FI76377C - MICROBIOLOGICAL FRAMSTAELLNINGSMETOD. - Google Patents

MICROBIOLOGICAL FRAMSTAELLNINGSMETOD. Download PDF

Info

Publication number
FI76377C
FI76377C FI870147A FI870147A FI76377C FI 76377 C FI76377 C FI 76377C FI 870147 A FI870147 A FI 870147A FI 870147 A FI870147 A FI 870147A FI 76377 C FI76377 C FI 76377C
Authority
FI
Finland
Prior art keywords
xylose
xylitol
yeast
medium
growth
Prior art date
Application number
FI870147A
Other languages
Finnish (fi)
Swedish (sv)
Other versions
FI870147A0 (en
FI76377B (en
Inventor
Heikki Ojamo
Lasse Ylinen
Matti Linko
Original Assignee
Farmos Oy
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Farmos Oy filed Critical Farmos Oy
Priority to FI870147A priority Critical patent/FI76377C/en
Publication of FI870147A0 publication Critical patent/FI870147A0/en
Priority to PCT/FI1987/000162 priority patent/WO1988005467A1/en
Priority to JP63500556A priority patent/JPH02502333A/en
Priority to EP88900367A priority patent/EP0344163A1/en
Publication of FI76377B publication Critical patent/FI76377B/en
Application granted granted Critical
Publication of FI76377C publication Critical patent/FI76377C/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/02Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
    • C12P7/04Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
    • C12P7/18Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic polyhydric
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16Yeasts; Culture media therefor
    • C12N1/165Yeast isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/72Candida

Description

7637776377

Mikrobiologinen valmistusmenetelmä - Mikrobiologisk framställ-ningsmetod Tämän keksinnön kohteena on mikrobiologinen menetelmä ksylitolin valmistamiseksi ksyloosipitoisista seoksista hii-vakantaa Candida guilliermondii VTT-C-71006 käyttäen.The present invention relates to a microbiological process for the preparation of xylitol from xylose-containing mixtures using the hii strain Candida guilliermondii VTT-C-71006.

Ksylitolia valmistetaan teknisessä mittakaavassa tavallisesti siten, että hydrolysoidaan hemiselluloosapitoisia materiaaleja, esimerkiksi koivupuuta, jolloin saadaan pen-toosirikasta hydrolysaattia. Hydrolysaatin ksyloosi voidaan sitten hydrata katalyyttisesti ksylitoliksi.Xylitol is usually prepared on a technical scale by hydrolyzing hemicellulose-containing materials, for example birch wood, to give a pentose-rich hydrolyzate. The xylose in the hydrolyzate can then be catalytically hydrogenated to xylitol.

Myös mikrobiologisia menetelmiä ksylitolin valmistamiseksi on ennestään tunnettu. Julkaisussa H.Onishi & T.Suzuki, "The production of Xylitol, L-Arabinitol and Ribitol by Yeasts", Arg.Biol.Chem., Voi. 30, No. 11, s. 1139-1144, 1966, on kuvattu ksylitolin mikrobiologista muodostusta ksyloosi-pitoisesta liuoksesta hiivalajilla Candida guilliermondii. Raaka-aineena käytetyn liuoksen ksyloosin alkupitoisuus oli 10 paino-%. Ksylitolin saannoksi ilmoitettiin 40,3 %. Kanta Candida guilliermondii VTT-C-71006 on deponoitu kantakokoel-maan National Collection of Yeast Cultures (NCYC), Norwich, Englanti, 17.12.1986 numerolla NCYC-1644.Microbiological methods for preparing xylitol are also known. In H.Onishi & T.Suzuki, "The production of Xylitol, L-Arabinitol and Ribitol by Yeasts", Arg.Biol.Chem., Vol. 30, no. 11, pp. 1139-1144, 1966, describes the microbiological formation of xylitol from a xylose-containing solution in the yeast species Candida guilliermondii. The initial xylose content of the raw material solution was 10% by weight. The yield of xylitol was reported to be 40.3%. Strain Candida guilliermondii VTT-C-71006 has been deposited with the National Collection of Yeast Cultures (NCYC), Norwich, England, on 17 December 1986 under number NCYC-1644.

Candida guilliermondii VTT-C-71006 omaa seuraavat morfologiset ja fysiologiset ominaisuudet:Candida guilliermondii VTT-C-71006 has the following morphological and physiological characteristics:

Morfologiset tunnusmerkit:Morphological characteristics:

Makroskooppinen morfologia: mallasuute (3 g/1)-hiivauute (3 g/1)-glukoosi (10 g/l)-pepto-ni (5 g/1)-agarilla (20/1) (MYGP(-agar) pehmeitä, kiiltäviä, valkoisia/vaaleankeltaisia pesäkkeitä halkaisijaltaan 1-2 mm.Macroscopic morphology: malt extract (3 g / l) yeast extract (3 g / l) -glucose (10 g / l) -peptone (5 g / l) agar (20/1) (MYGP (agar) soft , glossy, white / light yellow colonies 1-2 mm in diameter.

