HUT67011A - Derivatives opf gp160 and vaccines based on gp160 or a derivative thereof, containing an adjuvant - Google Patents

Derivatives opf gp160 and vaccines based on gp160 or a derivative thereof, containing an adjuvant Download PDF

Info

Publication number
HUT67011A
HUT67011A HU9302642A HU264293A HUT67011A HU T67011 A HUT67011 A HU T67011A HU 9302642 A HU9302642 A HU 9302642A HU 264293 A HU264293 A HU 264293A HU T67011 A HUT67011 A HU T67011A
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
protein
vaccine
hiv
oligomer
modified
Prior art date
Application number
HU9302642A
Other languages
English (en)
Inventor
Frans Wijnendaele
Moncef Slaoui
Claudine Bruck
Myriam Francotte
Suzy Kummert
Original Assignee
Smithkline Beecham Biolog
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Smithkline Beecham Biolog filed Critical Smithkline Beecham Biolog
Publication of HUT67011A publication Critical patent/HUT67011A/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/16011Human Immunodeficiency Virus, HIV
    • C12N2740/16111Human Immunodeficiency Virus, HIV concerning HIV env
    • C12N2740/16122New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)

Description

A találmány tárgya olyan új vakcina és gyógyszerkészítmény, valamint ezek előállítására szolgáló eljárás, amelyek az AIDS kezelésére alkalmazhatók. A találmány közelebbről gpl60-t vagy annak származékát, beleértve a gpl60 új formáit is, és 3D monofoszforil lipid A adjuvánst tartalmazó vakcinákra vonatkozik.
A retrovírusok - azaz a Retroviridiae családba tartozó nagyszámú vírus - burokkal, a mag struktúráján belül feltekeredett nukleokapsziddal rendelkező ikozohedrális, mintegy 150 nm méretű vírusok, amelyek genetikai anyagként RNS-t tartalmaznak. Ebbe a családba tartoznak az onkovírusok, mint pl. a szarkoma és leukémia vírusok, bizonyos immunhiányos betegséget okozó vírusok és a lentivírusok is.
Az 1. típusú humán immunhiányos betegséget okozó vírus (HIV-1) a szerzett immunhiányos szindróma, más néven AIDS kórokozója. E retrovírus komplex genetikai szerveződéssel rendelkezik, beleértve a hosszú terminális ismétlődéseket (LTR-ek) , a gag, pol és env géneket és más géneket. E retrovírus különböző virális antigéneket hordoz, amelyek önmagunkban vagy vakcinák hatóanyagaként képesek lehetnek védő immunválasz kiváltására.
A HIV-1 burokprotein poliprotein prekurzor formájában szintetizálődik, amely a megfertőzött sejten belül később glikozileződik, és így egy 160 kDa molekulatömegű glikoproteint (gpl60) képez, amely proteolízissel gpl20 külső glikoproteinre és gp41 transzmembrán proteinre bomlik.
A provirális HIV-hez tartozó DNS kódoló terület a szakirodalomban ismertetett számos, immunhiányos betegséget okozó vírus genomiális kiónjainak bármelyikéből előállítható. Lásd például Shaw et al., Science, 226, 1165 (1984); Kramer et al., Science, 231, 1580 (1986). Egy immunhiányos betegséget okozó vírus genomiális kiónja klinikai minták vírus- izolátumaiból is előállítható ismert DNS klónozó technikával. Lásd például Gallo et al., 4 520 113 sz. amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás, Montagnier et al., 4 708 818 amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás.
A HIV-BH10-2 provirális DNS-szekvenciáját Ratner et al., Hunan Retroviruses and AIDS” 1989, HÍV Sequence Database, kiadó: Gerald Meyers, Los Alános National Laboratory helyen ismertetik. A szekvencia 8932 bp hosszúságú, az env gén az 5580-8150 helynél helyezkedik el, és hasítási helyeket tartalmaz a 7088 és 7112 helynél, amelyek az 503. és 511. aminosavnak felelnek meg (hasítás ezen maradékok után) (a Los Alamos adatbázis szerinti számozás) .
A találmány szerint olyan HÍV gpl60-t állítunk elő, amelynek aminosav-szekvenciáját úgy módosítottuk, hogy az 502. és 510. helynél egymástól függetlenül lizintől, illetve arginintől eltérő aminosavat tartalmazzon.
Lizin helyett előnyösen olyan aminosavakat építünk be, amelyek hidrofilitás és méret szempontjából hasonlóak a lizinhez, ilyenek például a hisztidin, treonin, szerin, aszparagin, aszparaginsav, glutamin és glutaminsav. Ezek közül előnyös a glutaminsav. Az előnyös protein a bevezetett mutációk következtében nem hasítható és keresztreagáló antitest termelését tudja megindítani, ami a protein helyes hajtogatódásától függ.
Közelebbről a találmány szerint módosított proteint állítunk elő oligomer formában, különösen 640 kDa molekulatömeggel rendelkező formában. A gpl60 monomer molekulatömege alapján feltételezhető, hogy ez tetramer forma. Ez előnyös, mivel a vírus felületi proteinek természetes formában oligomerekként léteznek, amelyek in vivő beékelődéseket képeznek, és amelyek kiugranak a vírus felületéről. Minthogy sok semlegesítő epitop egyezik, nyilvánvalóan fontos, hogy a lehető legjobban megközelítsék az antigén természetes formáját, mivel így lehet a legmegfelelőbb immunválaszt nyerni.
A találmány szerinti megoldás egy előnyös megvalósítási módja szerint a találmány szerinti módosított proteint lényegében véve tiszta, oligomer formában állítjuk elő.
A lényegében véve tiszta formán 75 %-os, előnyösen 90 %-os, még előnyösebben 99 %-os tisztaságot értünk.
A találmány tárgya továbbá eljárás módosított HÍV gpl60 előállítására oly módon, hogy az említett módosított proteint kódoló DNS-t egy rekombináns eukarióta gazdasejtben kifejezzük, és a termelt módosított proteint kinyerjük.
A módosított proteint kódoló nukleotid-szekvenciát tartalmazó DNS-polimer szintén a találmány tárgykörébe tartozik.
A találmány szerinti rekombináns DNS molekula a találmány értelmében úgy állítható elő, hogy a megfelelő mono-, di- és/vagy oligomer nukleotid egységeket kondenzáljuk.
Az előállítást végezhetjük kémiai vagy enzimatikus úton vagy a kettő kombinálásával, in vitro vagy in vivő, * · · · ·
- 5 ahogyan alkalmas. így a DNS molekula előállítható a megfelelő DNS fragmensek enzimes ligálásával, szokásos módszerrel, így például a D.M. Roberts et al., Biochemistry 24, 50905098 (1985) irodalmi helyen ismertetett módszerrel.
A DNS fragmenseket előállíthatjuk a kívánt nukleotid-szekvenciákat tartalmazó DNS alkalmas restrikciós enzimekkel végzett emésztésével, kémiai szintézissel, enzimatikus polimerizációval vagy e módszerek kombinációjával.
A restrikciós enzimekkel végzett emésztést alkalmas pufferben, 20 °C és 70 °C közötti hőmérsékleten, általában 50 μΐ vagy ennél kisebb térfogatban, 0,1-10 μφ DNS alkalmazásával hajtjuk végre.
A DNS enzimatikus polimerizációját DNS-polimeráz, például DNS-polimeráz I (Klenow fragmens) segítségével, a szükséges dATP, dCTP, dGTP és/vagy dTTP nukleozid-trifoszfátokat tartalmazó alkalmas pufferben, 10 °C és 37 °C közötti hőmérsékleten, általában 50 μΐ vagy ennél kisebb térfogatban in vitro hajtjuk végre. A fragmensek Taq polimeráz segítségével polimeráz láncreakcióval polimerizálhatok és amplifikálhatók [lásd PCR Protocols 1989 - A Guide to Methods and Applications, kiadó: M.A. Innis et al., Academic Press].
A DNS fragmensek enzimatikus ligálását DNS-ligáz, például T4 DNS-ligáz segítségével, alkalmas pufferben, 4 °C és szobahőmérséklet közötti hőmérsékleten, általában 50 μΐ vagy ennél kisebb térfogatban végezzük.
Az alkalmas puffer kifejezésen a gyártó vagy forgalmazó cég által javasolt puffért értjük.
A DNS molekula vagy fragmensei kémiai szintézisét szokásos foszfodiészter-, foszfit- vagy foszforamidit-módszerrel, szilárd fázisú technikával végezzük, például a következő irodalmi helyeken ismertetett módszerek valamelyikével: Chemical and Enzymatic Synthesis of Gene Fragments - A Laboratory Manual (kiadó: H.G. Gassen és A. Láng), Verlag Chemie, Weinheim (1982); M.J. Gait, H.W.D. Matthes, M.
Singh, B.S. Sproat, R.C. Titmas, Nucleic Acids Research, 10, 6243 (1982); B.S. Sproat és W. Bannwarth, Tetrahedron Letters, 24, 5771 (1983); M.D. Matteucci és M.H. Caruthers, Tetrahedron Letters, 21, 719 (1980); M.D. Matteucci és M.H. Caruthers, Journal of the American Chemical Society, 103, 3185 (1981); S.P. Adams et al., Journal of the American Chemical Society, 105, 661 (1983); N.D. Sinha, J. Biernat, J. McMannus és H. Koester, Nucleic Acids Research, 12, 4539 (1984); H.W.D. Matthes et al., EMBO Journal, 3, 801 (1984). Előnyösen automata DNS-szintetizátort alkalmazunk.
A módosított proteint kódoló DNS polimer a nemmódosított proteint kódoló cDNS helyre irányuló mutagenezisével, szokásos módszerrel állítható elő, így például a következő helyeken ismertett módszerek valamelyikével: G. Winter et al., Natúré, 299, 756-758 (1982); Zoller és Smith, Nucl. Acids. Rés., 10, 6487-6500 (1982).
A találmány tárgykörébe tartozik továbbá a találmány szerinti rekombináns DNS molekulát tartalmazó vektor és az említett vektort tartalmazó vírusból készült rekombináns vakcina.
A vektor a találmány értelmében úgy állítható elő, hogy egy vektort hasítunk, így egy intakt replikont tártál• ·
- 7 mazó lineáris DNS-szegmenst kapunk, majd a kapott lineáris szegmenst és egy vagy több olyan DNS molekulát ligálunk, amely(ek) kiegészítik a találmány szerinti rekombináns DNS molekulát.
