10, wherein the first and / or second receptor is an antibody. 該分析対象物がウイルスまたは細菌である、請求項7〜11のいずれか一項に記載のキット。   The kit according to any one of claims 7 to 11, wherein the analyte is a virus or a bacterium. 分析対象物に対する第一のレセプターが結合した着色粒子を表面または中に含有する多孔質性パッド、及び前記分析対象物に対する第二のレセプターが結合したシート状担体を含む、フロースルーアッセイ装置。   A flow-through assay device comprising a porous pad containing colored particles bound or bound to a first receptor for an analyte, and a sheet-like carrier bound to a second receptor for the analyte. 該多孔質性パッドが該シート状担体表面より上部に配置されている、請求項13に記載の装置。   The device according to claim 13, wherein the porous pad is disposed above the surface of the sheet-like carrier. 該着色粒子が金コロイドまたは着色ラテックスである、請求項13または14に記載の装置。   15. An apparatus according to claim 13 or 14, wherein the colored particles are gold colloid or colored latex. 該シート状担体が膜またはフィルターである、請求項13〜15のいずれか一項に記載の装置。   The device according to any one of claims 13 to 15, wherein the sheet-like carrier is a membrane or a filter. 該第一および/または第二のレセプターが抗体である、請求項13〜16のいずれか一項に記載の装置。   The device according to any one of claims 13 to 16, wherein the first and / or second receptor is an antibody. 該分析対象物がウイルスまたは細菌である、請求項13〜17のいずれか一項に記載の装置。   The apparatus according to any one of claims 13 to 17, wherein the analyte is a virus or a bacterium.
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