Mikroskooppinen morfologia: solut MYGP-liuoksessa liikkumattomia, hieman soikeita, mitoiltaan 2-5 x 7-3 /um. Joissakin olosuhteissa pseudomyseelin muodostusta .Microscopic morphology: cells in MYGP solution immobile, slightly oval, measuring 2-5 x 7-3 / μm. In some conditions, pseudomycel formation.

2 763772 76377

Fysiologiset ominaisuudet:Physiological properties:

Fysiologiset ominaisuudet määritettiin kuten kuvataan kirjassa N. J .W.Kreger-van Rij, "The Yeasts - a taxonomic study" 3rd edition. Elsevier Science Publishers B.V., Amsterdam 1984, s. 76-.Physiological properties were determined as described in N.J.W.Kreger-van Rij, "The Yeasts - a taxonomic study" 3rd edition. Elsevier Science Publishers B.V., Amsterdam 1984, pp. 76-.

Fermentointi: glukoosi + sakkaroosi + raffinoosi ? galaktoosi ? maltoosi laktoosi ksyloosiFermentation: glucose + sucrose + raffinose? galactose? maltose lactose xylose

Assimilointi: glukoosi + sakkaroosi + maltoosi + sellobioosi + raffinoosi + ksyloosi + laktoosi tärkkelys nitraatti -inositoliAssimilation: glucose + sucrose + maltose + cellobiose + raffinose + xylose + lactose starch nitrate inositol

Keksinnön mukaisen menetelmän mukaan viljely suoritetaan siten, että kantaa Candida guilliermondii VTT-C-71006 viljellään edullisesti ilmastetuissa olosuhteissa ksyloosia sisältävässä kasvatusalustassa, jonka ksyloosipitoisuus vaihtelee 5-50 paino-%:iin lämpötilassa 20-40 °C ajan, joka vaihtelee 20 tunnista 10 vuorokauteen. Viljelyssä muodostunut ksylitoli voidaan hiivanpoiston jälkeen ottaa talteen jollakin sinänsä tunnetulla menetelmällä.According to the method of the invention, the culture is carried out in such a way that the strain Candida guilliermondii VTT-C-71006 is preferably cultured under aerated conditions in a medium containing xylose with a xylose content of 5 to 50% by weight at 20 to 40 ° C for 20 hours to 10 days. . The xylitol formed in the culture after yeast removal can be recovered by any method known per se.

Sopivia raaka-aineita ovat mitkä tahansa ksyloosipitoi-set seokset, esimerkiksi hemiselluloosapitoisten materiaalin hydrolyysissä saadut ksyloosirikkaat seokset.Suitable raw materials are any xylose-containing mixtures, for example xylose-rich mixtures obtained by hydrolysis of hemicellulose-containing material.

Fermentointiliuoksessa hiivan N-lähteenä voidaan käyttää 3 76377 erilaisia ammoniumsuoloja sekä kasvutekijöiden lähteenä esim. hiivauutetta, prosessissa tuotettua hiivaa tai kasviperäistä uutetta. Olennaista on hiivan hapensaannin rajoittaminen. Säätämällä sekoitus- ja ilmastusolosuhteet optimiin saadaan ksylitolia jopa 78 %. Erittäin korkeissa ksyloosin alkupi-toisuuksissa prosessi hidastuu. Prosessia voidaan kuitenkin nopeuttaa tavanomaiseen panosprosessiin verrattuna jopa 40 % siirtymällä ns. fed-batch-kasvatukseen, mikä tarkoittaa, että prosessin aikana lisätään fermentoriin ravinteita.In the fermentation broth, 3 76377 different ammonium salts can be used as the N-source of yeast, as well as e.g. yeast extract, yeast produced in the process or plant-derived extract as a source of growth factors. It is essential to limit the oxygen supply to yeast. By adjusting the mixing and aeration conditions to the optimum, up to 78% xylitol is obtained. At very high initial concentrations of xylose, the process is slowed down. However, the process can be accelerated by up to 40% compared to the conventional batch process by moving to the so-called fed-batch culture, which means that nutrients are added to the fermenter during the process.

Kokeissamme viljely suoritettiin sekä fermentorissa että ravistelukasvatuksissa eri ksyloosipitoisuuksilla ja erilaisilla ilmastustehokkuuksilla.In our experiments, cultivation was performed in both fermentor and shake cultures with different xylose concentrations and different aeration efficiencies.