A találmány szerinti rekombináns gazdaszervezetet úgy állítjuk elő, hogy egy vakcina vírust egy találmány szerinti vektorral transzformálunk.
A kapott módosított protein terméket a tenyészközegből szokásos protein-izolálási és -tisztítási technikákkal választjuk el. Detergensként például Decyl PEG-300, DO Decyl PEG, Triton X100 valamelyikét alkalmazhatjuk. A sejtek lizálása és a módosított protein sejtmembrán-törmeléktől való megtisztítása érdekében Thesit dezoxikolátot adagolhatunk. Ezek közül a Decyl PEG-300 és a Thesit dezoxikolát előnyös. A módosított proteint azután ultraszűrési, ultracentrifugálási, például ammónium-szulfáttal vagy PEG-gel végzett szelektív kicsapási, CsCl vagy szacharóz vagy metrizamid gradiensen végzett sűrűséggradiens centrifugálási és/vagy kromatograf álási , például affinitás kromatográfiás, előnyösen immunaffinitás kromatográfiás, HPLC, reverz fázisú HPLC, kation- és anioncsere, méretkizárásos kromatográfiás és preparatív izoelektromos fókuszálás! lépések sorozatával tisztíthatjuk. Előnyösen immunaffinitást hasznosító kromatográfiát végzünk. A tisztítás során vagy azt követően a módosított proteint a stabilitás vagy immunogenitás fokozására például formaldehiddel, glutáraldehiddel vagy NAE-val kezelhetjük.
• · · · · * • · ·« ··· · ««««· · ··
A találmány szerinti oligomer forma előállítására a tisztítási lépések során előnyösen enyhe körülményeket alkalmazunk. Különösen redukáló ágensek használatát kell elkerülni, és a sejtlizálás és a kromatográfiás lépések során végzett szolubilizálás során ionos detergensekkel szemben nemionos detergensek, például Decyl PEG 300 [poli(etilénglikol 300)-monodecil—éter] alkalmazása előnyös. Affinitáskromatográfiás közegként előnyösen lencse lektin Sefarose-t, míg immunaf f initás-kromatográf iás közegként előnyösen alkalmas hordozóval, például glutáraldehiddel aktivált Trisacryl-lal (IBF) kapcsolt anti-gpl60 monoklonális antitestet, például 178.1-t (WO 90/06358) alkalmazunk.
A módosított proteint a monoklonális antitesttől oktil-glukopiranozid detergens jelenlétében adszorpcióval választjuk el, a detergens dialízissel eltávolítható. A detergenseket előnyösen elméleti kritikus micella-koncentrációjuknál magasabb koncentrációban alkalmazzuk.
A találmány szerinti eljárással előállított módosított protein alkalmazható diagnosztikai szerként HIV-nek való kitettség detektálására. A módosított protein alkalmazható továbbá vakcinákban a fertőzés megelőzésére vagy a betegség kifejlődésének gátlására vagy megelőzésére.
A találmány továbbá a találmány szerinti módosított proteint tartalmazó vakcinákra és gyógyszerkészítményekre vonatkozik. Az ilyen készítmények a találmány szerinti módosított protein immunprotektív mennyiségét tartalmazhatják és szokásos módszerekkel állíthatók elő.
A találmány szerinti vakcinákban közvetlenül a protein vizes oldatát alkalmazhatjuk. Eljárhatunk úgy is, hogy a proteint - előzetes liofilizálás után vagy anélkül - valamely ismert adjuvánssal keverjük vagy abszorbeálhatjuk. Ilyen adjuvánsok lehetnek például az alumínium-hidroxid, muramil-dipeptid és szaponinok, pl. a Quil A, 3D-MPL (3-dezacetilezett monofoszforil lipid A) és a TDM. Eljárhatunk továbbá úgy is, hogy a proteint mikrorészecskékbe, például liposzómába kapszulázzuk. Egy még további módszer szerint eljárhatunk úgy, hogy a proteint egy immunstimuláló makromolekulával, például elölt Bordetella sejtekkel vagy tetanusz toxoiddal konjugáljuk.
A vakcinák készítésének általános ismertetése található például a New Trends and Developments in Vaccines c. műben (kiadó: Voller et al., University Park Press, Baltimore, Maryland, USA, 1978) . A liposzómába történő kapszulázást ismerteti például a 4 235 877 sz. amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás. A proteinek makromolekulákhoz történő konjugálását ismerteti például a 4 372 945 és a 4 474 757 sz. amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás .
A találmány szerinti módosított protein vakcina dózisonként alkalmazott mennyiségét úgy választjuk meg, hogy az szignifikáns mértékű káros mellékreakciók indukálása nélkül immunprotektív választ váltson ki. Ez a mennyiség attól függ, milyen adott immunogént alkalmazunk, továbbá a vakcina adjuvált-e vagy sem. Általában dózisonként 1-1000 Mg, előnyösen 10-200 Mg módosított proteint alkalmazunk. Az adott
- 10 vakcinában alkalmazandó optimális mennyiséget szokásos módszerekkel, például antitest-titer és más, a kezelt személyben kiváltott válasz alapján határozhatjuk meg. A kezelt személyeknek a kezdő vakcinálás után kb. négy héttel, majd a fertőzés veszélyének fennállásáig minden hatodik hónapban további emlékeztetőt adhatunk.
A találmány tárgya továbbá a találmány szerinti módosított protein alkalmazása vakcina előállítására, valamint vakcinálásra.
A találmány szerinti gyógyszerkész ítmény ek - amellett, hogy HÍV fertőzésre érzékeny személyek vakcinálására alkalmazzuk - alkalmazhatók HÍV fertőzésben szenvedő betegek immunterápiás kezelésére is.
Ennek megfelelően a találmány tárgya továbbá eljárás HÍV fertőzésre érzékeny vagy abban szenvedő személyek kezelésére, aminek során a találmány szerinti módosított gpl60 hatékony mennyiségét adagoljuk.
A rekombináns DNS technikával előállított alegységkomponensek hasznosításának elképzelésével egybeesőén szükség van olyan adjuvánsokra és/vagy hordozókra, amelyek az immunogéneket hatékonyan képesek a kezelt személy immunrendszerének bemutatni úgy, hogy az immunválaszok mindkét formája (az antitest semlegesítése és az effektor sejtek által közvetített immunitás - DTH) kiváltódjék. A találmány szerinti megoldás (azaz a HÍV fertőzések profilaxisa és terápiás kezelése) kidolgozása kapcsán felismertük, hogy egy immunstimuláló csoport, a 3D-MPL képes az immunrendszer mindkét irányú stimulálására.
Ennek megfelelően a találmány szerinti megoldás egy előnyös megvalósítási módja szerint olyan gyógyszerkészítményt: állítunk elő, amely gpl60-t vagy annak immunológiailag egyenértékű származékát és hordozóként 3D monofoszforil lipid A-t (3D-MPL) tartalmaz.
A találmány szerinti megoldás egy előnyös megvalósítási módja szerint a gpl60-t vagy annak immunológiáilag egyenértékű származékát és a 3D-MPL-t olaj-a-vízben emulzió formájában készítjük el. Ez a rendszer fokozott semlegesítő aktivitással rendelkezik.
Ennek megfelelően a találmány értelmében olyan gyógyszerkészítményt, illetve vakcinát állítunk elő, amely gpl60-t vagy annak immuno lóg iái lag egyenértékű származékát és 3D-MPL-t tartalmaz olaj-a-vízben hordozóban, ahol a hordozó egy tetrapoliol és egy nemtoxikus ásványi olaj pufferolt sóoldattal készült emulziója.
A hordozó előnyösen Pluronic poliolt, így például Pluronic L121-t és squalane-t vagy squalene-t vagy más metabolizálható olajat tartalmaz. Az emulzió stabilizálására egy emulgeálőszert, például Tween 80-t vagy Tween 28-t is adagolhatunk.
A hordozó előnyösen csak mikronos méretűnél kisebb, 100 és 400 nm közötti részecskéket tartalmaz.
A végső készítményben az antigén koncentrációja előnyösen 10 Mg/ml és 150 Mg/ml közötti, még előnyösebben 20 Mg/ml és 100 pg/ml közötti.
Az adjuváns koncentrációja a vakcinában előnyösen 10
Mg/ml és 100 Mg/rol közötti, még előnyösebben 25 pg/ml és 50 • · · · *
- 12 ug/ml közötti.
A találmány tárgya továbbá eljárás a vakcinák alkalmazására a gyógyítás terén, különösen HIV-1 fertőzések, AIDS vagy AIDS-szel kapcsolatos komplex betegség (ARC) immunterápiás és profilaktikus kezelésében.
A találmány tárgya továbbá eljárás olyan vakcina előállítására, amely gpl60-t vagy annak immunológiailag egyenértékű származékát, 3D monofoszforil lipid A-t tartalmaz alkalmas hordozó mellett. Az eljárás abban áll, hogy a gpl60-t vagy annak immunológiailag egyenértékű származékát keverjük a hordozóval és 3D monofoszforil lipid A-val.
Egy előnyös megvalósítási mód szerint a találmány szerinti vakcinát olaj-a-vízben hordozóval állítjuk elő, ahol az olaj-a-vízben emulziót mikrofluidizáljuk, így az emulzió mikronnál kisebb részecskéit állítjuk elő, és ezt gpl60-nal vagy annak immunológiailag egyenértékű származékával és 3D-MPL-lel keverjük.
A 3D-MPL-t rendszerint előre elkeverjük az emulzióval, és az így kapott elegyhez keverjük hozzá az antigént.
A 3D-MPL-t a 2 211 502 sz. nagy-britanniai szabadalmi leírás szerinti módon állítjuk elő.
A találmány szerinti megoldás szempontjából előnyösek az olaj-a-vízben típusú emulziós hordozók. A találmány szerinti készítmények a szokásos vakcinakészítményekhez viszonyítva, amelyek adjuvánsként önmagában csak alumínium-hidroxidot alumot (az egyetlen humán adjuvánsként engedélyezett adjuvánst) tartalmaznak, fokozott semlegesítő titert biztosítanak.
• · « · 4 • 4 ··
4· ·«·· •· · · ,4 444*♦
- 13 A ·'immunológiai lag egyenértékű származék kifejezésen a gpl60 olyan immunogén fragmenseit értjük, amelyek 3D monofoszforil lipid A-val adjuválva képesek HIV-1 elleni semlegesítő antitestek termelésének megindítására. Ilyenek például a HIV-1 külső membrán glikoprotein gpl20, a korábbiakban ismertetett módosított gpl60, valamint a természetben előforduló izolált gpl60. Különösen előnyösek azok a származékok, amelyek DTH választ is képesek kiváltani.
így a találmány legelőnyösebben a protein módosított formájának olígomer formájára vonatkozik, amely enyhe, nemredukáló körülmények között végzett tisztítás után 600-700 kDa, előnyösen 640 kDa látszólagos molekulatömeggel rendelkezik, és amely feltehetően a tetramer forma. A tetramer úgy bontható, hogy a proteint SDS gélen nemredukáló körülmények között futtatjuk, így egy 330 kDa molekulatömegű dimert és monomert kapunk. A dimer azután standard redukáló körülmények között monomerré redukálható.
A gpl60 összes fenti formája alkalmazható a találmány szerinti készítményekben.
A gpl60-t és származékait ismert módon állíthatjuk elő. Rendszerint úgy járunk el, hogy a gp!60-t kódoló gént egy alkalmas gazdaszervezetben klónozzuk és kifejezzük. A rekombináns gpl60 (rgpl60) ilyen előállítását a Maniatis et al., Molecular Cloning - A Laboratory Manual; Cold Spring Harbor, 1982 c. műben ismertetett módon végezzük.
A rekombináns DNS molekulák kifejezésére számos eukariota sejt és expressziós rendszer áll rendelkezésre. Ezek közül a legszélesebb körben az élesztő, rovar és emlős rend14 szereket alkalmazzák, a találmány szerinti megoldást azonban nem kívánjuk ezekre korlátozni. Ezek a rendszerek a találmány szerinti rekombináns DNS molekulát, adott esetben egy szelekciós markert és néhány esetben fenntartási funkciókat, így replikációs origót tartalmaznak.
A találmány szerinti megoldásban alkalmazható rovarsejtek például a Drosophila és Lepidoptera sejtek. Alkalmas Drosophila sejtek az SÍ, S2, S3, KC-0 és a D. hydei sejtek. Lásd például Schneider et al., J. Embryol. Exp. Morph. , 27, 353 (1972); Schulz et al. , Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 83,
9428 (1986); Sinclair et al., Mól. Cell. Bioi., 5, 3208 (1985) .
A Drosophila sejteket ismert módon, így például kalcium-f oszfátos kicsapásos, sejtfúziós, elektroporációs vagy vírus átfertőzéses módszerrel átfertőzzük. A sejteket ismert sejttenyésztő módszerekkel tápközegen, így például M3 tápközegen tenyésztjük, amely kiegyensúlyozott sókat és esszenciális aminosavakat tartalmaz. Lásd például Lindquist, DIS, 58, 163 (1982).
A Drosophilában alkalmazható promoterek például az emlős sejt promoterek, így az SV4 0, valamint a Drosophila promoterek, ez utóbbiak az előnyösek. Alkalmazható Drosophila promoterek például a Drosophila metallotionein promoter, a 7 0 kDa hősokk protein promoter (HSP70) és a COPIA LTR. Lásd például DiNocera et al., Proc. Natl., Acad. Sci. USA, 80, 7095 (1983); McGarry et al., Cell, 42, 903 (1985).
Alkalmas Lepidoptera sejtek például a Trichoplusia ni, Spodoptera frugiperda, Heliotis zea, Autographica cali « · * 9 · « · ·· ··· ♦ ··· · · * ·· , «« ««· · fornica, Rachiplusis ou, Galleria melonella, Manduca sexta vagy más olyan sejtek, amelyek Baculovírusokkal, például nukleáris polihedrózis vírussal (NPV), egyszeres nukleokapszid vírussal (SNPV) vagy többszörös nukleokaposzid vírussal (MNPV) fertőzhetők. Előnyös Baculovírusok az NPV és az MNPV, mivel ezek tartalmazzák a polihedrin gén promotert, amely nagymértékben fejeződik ki fertőzött sejtekben. Az alábbiakban részletesen ismertetjük az Autographica californica MNPV vírusát (AcMNPV). Más MNPV vagy NPV vírus is alkalmazható azonban, így a selyemhernyó, Bombyx móri vírusa. A Lepidoptera sejteket a találmány szerinti rekombináns DNS molekulát tartalmazó DNS-sel és fertőző Baculovírus DNS-ével ismert módon átfertőzzük. A sejteket ismert sejttenyésztő módszerekkel különböző tápközegeken, például 10 % borjúembrió-szérummal (FCS) kiegészített TC100 tápközegen [Gibco Europe; Gardiner et al., J. Inverteb. Pathol. 25, 363 (1975)] tenyésztjük. Lásd Miller et al., Genetic Engineering: Principles and Methods, 8. kötet, 277-298. oldal (kiadó: Setlow et al., New York, Plenum, 1986).
A Lepidoptera sejtekben promoterként Baculovírus genom promoterjeit használhatjuk. Előnyös a polihedrin gén promotere, mivel a polihedrin protein a természetben nagyobb mértékben fejeződik ki, mint más Baculovírus proteinek. Előnyös az AcMNPV vírus polihedrin génjének promotere. Lásd Summers et al., TAES Bull. NR 1555, 1987; EP-A-127 839; Smith et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82, 8404 (1985); és EP-A-228 036.
Emlőssejtekben való kifejezéshez a rekombináns DNS • * · ·
- 16 molekulát hasonlóképpen klónozzuk egy klónozó vektorban, majd az emlőssejtek átfertőzésére használjuk. A vektor előnyösen további DNS funkciókat tartalmaz a gén-amplifikáláshoz, így egy DHFR kazettát, továbbá tartalmazhat további funkciókat a szelekcióhoz és/vagy az amplifikáláshoz, így például egy neoitiicin rezisztencia kazettát a G418 szelekciójához. További funkciókat, így például transzkripciós enhanszert szintén alkalmazhatunk. A vektor kívánt esetben tartalmazhat továbbá más, a stabil episzomális fenntartáshoz szükséges funkciókat is, így például szarvasmarha Papillomavírus fenntartási funkciókat. A klónozó vektor előnyösen egy rekombináns emlős vírus lehet, így például vakcíniavírus.
A vakcíniavírus különösen alkalmas vektor, mivel a rekombinánsok egyszerűen konstruálhatok úgy, hogy az idegen gént a vakcínia DNS-ének nemesszenciális területébe integráljuk, így annak fertőzőképessége megmarad. Ha manipuláció sikeres volt, a proteinek Szintetizálódnak, processzálódnak és a fertőzött sejt membránjához szállítódnak. Bár a vakcíniavírus-fertőzés a sejt pusztulásához vezet, kismértékű lízis következik be, és a sejtek többsége érintetlen marad, ami lehetővé teszi, hogy a kívánt proteint a fertőzött sejtekből könnyen extraháljuk. A vakcínia kifejezőrendszert Barrett és munkatársai dolgozták ki [Aids Research and Humar. Retroviruses, 5, 159-171 (1989)].
Alkalmas emlős sejtek a kínai hörcsög petesejt (CHO), NIH3T3, COS-7, CV-I, BHK-21, egér vagy patkány mieloma, HAK, Verő, HeLa, humán diploid sejtek, így például MRC-5 és WI38, továbbá csirke limfoma sejtvonalak. Előnyös a CV-I <···** · « ·· « · «· *♦» · ····· · · · 9 ·« ···*·
- 17 és a BHK-21.
Az átfertőzést és a sejttenyésztést ismert módszerek szerint végezzük. Az emlős sejtek termelése transzgenikus állatokban történő kifejezéssel is végezhető.
A génkifejeződés emlős sejtvonalakban vagy emlős primer sejtekben történő irányítására használható regulátor szekvenciák például az SV40 korai és késői gén promoterek, a metallotionéin promoter, vírus LTR-ek, így például a Rous szarkoma LTR, a Moloney szarkoma vírus (MSV) LTR vagy az egér emlőtumor vírus (MMTV) LTR, továbbá az adenovírus nagy késői promotere és hibrid promoterek, így például egy hibrid BK vírus és adenovírus nagy késői promoter. A kontrollelem régiók szintén tartalmazhatnak lefelé elhelyezkedő funkciókat, így például poliadenilezési régiókat, vagy más funkciókat, így például transzkripciós enhanszer szekvenciákat.
A találmány szerinti eljárásban alkalmazható élesztők például a Hansenula, Pichia, Kluveromyces, Schizosaccharomyces, Candida és Saccharomyces nemzetségbe tartozó élesztők. Előnyösen Saccharomyces cerevisiaet. alkalmazunk. Alkalmas promoterek a rézzel indukálható (CUP1) promoter, glikolitikus gén promoterek, például TDH3, PGK és ADH, valamint PHO5 és ARG3 promoterek. Lásd Miyanohara et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 80, 1 (1983); Mellor et al., Gene, 24, 1 (1983); Hitzeman et al. , Science, 219, 620 (1983); Cabezon et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 81, 6594 (1984).
A találmány szerinti megoldást a következő példákkal szemléltetjük.
·♦··
1. példa (i) Módosított qp!60 kifejezése CV-I sejtekben
A BH10 molekuláris klón HÍV env génjét mutagenizáltuk a prekurzor hasításának megszüntetésére.
E célból a Lys-Alá-Lys-Arg és Arg-Glu-Lys-Arg hasítási szekvenciák-at helyspecifikus mutagenezissei módosítottuk:
1. hasítási hely 2. hasítási hely (502. hely) (510. hely)
BH10 AAG GCA AAG AGA AGA GTG GTG CAG AGA GAA AAA AGA
klón: Lys Alá Lys Arg Arg Val Val Gin Arg Glu Lys Arg
mutáltuk: 1 1 1
AAG GCA GAG AGA AGA GTG GTG CAG AGA GAA GAA AGA
Lys Alá Glu Arg Arg Val Val Gin Arg Glu Glu Arg
A teljes mutagenizált env gént (5802-8478 nukleotidok) klónoztuk a pGS20 vakcínia plazmid transzfer vektorba [Mackett M.G. , Smith L. és Moss Β. , J. Virology, 49, 857-864 (1984)], és rekombinációval fertőző vakcíniavírusba vittük be. A rekombináns vakcínia plakkokat env-kifejeződésre nézve átvizsgáltuk EIA-val, és a pozitív plakkokat kétszer újraklónoztuk CV-I sejtekben. A nemhasított gpl60 termelését ezekben a sejtvonalakban RIPA-val igazoltuk a rekombináns vakcíniákkal fertőzött sejtek metabolikus jelzésével. A sejtfelületi kifejezést az érintetlen sejtek felületének anti-gpl20 antitestekkel való fluoreszcens jelzésével igazoltuk.
• ·· ·*
- 19 (ii) A módosított gpl60 tisztítása Anchorage-függő sejtekből
Az (i) pont szerinti módon kapott HÍV gpl60 burokproteint egy háromlépéses eljárással tisztítottuk: a gazdasejteket lizáltuk, az antigént egy detergenssel extraháltuk, majd kétszer affinitás-kromatográfiának vetettük alá. A tisztítási lépéseket 4 ’C-on hajtottuk végre.