Kasvatusalustan koostumus oli: ksyloosi 40 - 300 g/1 hiivauute 10 g/1The composition of the culture medium was: xylose 40-300 g / l yeast extract 10 g / l

Bactopeptoni 3 g/1Bactopeptone 3 g / l

Kokeissamme todettiin yllättäen, että furfuraalin lisäys vaikutti edullisesti ksylitolin saantoon. Aikaisemmin on pidetty furfuraalin läsnäoloa mikrobiologisissa prosesseissa pelkästään haitallisena, sillä furfuraali estää hiivan kasvua. Hiivan kasvun estäminen on sinänsä toivottua tämän tapaisissa menetelmissä, sillä hiivan kasvu kuluttaa raaka-aineita, mikä tulee näkyviin ksylitolimäärän laskuna. Yllättävää oli kuitenkin se, ettei furfuraali kokonaan inhiboinut hiivan toimintaa, vaan toimi ksylitolin tuottoa edistävänä tekijänä. Kirjallisuuden mukaan furfuraali häiritsee yleensä sekä kasvua että fermentointiprosessia (esim. N.Banerjee et ai, European J.Appi.Microbiol.Biotechnol. 1981, 11:226-228).In our experiments, it was surprisingly found that the addition of furfural had a beneficial effect on the yield of xylitol. In the past, the presence of furfural in microbiological processes has been considered to be purely harmful, as furfural inhibits yeast growth. Inhibition of yeast growth is inherently desirable in such methods, as yeast growth consumes raw materials, which is reflected in a decrease in xylitol. Surprisingly, however, furfural did not completely inhibit yeast function but acted as a promoter of xylitol production. According to the literature, furfural generally interferes with both growth and the fermentation process (e.g., N. Banerjee et al., European J.Appi.Microbiol.Biotechnol. 1981, 11: 226-228).

Tässä menetelmässä todettiin, että hiivan kasvua ja sitä seuraavaa ksylitolisaannon pienenemistä voidaan rajoittaa lisäämällä furfuraalia fermentointiliuokseen 0,2-1,0 g/1.In this method, it was found that the growth of yeast and the subsequent decrease in xylitol yield can be limited by adding furfural to the fermentation broth at 0.2-1.0 g / l.

Furfuraalin käyttö mikrobiologisten prosessien edistämiseksi ei rajoitu ksylitolin tuottamiseen ksyloosista yllä kuvatulla menetelmällä. On selvää, että tätä havaintoa voidaan myös soveltaa muissa mikrobiologisissa prosesseissa, joiden tarkoituksena ei ole itse mikrobin tuotto vaan mikrobin kasvusta riippumattomien aineiden tuotto, esimerkiksi biotrans-formaatioissa.The use of furfural to promote microbiological processes is not limited to the production of xylitol from xylose by the method described above. It is clear that this observation can also be applied to other microbiological processes, the purpose of which is not the production of the microbe itself but the production of substances independent of the growth of the microbe, for example in biotransformations.

4 763774 76377

Kasvatuksen aikana määritettiin hiivakonsentraatio sa-meusmittauksin, ksyloosipitoisuus määrittämällä pelkistävien yhdisteiden pitoisuus sekä ksylitolin muodostuminen kvalitatiivisesti ohutlevykromatografiällä ja kvantitatiivisesti nestekromatografiällä tai entsymaattisella menetelmällä.During the culture, the yeast concentration was determined by turbidity measurements, the xylose content by determining the content of reducing compounds and the formation of xylitol qualitatively by thin-layer chromatography and quantitatively by liquid chromatography or enzymatic method.

Keksinnön mukaisella menetelmällä on monta etua verrattuna tunnettuihin menetelmiin. Näistä voidaan mainita esimerkiksi : - korkea ksylitolisaanto, 50-78 %, ksyloosipitoisuudesta riippuen. Alussa mainittu tekniikan tasoon kuuluva menetelmä antoi vain 40,3 %:n ksylitolisaannon, vaikka ksyloosin lähtö-pitoisuus oli vain 10 %. Meidän menetelmäämme soveltaen vastaavalla ksyloosin alkupitoisuudella saatiin 74 %:n saanto.The method according to the invention has many advantages over known methods. These include, for example: high xylitol yield, 50-78%, depending on the xylose content. The prior art process mentioned at the beginning gave a yield of xylitol of only 40.3%, although the starting content of xylose was only 10%. Applying our method, a yield of 74% was obtained with the corresponding initial xylose content.

- On mahdollista käyttää korkeita ksyloosin alkupitoisuuksia. Tällä seikalla on suuri teknis-taloudellinen merkitys. Raaka-aineen ksyloosin alkupitoisuudella 300 g/1 saatiin jopa 50 %:n ksylitolisaanto.- It is possible to use high initial xylose concentrations. This fact is of great technical and economic importance. With an initial xylose content of the raw material of 300 g / l, a xylitol yield of up to 50% was obtained.