1. lépés: a CV-1 sejtek lízise és a gp!60 antigén extrakciója
Felolvasztás után 2Q 1 tenyészetnek megfelelő sejtszuszpenziót és mikrohordozó gyöngyöket 2200 g-vel 15 percig centrifugáltunk, és a felülúszót elöntöttük. A csapadékot 1
1, 150 mmol/1 nátrium-kloriddal, 1 tömeg% polietilénglikol 300 monodeciléterrel (Decyl PEG) és 20 Mg/ml aprótinnal kiegészített 30 mmol/l-es Tris-HCl (pH=8) pufferben újraszuszpendáltuk. A sejteket 1 óra hosszat jégen tartva és időnként kézzel felrázva lizáltuk, majd 11 300 g-vel 20 percig centrifugáltuk. A felülúszó elválasztása után a csapadékot 400 ml lizáló pufferrel mostuk, és 11 300 g-vel 20 percig centrifugáltuk. A sejtmaradékokat és a mikrohordozó gyöngyöket eldobtuk, és az összesített felülúszókat tovább tisztítottuk.
2. lépés: affinitás-kromatográfia lencse-lektines Sepharose
4B oszlopon
A fenti lizátumot 150 mmol/1 nátrium-kloriddal és
0,1 tömeg% Decyl PEG-gel kiegészített, 30 mmol/l-es Tris-HCl * ·* ··»· ·· • · · · · * • · ·· ··· · ···· · · · · · • ·· ··· ··
- 20 (pH=8) pufferrel kiegyenlített lencse-lektines Sepharose 4B oszlopon (2,5 cm x 20 cm; Pharmacia-LKB gyártmány) kromatograféltük. Miután a lizátumot 1 ml/perc sebességgel felvittük, az oszlopot 1 mol/l-es nátrium-kloriddal és 0,1 tömeg% Decyl PEG-gel kiegészített, 30 mmol/l-es Tris-HCl (pH=8) pufferrel mostuk. Ezután az antigént az oszlopról 0,5 mol/1 metil-a-D-mannopiranozidot tartalmazó kiegyenlítő pufferrel eluáltuk, és a gpl60-ra nézve pozitív frakciókat összegyűjtöttük. A mosást és eluálást 5,5 ml/perc átfolyási sebességgel végeztük.
3. lépés: irmunaff initás-kromatoqráf ia 178.1-triszakrilon Anti-gpl60 monoklonális antitest 178.1-t (lásd
WO 90/06358 számon nyilvánosságra hozott nemzetközi szabadalmi bejelentés) aszciteszből tisztítottuk protein G-Sepharose oszlopon (Pharmacia-LKB gyártmány) , majd glutáraldehiddel aktivált triszakrillái (IBF gyártmány) kapcsoltuk a gyártó cég útmutatása szerint. Az antitestet, amely a V3 hurok antigén gpl20 részén levő epitop ellen irányul, 1,5 mg/ml-gél sűrűségnél kapcsoltuk.
A gyantát egy 2,5 cm x 10 cm méretű oszlopba töltöttük, és 150 mmol/1 nátrium-kloriddal és 0,1 tömeg% Decyl PEG-gel kiegészített 30 mmol/l-es Tris-HCl oldattal kiegyenlítettük.
A lencse-lektines Sepharose 4B oszlopról kapott eluátumot egy éjszakán át 1 ml/perc sebességgel cirkuláltatva az oszlopra töltöttük. Ezután az oszlopot 3,3 ml/perc sebességgel 20 oszloptérfogat mennyiségű 30 mmol/l-es Tris-HCl :
- 21 (pH=S) pufferrel mostuk, a puffért 1 mol/1 nátrium-kloriddal és 1 tömeg% n-oktil-B-D-glükopiranoziddal (OGP) egészítettük ki. Végül az antigént ugyanilyen sebességgel adagolt, 1 tömeg% OGP-vel kiegészített 0,1 mol/l-es citromsav-pufferrel (pH=3,3) eluáltuk. Az eluált frakciókat azonnal semlegesítettük 1 mol/l-es Tris-HCl (pH=8,8) pufferrel, és az antigénre nézve pozitív frakciókat összegyűjtöttük.
( ii i) A protein meghatározása
A protein koncentrációját Bradford módszerével (Bradford, 1976) határoztuk meg, standardként szarvasmarha szénimalbumint alkalmaztunk.
(ív) Az antigén meghatározása
A gpl60 antigén mennyiségét juh anti-gp41-t mint kötő monoklonális antitestet és rágcsáló anti-gpl20-t mint indikátor monoklonális antitestet tartalmazó szendvics ELISA segítségével mértük. A detektálást klasszikus biotinilezett anti-egér antitest - streptavidin - peroxidáz rendszerrel végeztük.
(v) Poliakrilamid-gél elektroforézis és Westernfoltképzés
SDS-gél lapon történő elektroforézist végeztünk %-os poliakrilamid gélen Laemmli módszerével (Laemmli,
1970) . Vándorlás után a proteineket periodikus oxidálás után végzett ezüst-festéssel tettük láthatóvá (PAS-festés) (Dubray et al., 1982).
Az elektroforetikus futtatásokat redukálószer jelenlétében, illetve anélkül végeztük. A protein-foltokat azután nitrocellulózon Western-foltképzéssel, Towbin módszerével azonosítottuk (Towbin et al., 1979), antitest-próbaként vagy gpl60 antigén elleni, vagy a gazdasejt (CV-1) elleni, vagy a vakcínia protein elleni antitesteket alkalmaztunk.
(vi) 178.1 monoklonális antitest átjutása
A 178.1 monoklonális antitest jelenlétét a tisztított gpl60 antigénben ELISA-val mértük. Antitesteket kapcsoltunk kecske-anti-egér antitesttel, és biotinilezett anti-egér antitesttel detektáltuk. A további detektálást streptavidin-peroxidáz rendszerrel végeztük.
(vii) A tiszta env qpl60 méretkizárásos kromatográfiája
A tisztított gpl60-t 1 tömeg% OGP-vel kiegészített, 0,2 mol/l-es foszfátpufferrel kiegyenlített TSK 4000 SW HPLC oszlopon (7,5 m x 300 mm) tisztítottuk. Az átfolyási sebesség 0,75 ml/perc volt, és a frakciókat ELISA-val vizsgáltuk az antigénre nézve.
(viii) A tisztaság meghatározása
A tisztaságot minden tisztítási lépés után meghatároztuk SDS-polakrilamid-gél elektroforézissei, redukáló körülmények között. A proteinfoltokat PÁS festéssel tettük láthatóvá, és Western-foltképzéssel azonosítottuk.
A kapott eredmények világosan mutatták, hogy az antigén immunaffinitás oszlopon végzett kromatografálás után nem tartalmaz detektálható mennyiségű szennyező proteint. A végtermék azonban szennyezve lehet nyomnyi mennyiségű monoklonális antitesttel, amely az immunaffinitás oszlopról távozik. Ezért ELISA-val mértük a 178.1 antitest mennyiségét a tiszta gpl60-ban, és úgy találtuk, hogy ennek mennyisége a minta teljes proteintartalmára vonatkoztatva 0,004-0,02 tömegé.
A tisztított antigént a gpl60 oligomer formáinak jelenlétére nézve is megvizsgáltuk. Az oligomerek képződése a gpl60 vírusban kialakuló szerkezetére utalhat, ahol a burok proteinek a virion felületénél szegek formájában összeszerelődnek. Az antigén primer szekvenciájában jelenlevő ciszteinek lehetővé teszik a (homo) oligomerek képződését diszulfid-hidak kialakulása által. Ezt β-merkaptoetanol jelenlétében vagy anélkül végzett SDS-polakrilamid-gél elektroforézissel mutattuk ki. Redukálószer nélkül az antigén 160 000 Da-nál nagyobb molekulatömegű proteinfoltokat adott, még detergens (SDS) jelenlétében is. Ezzel szemben, ha az antigént redukálószer jelenlétében forraltuk, egyetlen 160 kDa proteinfolt volt megfigyelhető. Az oligomer szerkezetek méretének meghatározására az antigént HPLC méretkizárásos kromatográfiával elemeztük. Az oszlop ismert molekulatömegű standardokkal végzett kalibrálásából az következett, hogy a gpl60 molekulák legtöbbje a 640 000 Da molekulatömegnek megfelelő retenciós idővel eluálódott. Ebből arra következtettünk, hogy detergens jelenlétében, de redukálószer nélkül a HÍV gpl60 burokprotein tetramer formába szerelődik össze.
(ix) Elemzés
A végtermék antigén/protein aránya kb. 2, ami a lizátum ELISA tartalmával egyezik (a tenyészlében literenként 0,8-1,4 mg antigén ELISA-val mérve).
2. példa
Módosított qpl60 kifejezése BHK-21 sejtekben és a
CTP160 burokprotein tisztítása a szuszpenzióban tenyésztett sejtekből
A BHK-21 sejtekben az 1. példa (i) pontja szerinti módon rekonbináns vakcíniavírussal kifejezett HÍV gpl60 burokproteint az 1. példa (ii) pontja szerinti módon tisztítottuk, kisebb módosítással a lizáló lépésben.
1. lépés: BHK-21 sejtek lizálása és a qp!60 antigén extrahálása
Felolvasztás után a sejtszuszpenziót (109 sejt) 2200 g-vel 15 percig centrifugáltunk, és a felülúszót elöntöttük. A csapadékot 50 ml, 150 mmol/1 nátrium-kloriddal, 1 tömeg% polietilénglikol 300 monodeciléterrel (Decyl PEG) és 20 gg/ml aprotinnal kiegészített 30 mmol/l-es Tris-HCl (pH=8) pufferben újraszuszpendáltuk. A sejteket 1 óra hosszat jégen tartva és időnként kézzel felrázva lizáltuk, majd 11 300 g-vel 15 percig centrifugáltuk. A felülúszó elválasztása után a csapadékot 20 ml lizáló pufferrel mostuk, és 11 300 g-vel 15 percig centrifugáltuk. A csapadékot eldobtuk, és a kombinált felülúszókat tovább tisztítottuk.
2. és 3. lépés: ezeket és az elemzéseket az 1. példa (ii) (ix) lépésének megfelelően végeztük.
3. példa gpl60 - 3D-MPL vakcina készítmények előállítása (a) rpgl60-alumíniun-hidroxid plusz 3D-MPL
Az 1. példa szerinti módon előállított rpgl60-t (dózisonként 100 Mg, illetve 20 Mg) egy éjszakán át 4 °C-on adszorbeáltattunk 0,5 pg-ekvivalens Al+-nak megfelelő alumínium-hidroxidra (alun) 1 ml 150 mmol/1 nátrium-klórid-tartalmú 10 mmol/l-es foszfát-pufferben (pH=6,8). Egy éjszakán át végzett inkubálás után az adjuvált készítményt centrifugáltuk, és a felülúszót eltávolítottuk. Ezután az alumra kötött rgpl60-hoz azonos térfogatú, 100 μς 3D-MPL-t tartalmazó adszorpciós puffért adtunk. Az rgpl60-nak több mint a 95 %-a adszorbeálódott az alumínium-hidroxidra.
3(b) rqpl60 - 3D-MPL olaj-a-vízben umolzió
A hordozóanyagot a következőképpen készítettük. 5 térfogat% Pluronic L121-t (BASF Wyandotte, New Jersey gyártmány) és 10 térfogat% squalane-t (Aldrich gyártmány) hozzáadtunk 0,4 térfogata Tween 80-t tartalmazó, foszfáttal pufferőit sóoldatba (PBS) . Az elegyet mikrofluidizáltuk. A mikrofluidizáláshoz az emulziót tízszer cirkuláltattuk egy mikrofluidizáló berendezésben (M110 model, Microfluidics Corp., Newton, Massachusetts gyártmány) . A kapott emulzió csak mikronnál kisebb részecskéket tartalmazott. Az emulzió egy tér26 fogategységét azonos térfogatú kétszer koncentrált rpgl60nal (vagy 20 pg, vagy 100 pg) kevertük, és rövid ideig örvénykeveréssel kevertük a komponensek teljes elkeveredésének biztosítására. Ezután 100 Mg/ml 3D-MPL-t adtunk ehhez az rpgl60 o/w emulzióhoz. A végtermék 0,2 tömeg% Tween 80-t, 2,5 tömeg% Pluronic L121-t, 5 tömeg% squalane-t, 100 pg
3D-MPL-t és rgpl60-t (100 pg, illetve 20 pg) tartalmazott 1 ml injekciós dózisban.
4. példa
Immunogenitás tengerimalacban
ELISA és semlegesítő titer
Öt tengerimalacot immunizáltunk egyhónapos időközönként 3 injekció 1. példa szerinti módon előállított 50 pg módosított gpl60-nal SAF-l-ben [szintetikus adjuvánskészítmény-1; Byars N.E. és Allison A.C., Vaccine, 5, 223-227 (1987)]. A szérumokat a második immunizálás után 2 héttel, illetve 1 hónappal, valamint a harmadik immunizálás után 2 héttel vizsgáltuk. Az eredményeket a 2. táblázatban foglaltuk össze.
A HIV-1 (Illb)-vei fertőzött sejtek lizátumán alapuló kapcsoló enzim immunvizsgálattal (EIA) határoztuk meg az első és második provokálás utáni antiszérumok ELISA titerét. A vizsgálatot a Moore et al. által ismertetetthez [Moore J.P. et al., AIDS, 3, 155 (1989)] hasonló módon végeztük.
A mikrotitráló lemezen végzett semlegesítési teszt a
HÍV gag antigén indikátor sejtekben való detektálásán alap27 szik. Indikátor sejtekként SupTl sejteket [Hecht et al., Science, 226, 1445 (1984)] alkalmaztunk. Virális inokulumként HIV-1 (Illb)-termelő limfoid sejtvonal sejtmentes felülúszóját alkalmaztunk. A felülúszót nagy sebességgel centrifugáltuk a sejtek és a sejttörmelék eltávolítására, 1 ml alikvotokat fioláikba töltöttünk, és felhasználásig -80 °C-on tároltuk. A vizsgálandó szérumokat a vizsgálat előtt 56 °Con 30 percig hőkezelve inaktiváltuk. Negatív kontrollként az állatoktól immunizálás előtt vett, illetve csak adjuvánssal inokulált (a vizsgálattal azonos fajba tartozó) állatok összegyűjtött szérumát használtuk. Semlegesítéshez 750 TCID5Q-t 1 óra hosszat 37 °C-on inkubáltunk néhányszor kétszeres hígítású szérumokkal. Ezután SupTl sejteket (4.10^ sejt/mélyedés) adtunk hozzá, és négy napig 37 ’C-on inkubáltuk. A citopatikus hatást mikroszkóppal figyeltük meg, 1 térfogat% végső koncentrációig Triton Χ-100-t adtunk minden mélyedéshez, és a lemezt fagyasztottuk. Szendvics ELISA-val figyeltük a tenyészetekben termelt vírus antigén relatív mennyiségét. A lemezekre anti-p55 monokionális antitestet vittünk fel. A fenti, Triton Χ-100-zal kezelt mintákat inkubáltuk, és a gag antigén jelenlétét biotinilezett HIV-1 + humán IgG-k, majd streptavidin és peroxidáz alkalmazásával láthatóvá tettük. Azután a HIV-1 antigén termelésének a kontrolihoz viszonyított százalékos csökkenését minden szérumhígítás esetén kiértékeltük. A kapott adatokhoz a nemlineáris legkisebb négyzetanalízissel illő görbe alapján extrapolálással meghatároztuk a kontrolihoz képest 50 % csökkenést adó szérumhígítást.
A 2. táblázat a harmadik immunizálás után kapott semlegesítő titer értékeket mutatja.
Úgy találtuk, hogy a második provokálás után megfigyelt semlegesítő titerek meghaladják a fertőzött személyek szérumában mértet. Pontosabban a HlV-l(IIIb) izolátumok elleni antiszérumok semlegesítő titere átlagosan négyszer magasabb, mint öt szeropozitív WHO referenciaszérum titere [McKeating et al., J. Gén. Virol., 70, 3326-3333 (1989)]. Egy sorozat HIV-1 izolátum semlegesítését (keresztsemlegesítését) Dr. Weiss laboratóriuma (Chester Beatty Laboratories, Nagy-Britannia) vizsgálta egy szigorúbb semlegesítési teszttel, ami alacsonyabb szenzitivitást és titereket adott. A 3. táblázatban látható eredményeket három alkalommal két különböző tenyészettel ismételtük meg, és jó keresztsemlegesítő reakciót kaptunk különböző HIV-1 törzsekkel, többek között egy afrikai törzzsel (CBL-4) . Lásd a 3. táblázatot.
Az 1. példa szerinti módon előállított gpl60 vakcinával immunizált tengerimalacoktól vett szérumok (01-05) jó keresztsemlegesítő titereket mutattak a harmadik immunizálás után.
A három dózis után megfigyelt erős keresztsemlegesítő válasz alapján a találmány szerinti gpl6O vakcina potenciálisan a HIV-1 elleni vakcinálásra alkalmasnak tekinthető.
5. példa
Különböző vakcina készítményeknek tisztított HÍV vakcínia rekomhináns qpl60 (Illb izolátum) immunogenitására gyakorolt hatásának vizsgálata Rhesus majmok esetén
A vizsgálatban a különböző vakcináknak a tisztított rekombináns gpl60 (rgpl60) immunogenitása fokozására gyakorolt hatását Rhesus majmokban (Macaca mulatta) értékeltük ki. Adjuvánsként alumínium-hidroxidot (Alhydrogel, Superfos, Dánia) alkalmaztunk 3D-MPL-lel (3D monofoszforil lipid A, Ribi gyártmány) kombinálva (2b példa) , 3D-MPL ólaj-a-vízben emulzió formájában (2a példa).
3,5-5 kg testtömegű Rhesus majmokat (Macaca mulatta) véletlenszerűen 3-4 fős csoportokba osztottunk. A. csoportokat három adjuváns készítménnyel kialakított, különböző rgp!60 készítményekkel immunizáltuk a következőképpen:
1.
csoport (4 majom) : 100 rgp!60 plusz 3D-MPL alumínium-hidroxidon abszorbeálva;
csoport (4 majom) : 2 0 Mg rgp!60 plusz 3D-KPL alumínium-hidroxidon abszorbeálva;
3.
csoport (4 majom) : 100 μg rgpl60 plusz 3D-MPL o/w emulzió;
4.
csoport (4 majom) : 20 μg rgp!60 plusz 3D-KPL o/w emulzió.
5.1. Antigén-adiuváns készítmények
Az rgpl60 készítményeket közvetlenül használat előtt készítettük. A dózisokat 1 ml térfogatban injektáltuk. A kü• · · · ·
- 30 lönböző rgpl60-injekciókat intramuszkulárisan adtuk be a háromfejű karizomba a 0. és a 35. napon. A második immunizálás után két héttel az állatoktól vért vettünk az antitest-meghatározáshoz .
5.2. Eredmények
A második injekciózás után két héttel az állatoktól vett szérumot ELISA és semlegesítési vizsgálatokban vizsgáltuk.
5.3. ELISA
A Thiriart et al. által ismertetett [Thiriart et al., J. Immunoi., 6, 1832-1836 (1989)] megkötő immunvizsgálat egy módosított formáját alkalmaztuk. A vizsgálat kereskedelemben kapható monospecifikus gp41 reagenst (Biochrom) hasznosít. Antigénként vakcínia gpl60-nal fertőzött BHK 21 sejtek nyers lizátumát alkalmaztuk.
5.4. Semlegesítési vizsgálat
A mikrotitráló lemezen végzett semlegesítési vizsgálat alapja a HÍV gag antigén detektálása indikátorsejtekben. Indikátorsejtekként SupTl sejteket [Hecht et al., Science, 226, 1445 (1984)] alkalmaztunk. Virális inokulumként HÍV—1 (Illb) -termelő limfoid sejtvonal sejtmentes felülúszóját alkalmaztuk. A felülúszót nagy sebességgel centrifugáltuk a sejtek és a sejttörmelék eltávolítására, 1 ml alikvotokat fiolákba töltöttünk, és felhasználásig -80 °C-on tároltuk. A vizsgálandó szérumokat a vizsgálat előtt 56 °C-on percig hőkezelve inaktiváltuk. Semlegesítéshez 750 TCID5Q-t 1 óra hosszat 37 °C-on inkubáltunk néhányszor kétszeres hígítású szérumokkal. Ezután SupTl sejteket (2.104 sejt/mélyedés) adtunk hozzá, és négy napig 37 °C-on inkubáltuk. A citopatikus hatást mikroszkóppal figyeltük meg, 1 térfogat% végső koncentrációig Triton Χ-100-t adtunk minden mélyedéshez, és a lemezt fagyasztottuk. Szendvics ELISA-val figyeltük a tenyészetekben termelt vírus antigén relatív mennyiségét. A lemezekre anti-p55 monoklonális antitestet vittünk fel. A fenti, Triton Χ-100-zal kezelt mintákat inkubáltuk, és a'gag antigén jelenlétét biotinilezett HIV-1 + humán IgG-k, majd streptavidin és peroxidáz alkalmazásával láthatóvá tettük. Azután a HIV-1 antigén termelésének a kontrolihoz viszonyított százalékos csökkenését minden szérumhígítás esetén kiértékeltük. A kapott adatokhoz a nemlineáris legkisebb négyzetanalízissel illő görbe alapján extrapolálással meghatároztuk a kontrolihoz képest 50 % csökkenést adó szérumhígítást.
5.5. Eredmények
A 4. táblázatban a második immunizálás után kapott ELISA és semlegesítő titer értékeket foglaltuk össze. A HÍV rgplöO általános immunogenitása 3D-MPL o/w-ben igen jó. Ha az állatoknak 20 Mg gpl60 dózist adtunk, a semlegesítő titer és az ELISA titer különösen jó volt azon állatok csoportjában (4. csoport), amelyeknek rgpl60-t 3D-MPL o/w-ben adagoltunk. Ezek az adatok arra utalnak, hogy a 3D-MPL o/w emulzió különösen jó adjuváló hatással rendelkezik. Az alu mínium-hidroxidra adszorbeált gpl60-nal immunizált állatok immunválasza 3D-MPL jelenlétében gyenge, bár termelnek némi semlegesítő antitestet. A HÍV gpl60 egy hidrofób csoportot tartalmaz, és ez valószínűleg hozzájárul ahhoz, hogy a molekula nagy affinitást mutat a lipidek iránt. A HÍV gpl60 legjobban úgy mutatható be az immunrendszernek, hogy 3D-MPLt tartalmazó olaj-a-vízben emulzióban adagoljuk.
6. példa
6.1. A kísérlet vázlata
Két csimpánzt (1. és 2. számú állat) az 1. példa szerinti módon előllított tisztított vakcínia rekombináns gpl60-nal (rgpl60) immunizáltunk (100 ^g/dózis).
Két csimpánzt (3. és 4. számú állat) Drosophila Schneider sejtekben kifejezett 100 Mg/dózis tisztított rekombináns gpl20-szal (rgpl20) [Culp et al., Biotechnology, 9, 173-177 (1991) 1 immunizáltunk.
A rekombináns protein készítményeket 3D-MPL-lel (100 Mg/dózis) o/w emulzióban készítettük el. A készítmények 0,2 tömeg% Tween 80-t, 2,5 tömeg% Pluronic L121-t, 5 tömeg% squalane-t, 100 pg 3D-MPL-t és rekombináns antigént (100 μg rgpl60, illetve rgpl20 1 ml injekció-térfogatban) tartalmaztak.
Az állatokat a lábukon intramuszkulárisan immunizáltuk a 0., 1. és 2 . hónapban.
f·»
- 33 Az állatoktól minden második héten vért vettünk, és meghatároztuk az ELISA és semlegesítő titert (ELISA módszert lásd 4.3. példában; a HÍV semlegesítési vizsgálatot kissé módosítottuk, lásd alább). Az elhalasztott típusú hiperszenzitivitási választ (DHT) szintén kiértékeltük az alábbi módon.
6.2. Humorális immunitás indukálása
Amint az 5. táblázatból látható, az rgpl60, illetve rgpl20 3D-MPL o/w emulziójával vakcináit csimpánzok három immunizálás után magas ELISA és semlegesítő titert mutattak. A semlegesítő aktivitás négy szérumból háromban már két injekciózás után, míg további injekciózás után mind a négyben ki volt mutatható. A semlegesítő titer emelkedése a harmadik immunizálás után volt megfigyelhető. Az így mért ELISA és semlegesítő titerek nagyon hasonlóak az rgpl60-nal háromszor immunizált Rhesus-majmok esetén mértekkel.
6.3. DTH indukálása
A DTH-teszteket a harmadik immunizálás után két héttel végeztük. Az injekciókat 100 μΐ mennyiségben a hasba adagoltuk.
Két rgpl60-nal és két rgpl20-szal immunizált állaton három különböző antigénnel (rgpl60, rgD26, tetanusz toxoid) és két kontroll pufferrel (rgD2t kontroll puffer (PBS) és rgpl60 kontroll puffer) bőrpróbát végeztünk. Különböző rekombináns antigén dózisokat vizsgáltunk: rgpl60 esetén 40, 20 és 10 Mg, rgD2t esetén 20, 10 és 5 Mg.
• ·
- 34 A DTH válaszokat 24 órával később értékeltük ki a bőr vastagságának mérésével.
Tetanusz toxoid és rgpl60 elleni specifikus DTH válasz volt megfigyelhető mind az rgpl60-nal, mind az rgpl20-szal vakcinázott állatok esetén.
Ezek az eredmények arra utalnak, hogy o/w emulzióban 3D-MPL-t tartalmazó készítmények specifikus T-sejt választ képesek indukálni (lásd 6. táblázatot).
A csimpánzok esetén kapott eredmények azt mutatják, hogy a 3D-MPL-t olaj-a-vizben típusú emulzióban tartalmazó készítmények szignifikánsan javítják a humorális (semlegesítő antitestek) és effektor sejtek által közvetített (DTH) immunválasz kialakulását emlősökben.
Semlegesítési vizsgálat
A mikrotitráló lemezen végzett semlegesítési vizsgálat az indikátor sejtekben HIV-1 fertőzéssel indukált CPE vizuális kiértékelésén alapszik. Indikátorsejtekként SupTl sejteket [Hecht et al., Science, 226, 1445 (1984)] alkalmaztunk. Virális inokulumként HIV-1 (Illb)-termelő limfoid sejtvonal sejtmentes felülúszóját alkalmaztuk. A felülúszót nagy sebességgel centrifugáltuk a sejtek és a sejttörmelék eltávolítására, 1 ml alikvotokat fiolákba töltöttünk, és felhasználásig -80 °C-on tároltuk. A vizsgálandó szérumokat a vizsgálat előtt 56 °C-on 30 percig hőkezelve inakriváltuk. Negatív kontrollként az állatok immunizálás előtt összegyűjtött vérét alkalmaztuk. Semlegesítéshez 750 TCID5Q-t 1 óra hosszat 37 °C-on inkubáltunk kétszeres sorozathígítású szé• · «4· · rumokkal. Ezután SupTl sejteket (2.104 sejt/mélyedés) adtunk hozzá, és négy napig 37 °C-on inkubáltuk. A citopatikus hatást mikroszkóppal figyeltük meg a negyedik napon, és a semlegesítési titereket vizuálisan értékeltük ki. Az adott semlegesítő titerek a szincítium-képződésben az immunizálás előtti kontrolihoz képest 80 %-os csökkenést mutató szérumhigítások reciprokának felelnek meg. A vizuálisan megfigyelt titereket a 7. napon tovább pontosítottuk úgy, hogy az egyes mélyedésekben MTT vizsgálattal [Pauwels et al., J. Virol. Methods, 20, 309-321, (1988)] mértük a sejtek életképességét. Az ezen vizsgálatban meghatározott titerek a CPE ellen a nemfertőzött sejtekhez viszonyítva 80 %-os védelmet biztosító szérumhígítások reciprokát jelentik. A vizuálisan és MTT módszerrel meghatározott titerek nagymértékben megfelelnek egymásnak, és az MTT módszerrel mért titerek kétszer-négyszer alacsonyabbak, mint a vizuálisan meghatározottak.
- 36 1. táblázat
CV-1 és BHK-21 sejtekben kifejeződött
HÍV crnl60 tisztítása
1 1 | Tisztítási | 1 1 Térfogat | Ossz- r | Protein | 1 Antigén |
| lépés | (ml) | protein | kiterm. | kiterm. |
1 1 1 I (mg) 1 (%> 1 I I (%) 1 I
| | 1 cv-1 (I) 1 1 1 1 1 1 1 1 1
| Lízis 1 1400 | 2000 1 ιθθ 1 100 |
| Lencse-lektin | 350 | 100 1 5 I 80 |
| Immunaffinitás | I 1 60 | I 8 1 0,4 | I I 65 | I
1 1 | BHK-21 (2) | 1 1 1 1 1 1 1
j Lízis 1 1480 1 2688 1 100 1 íoo |
| Lencse-lektin | 495 | 113 1 4 I 79 |
| Immunaffinitás | 1 1 60 | 1 7 1 0,3 | —1 L 58 1 1
(1): kiindulási anyagként 20 1 tenyészet
(2): kiindulási anyagként 14 1 tenyészet (2,1 x 1010 sejt)
- 37 ·· «·<« ·· * « · · «
-4 **·♦ • 49*9 • 4 4*444
2. táblázat
GP160 IMMUNOGENITÁSA TENGERIMALACBAN
Η
CQ Η ff
Η Η > ο ο χτ > σ>
Η C ο οο η m Γ-
Η μ m σ> ιο ο ιο ο
χ-ζ ιη Ν rl Φ Ν (Ν
0 γΗ
μ (f
φ
+J ----------—.
•Η
Ό ο > 'f ιη ο >
Ό X! ο η σι σχ ο η
γΗ Η rl (*) Η Η Η
V0 Η rH V V
Ν Η
•Η
γΗ μ
(0 ω ff
μ ο <0 η ιη ιη <-> η σι
μ & C co Ό Ί* ιη σ» ν
Η Η Μ* (*) Η (Ν
Φ ιη
a Η
H
χ-^ Η ff σ η •u· ν η
γΗ Η (0 co > ιη ν m ο
C ιη σι ν η ο ν
•μ » σι Η Η > ο
μ ω ιη η > ιη ό η- χί
φ 0 rH Η Η Η rH γΗ
ff
•Η
μ
> > ιη co ο
Η Ό ν σι ν > ιη η
Μ χ Μ Ό Π «-Ι Ό 00
ο 10 Ο ι£> C0 Γ·»
> Η γ-1 (Ν Η (Ν CM Η
Η Η
1 μ
Ή ω ff οο οο ο ιη >*
μ ο φ ιη xj ιη ο · ό
C Cf C ιο οο οο σ\ w η-
η ν ιη ιη . ιη
ιη (Ν <Ν CM 00 C Ν
γ-Η
44
0
-μ (Ü Η
(0 e Η m οο ιη S
rH μΌ ο ο ο ο ο U
<—1 Ν
νί ω
·«>. ιη χ-χ
C C (0 ·
ιφ * - νβ S Η -
tp ω > Ο ·Η ff θ' ι-Ι
•Η ·Η 0 ΙΟ Ο =11
+J Ν ΤΙ Η 44 · tf
C Ό Ό ff (β Η Ο <
< Τ5 <β tp > ιη w
-P (0 Ό <0 ω υ c •Η
C
Ό <C
4->
Φ 'Φ
P
Q o in o >1 r-1 Φ β Λ φ
Μ Φ > C •Η φ mű -μ ιΗ tP Ή
Μ 'Φ
Ν ω c ο
Ν <0 χ“>
(0 γΗ
C
- 38 3. táblázat gpl60-ra adott tengerimalac szérum semlegesítő. aktivitása homológ (Illb) és heterológ izolátumokra
1 1 CBL-4 | 1 1 1 1 1 οτ ! 1 - 1 1___1 Ο rH ο rH 1 10 1 Ι___________________1 1 οτ 1 1___________________________________________________________________1 Ο γΗ Ο rH V Ο γΗ ο Μ· 1 10 | 1_____________________________________________________1 ο 00 1
ό) ο
N 1 I 1 I 1 1 I 1 | ό I
értő rH
Ή
θ' ο
Ό ο ο ο rH ο
rH 1 rH | 1 rH 1 1 rH 1 V 00 I
0
L ο
Φ
P
Φ
K ο
CJ rH
V ο ο ο ο ο ο ο ο ο ο
ω 00 Oi rH rH Μ1 1
ο cn
rH
U)
σ> 'φ
Ό Ν
rH ο ο ο ο ο ο Ο Ο ο Ο ο
Λ 0 Ρ 00 Μ· 00 C0 00 ΙΟ CM 4* Ό |
Η β Ρ V rH γΗ
Η 0 φ
Η X!
γΗ
> >
óh ν-Η
ο ο ο ο ο ο Ο ο ο Ο Ρ Ρ
σ> σ\ ο σχ σ' σι σι σι σι σι •Η 01
Q Ν θ'
ιη ιη ΙΛ ιη ιη ιη ιη ιη ιη ιη Ο φ
Η ο ο ο ο ο ο ο ο ο ο Λ β
\
οι CN Μ* Μ· C β
4J ο Ο ο ο Ο rH rH rH rH rH OJ Ό1
C § g
rH ΓΊ ιη Η CN cn xj· ιη ρ
ο Ο ο ο ο Ο Ο ο ο ο ÍC S
pozitív semlegesítő hatás a vizuálisan megfigyelt szincítium képződés 90 %-os gátlása
• · »· ··· ν ···· * « 9 · · • ·ί ··· *.»
4. táblázat Rekombináns qpl60 vakcina immunoqenitása Rhesus-ma ή mokban
1------------------------------------------------------------------------------1--------------------------------------------------------------------------------------------------1 1 1 1 1 1 1 1 . 1 1 1! ELISA és semlegesítő titerek |
| 15 nap 1 Post II |
1 | Csoport 1 1 | 1 1 | Adj./dózis 1 1 1 1 I I 1 | Azonosító 1 1 I | 50 % NT* 1 1 I | | ELISA** | | középérték | | titer |
1 1 i 1 1 | Alum 3D 1 1 IP 111 1 | < íoo 1 1 1 576 1
1 | MPL/100 pg | IP 123 | < íoo 1 301 |
1 1 1 IP 151 | < íoo 1 411 |
1 1 1 IP 167 | < íoo 1 630 |
1 1 1 I I GMT 1 1 | 460 | 1 1
1 1 1 2 1 1 1 Alum 3D | 1 1 IP 101 1 | < íoo 1 1 | 1871 |
1 1 MPL/20 pg IP 103 | < íoo 1 1641 |
1 1 1 IP 105 | < íoo | 1437 |
1 i 1 1 IP 196 1 < 100 1 94 |
1 1 1 1 GMT 1 I 1 802 | I I
1 1 1 3 1 1 1 3D MPLOW I 1 | IP 120 1 1 486 1 1 | 9043 |
1 , 1 ioo Mg 1 IP 125 1 282 1 5537 |
1 1 1 1 [ IP 150 | 285 | 3981 |
1 1 1 1 | IP 152 | 918 | 10629 |
1 1 1 I I | GMT I | 435 I | 6789 | I I
1 1 1 4 1 1 1 | 3D MPLOW | 1 IP 114 1 | 462 1 1 | 5413 |
1 1 | 20 Mg | IP 117 1 576 | 5220 |
1 1 1 1 IP 118 | < 100 | 2529 |
1 ! 1 1 IP 197 | 804 | 5268 |
1 1 1 1 1 1 1 1 GMT 1 | 322 1 1 4404 | 1 1
* A kontrolihoz viszonyítva 50 % antigéntermelést adó szérumhígítás reciproka ** A maximális abszorbancia érték (középérték titer) %-ának megfelelő abszorbanciát adó szérumhígítás reciproka
GMT: geometrikus átlag titer
5. táblázat
Anti-HIV antitest válasz rgpl60-nal és rqpl20-szal vakcinázott csimpánzok esetén
Μ
Φ •Η
Ρ Ρ
•Η ΙΛ C
μ Ο φ
I <—ι
14 <λ» φ
μ Ο
μ 00 Ρ
Ν
a C C Φ
φ ο
1O Ν h Ρ \
rH :0 fi Ρ Ο
Φ 14 φ Ο
r-4 Ν ω ΓΜ
Φ ω
M-l Φ fi r-l
cn 14 ι—1 >. 3
Φ 0 (0 σ> χφ
fi μ > φ Ό
Λ 'Φ ί~|
* •Η W Ρ
Φ υ χφ ο η<
c φ Ρ 14
χφ Μ φ φ
I Λ 14 Ρ r—1
ΙΛ Ο 0) Φ
χφ (0 Ρ Ρ
o μ 3 α •*4 14
in χΗ 14 Η Ρ •Η
θ' •Η υ Ό
14 Ή μ φ ο Φ
ό XS φ μ Ρ 14
P e & τΗ Ν
μ Ρ Ο m Π) Φ
ό Μ ρ νο φ >1
φ •Η μ cn r—1
•H Ν υ Ή φ Φ
0 W θ' ^4 Λ
c fi Ή e
Φ Ό JS φ Ρ
Ρ Ρ μ fi m Ρ
μ <0 3 :0
o Ρ ι-Η μ φ Ν
N 3 Ο χφ
ω fi Ν Ν > 14
Λ •Η (0 cn
φ Ρ ο
Χφ γ4 ο Λ χφ
W •Η Ό Ρ
•Η Ο > Φ Ή
<—1 C Η —Η CP
χφ <0 Κ μ Ν χΗ
e Λ Φ ι—1 £!
•Η μ Λ fi Φ ε
X ο Η r-4 -τ-> 3
<0 Ν Η φ Μ
e ω Η Ό Ρ
Λ χφ Ν Ν
(0 <0 Φ > Φ ω
• · • · ..
ρ Ρ —_
φ φ
Ρ μ
•Η •Η
μ μ
ω ,—I
Η fi
Φ
Μ ω
hogy a titer 200 és 400 között van
6. táblázat
Anti-HSV antitestválasz vakcinázott csimpánzok esetén

Claims (30)

  1. Szabadalmi igénypontok
    1. HÍV gpl60 protein módosított formában, amely az 502. és 510. helyzetben egymástól függetlenül lizintől és arginintől eltérő aminosavakat tartalmaz.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti HÍV gpl60 protein, azzal jellemezve, hogy az 502. és 510. helyzetben hisztitidint, treonint, szerint, aszparagint, aszpartinsavat, glutamint vagy glutaminsavat tartalmaz.
  3. 3. Az 1. vagy 2. igénypont szerinti HÍV gpl60 protein, azzal jellemezve, hogy az 502. és 510. helyzetben glutaminsavat tartalmaz.
  4. 4. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti HÍV gpl60 protein, azzal jellemezve, hogy oligomer vagy dimer formában van.
  5. 5. A 4. igénypont szerinti oligomer, azzal jellemezve, hogy relatív molekulatömege mintegy 640 kDa.
  6. 6. Az 1-6. igénypontok bármelyike szerinti Hív gpl60 protein vagy annak oligomer vagy dimer formája, azzal jellemezve, hogy lényegében véve tiszta formában van.
  7. 7. Vakcinakészítmény, azzal jellemezve, hogy valamely az 1-6. igénypontok bármelyike szerinti proteint vagy annak oligomerjét tartalmaz farmakológiailag elfogadható hordozó mellett.
  8. 8. Gyógyszerkészítmény, azzal jellemezve, hogy valamely az 1-6. igénypontok bármelyike szerinti proteint vagy annak oligomerjét tartalmaz farmakológiailag elfogadható hordozó mellett.
  9. 9. Vakcina- és gyógyszerkészítmények, azzal jellemezve, hogy gpl60-t vagy annak immunológiailag egyenértékű származékát és 3D monofoszforil lipid A-t tartalmaznak alkalmas hordozó mellett.
  10. 10. A 9. igénypont szerinti vakcina- és gyógyszerkészítmények, azzal jellemezve, hogy gpl60 immunológiailag egyenértékű származékaként valamely az 1-8. igénypontok bármelyike szerinti proteint vagy oligomert tartalmaznak.
  11. 11. A 9. vagy 10. igénypont szerinti vakcinakészítmények, azzal jellemezve, hogy hordozóként olaj-a-vízben típusú emulziót tartalmaznak.
  12. 12. A 11. igénypont szerinti vakcinakészítmények, azzal jellemezve, hogy 10-150 gg/ml gpl60-t tartalmaznak.
  13. 13. Az 1-8. igénypontok bármelyike szerinti HÍV gpl60 protein vagy annak oligomerje gyógyászatban való alkalmazása .
  14. 14. A 9-12. igénypontok bármelyike szerinti vakcinakészítmény gyógyászatban való alkalmazása.
  15. 15. Az 1-8. igénypontok bármelyike szerinti HÍV gpl60 proteinnek vagy oligomerjének az alkalmazása HIV-1 fertőzés kezelésére szolgáló vakcina előállítására.
  16. 16. A 15. igénypont szerinti alkalmazás HÍV fertőzések profilaktikus kezelésére.
  17. 17. Eljárás az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti módosított HÍV gpl60 protein előállítására, azzal jellemezve, hogy az említett proteint kódoló DNS-szekvenciát egy rekombináns eukarióta gazdasejtben kifejezzük, és a módosí tott proteint kinyerjük.
  18. 18. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti módosított proteint kódoló DNS-szekvencia.
  19. 19. Eljárás módosított gpl60 4. vagy 5. igénypont szerinti oligomer és diner formáinak előállítására, azzal jellemezve, hogy a módosított proteint egy rekombináns eukarióta sejtből izoláljuk, és nemredukáló körülmények között tisztítjuk.
  20. 20. Eljárás vakcinakészítmény előállítására, azzal jellemezve, hogy gpl60 proteint vagy annak valamely immunológiailag egyenértékű származékát 3D monofoszforil lipid A-val és farmakológiailag elfogadható hordozóval keverve vakcínakészítménnyé alakítunk.
  21. 21. Eljárás HÍV fertőzésre fogékony személyek profilaktikus kezelésére, azzal jellemezve, hogy valamely az 1-3. igénypont szerinti vegyület hatékony mennyiségét adagoljuk.
  22. 22. Eljárás HÍV fertőzésre fogékony személyek profilaktikus kezelésére, azzal jellemezve, hogy valamely a 9-12. igénypontok bármelyike szerinti vakcina hatékony mennyiségét adagoljuk.
  23. 23. Eljárás HÍV fertőzött személyek kezelésére, azzal jellemezve, hogy valamely az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti vegyület hatékony mennyiségét adagoljuk.
  24. 24. A 9. igénypont szerinti vakcinakészítmény, azzal jellemezve, hogy immunológiailag egyenértékű származékként gpl20-t tartalmaz.
  25. 25. A 24. igénypont szerinti vakcinakészítmény, azzal jellemezve, hogy ólaj-a-vízben típusú emulzió formájában van.
  26. 26. A 24. vagy 25. igénypont szerinti vakcinakész ítmény, azzal jellemezve, hogy 10 - 150 ug/ml gpl20-t tartalmaz.
  27. 27. A 24-26. igénypontok bármelyike szerinti vakcinakészítmény gyógyászatban való alkalmazása.
  28. 28. A 20. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy immunológiailag egyenértékű származékként gpl20-t alkalmazunk.
  29. 29. Eljárás HÍV fertőzésre fogékony személyek profilaktikus kezelésére, azzal jellemezve, hogy valamely a 24-2 6. igénypontok bármelyike szerinti vakcina hatékony mennyiségét adagoljuk.
  30. 30. Eljárás HÍV fertőzött személyek kezelésére, azzal jellemezve, hogy valamely a 24-26. igénypontok bármelyike szerinti vakcina hatékony mennyiségét adagoljuk.
HU9302642A 1991-03-21 1991-10-25 Derivatives opf gp160 and vaccines based on gp160 or a derivative thereof, containing an adjuvant HUT67011A (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB919106048A GB9106048D0 (en) 1991-03-21 1991-03-21 Vaccines

Publications (1)

Publication Number Publication Date
HUT67011A true HUT67011A (en) 1995-01-30

Family

ID=10691984

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9302642A HU9302642D0 (en) 1991-03-21 1991-10-25 Gp 160-derivatives and vaccine containing them or gp-160 itself
HU9302642A HUT67011A (en) 1991-03-21 1991-10-25 Derivatives opf gp160 and vaccines based on gp160 or a derivative thereof, containing an adjuvant

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9302642A HU9302642D0 (en) 1991-03-21 1991-10-25 Gp 160-derivatives and vaccine containing them or gp-160 itself

Country Status (12)

Country Link
CN (1) CN1064891A (hu)
AP (1) AP368A (hu)
BR (1) BR9107294A (hu)
CZ (1) CZ195793A3 (hu)
FI (1) FI934133A (hu)
GB (1) GB9106048D0 (hu)
HU (2) HU9302642D0 (hu)
IL (1) IL99899A0 (hu)
MA (1) MA22381A1 (hu)
SK (1) SK82593A3 (hu)
WO (1) WO1992016556A1 (hu)
YU (1) YU174491A (hu)

Families Citing this family (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB9105992D0 (en) * 1991-03-21 1991-05-08 Smithkline Beecham Biolog Vaccine
US6620414B2 (en) 1992-03-27 2003-09-16 Smithkline Beecham Biologicals (S.A.) Hepatitis vaccines containing 3-0-deacylated monophoshoryl lipid A
WO1994021292A1 (en) * 1993-03-23 1994-09-29 Smithkline Beecham Biologicals (S.A.) Vaccine compositions containing 3-o deacylated monophosphoryl lipid a
GB9326253D0 (en) * 1993-12-23 1994-02-23 Smithkline Beecham Biolog Vaccines
GB9706957D0 (en) 1997-04-05 1997-05-21 Smithkline Beecham Plc Formulation
GB9820525D0 (en) 1998-09-21 1998-11-11 Allergy Therapeutics Ltd Formulation
GB0000891D0 (en) 2000-01-14 2000-03-08 Allergy Therapeutics Ltd Formulation
CN1304580C (zh) * 2004-07-09 2007-03-14 楼伟 重组表达人获得性免疫缺陷病毒I型的表面糖蛋白gp160
ES2355980T3 (es) * 2004-07-23 2011-04-01 Novartis Vaccines And Diagnostics S.R.L. Polipeptidos para ensamblaje oligomerico de antigenos.
KR101359930B1 (ko) 2004-09-22 2014-02-12 글락소스미스클라인 바이오로지칼즈 에스.에이. 스태필로코쿠스에 대한 예방접종에 사용하기 위한 면역원성조성물
EP3118221B1 (en) 2007-02-26 2019-08-21 Oxford BioTherapeutics Ltd Proteins
WO2008104803A2 (en) 2007-02-26 2008-09-04 Oxford Genome Sciences (Uk) Limited Proteins
WO2010084408A2 (en) 2009-01-21 2010-07-29 Oxford Biotherapeutics Ltd. Pta089 protein
US20120282177A1 (en) 2009-11-02 2012-11-08 Christian Rohlff ROR1 as Therapeutic and Diagnostic Target
LT2726094T (lt) 2011-06-28 2017-02-10 Oxford Biotherapeutics Ltd Gydymo ir diagnozavimo objektas
GB201213364D0 (en) 2012-07-27 2012-09-12 Glaxosmithkline Biolog Sa Purification process
GB201213652D0 (en) 2012-08-01 2012-09-12 Oxford Biotherapeutics Ltd Therapeutic and diagnostic target
GB201302447D0 (en) 2013-02-12 2013-03-27 Oxford Biotherapeutics Ltd Therapeutic and diagnostic target
US20180071380A1 (en) 2015-03-20 2018-03-15 The Regents Of The University Of Michigan Immunogenic compositions for use in vaccination against bordetella
IL299285A (en) 2016-05-16 2023-02-01 Access To Advanced Health Inst Formulation containing a TLR agonist and methods of use
IL313085A (en) 2016-05-16 2024-07-01 Access To Advanced Health Inst Pegylated liposomes and methods of use

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IL89567A0 (en) * 1988-03-28 1989-09-10 Univ Leland Stanford Junior Mutated hiv envelope protein

Also Published As

Publication number Publication date
CZ195793A3 (en) 1994-05-18
CN1064891A (zh) 1992-09-30
FI934133A0 (fi) 1993-09-21
FI934133A (fi) 1993-09-21
GB9106048D0 (en) 1991-05-08
YU174491A (sh) 1994-06-10
SK82593A3 (en) 1994-01-12
AP9100332A0 (en) 1992-01-31
HU9302642D0 (en) 1994-01-28
MA22381A1 (fr) 1992-07-01
WO1992016556A1 (en) 1992-10-01
IL99899A0 (en) 1992-08-18
BR9107294A (pt) 1994-06-14
AP368A (en) 1994-10-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HUT67011A (en) Derivatives opf gp160 and vaccines based on gp160 or a derivative thereof, containing an adjuvant
WAGNER et al. Construction, expression, and immunogenicity of chimeric HIV-1 virus-like particles
OA12168A (en) Vaccine for the prophylactic or therapeutic immunization against HIV.
WO1996030523A2 (en) Antigen presentation system based on retrovirus-like particles
HUT65366A (en) Expression of specific immunogens using viral antigens
SG184188A1 (en) Hiv vaccine
AU654970B2 (en) Derivatives of gp160 and vaccines based on gp160 or a derivative thereof, containing an adjuvant
EP0519001B1 (en) PURIFIED gp120 COMPOSITION RETAINING NATURAL CONFORMATION
EP0565794A1 (en) Induction of CTL responses
US5876724A (en) Induction of neutralizing antibody against viral infection by synergy between virus envelope glycoprotein and peptides corresponding to neutralization epitopes of the glycoprotein
AU731706B2 (en) Recombinant viral pseudo-particles and vaccinal and antitumoral applications thereof
WO2003046137A2 (en) Hiv envelope v3-ccr5 binding site immunogen
AU651816B2 (en) Induction of protection against viral infection
US20120039923A1 (en) Modified HIV-1 Envelope Proteins
AU759220B2 (en) Gene deleted recombinant FeLV proviral DNA for production of vaccines against FeLV
EP0328390B1 (en) Peptide treatment of refractory infectious diseases
WO1992000098A1 (en) Methods of inducing immune response to aids virus
WO2003073984A2 (en) Tat as an immunogen
WO2010043259A1 (en) Virus-like particles presenting hiv-1 envelopes, and methods for mucosal and sublingual immunization against hiv-1 using the same

Legal Events

Date Code Title Description
DFD9 Temporary protection cancelled due to non-payment of fee