- Tällä menetelmällä tuotettu ksylitoli on puhdas ja soveltuu siten varsin hyvin elintarvikekäyttöön. Katalyyttisellä hydrauksella tuotettu ksylitoli saattaa sisältää jäännöksiä myrkyllisestä katalyytistä. Keksinnön mukainen menetelmä on myös taloudellisempi, sillä katalyytit ovat kalliita ja kuluvat prosessissa.- The xylitol produced by this method is pure and thus quite suitable for food use. Xylitol produced by catalytic hydrogenation may contain residues of the toxic catalyst. The process according to the invention is also more economical, since the catalysts are expensive and wear out in the process.

- Tämä menetelmä on lisäksi hyvin spesifinen, sillä hiiva-kanta Candida guilliermondii VTT-C-71006 muuttaa ksyloosin ainoastaan ksylitoliksi. Katalyyttisessä hydrauksessa voidaan sen sijaan saada ksylitolin lisäksi sivutuotteita, jotka vaikeuttavat puhdistusta.- This method is also very specific, as the yeast strain Candida guilliermondii VTT-C-71006 only converts xylose to xylitol. In addition to xylitol, by-products can be obtained in catalytic hydrogenation, which make purification difficult.

Eeuraavissa esimerkeissä kuvataan lähemmin keksinnön mukaista menetelmää.The following examples describe in more detail the method according to the invention.

Esimerkki 1;Example 1;

Kasvatetaan aseptisesti Candida guilliermondii VTT-C-71006 kantaa ravisteluviljelmänä 100 ml:n liuostilavuudessa 250 ml:n astiassa. Kasvatuslämpötila on 28 °C. Kasvatusalusta sisältää 80 g/1 ksyloosia, 10 g/1 hiivautetta sekä 3 g/1 Bactopeptonia. Kasvatusalustan pH säädettiin arvoon 5,0. Siir-rosteena käytettiin 1 ml yli yön MYGP-alustalla kasvanutta kasvustoa. Kahden vuorokauden kasvatuksen jälkeen ksyloosi 5 76377 on kulunut loppuun ja ksylitolipitoisuus on 50 g/1. Ksyloosi määritettiin pelkistävinä sokeireina ja ksylitoli nestekro-matograafisesti. Ksylitolisaanto oli näin ollen 62,5 %. Esimerkki 2:Aseptically grow Candida guilliermondii strain VTT-C-71006 as a shake culture in a 100 ml solution volume in a 250 ml vessel. The growth temperature is 28 ° C. The medium contains 80 g / l xylose, 10 g / l yeast and 3 g / l Bactopeptone. The pH of the medium was adjusted to 5.0. 1 ml of overnight MYGP medium was used as inoculum. After two days of culture, the xylose 5 76377 is depleted and the xylitol content is 50 g / l. Xylose was determined as reducing blinds and xylitol was determined by liquid chromatography. The xylitol yield was thus 62.5%. Example 2:

Toistettiin esimerkissä 1 kuvattu menetelmä, alkuksyloo-sipitoisuudessa 300 g/1. Kuuden vuorokauden jälkeen ksyloosi oli kulunut loppuun ja ksylitolipitoisuus oli 150 g/1, mikä vastaa 50 %:n saantoa.The procedure described in Example 1 was repeated, with an alkyloyl content of 300 g / l. After six days, the xylose was consumed and the xylitol content was 150 g / l, corresponding to a yield of 50%.

Esimerkki 3;Example 3;

Toistettiin esimerkissä 1 kuvattu menetelmä, mutta lisättiin kasvualustaan furfuraalia pitoisuuteen 0,6 g/1. Ksylitolipitoisuus 53 tunnin kasvatuksen jälkeen oli 61 g/1 (saanto 76 %).The procedure described in Example 1 was repeated, but furfural was added to the medium to a concentration of 0.6 g / l. The xylitol content after 53 hours of growth was 61 g / l (yield 76%).

Esimerkki 4:Example 4:

Kasvatetaan aseptisesti esimerkissä 1 mainittua kantaa fermentorissa kasvatusalustalla, joka sisältää 100 g/1 ksy-loosia, 10 g/1 hiivauutetta sekä 3 g/1 Bactopeptonia. Kasvatusalustan pH säädettiin arvoon 5,0 ja sekoitusnopeus arvoon 400 rpm sekä ilmastus noin 0,5 g/min. 50 tunnin kasvatuksen jälkeen ksyloosi oli kulunut loppuun. Ksylitolipitoisuudeksi saatiin 74 g/1 (saanto 74 %).The strain mentioned in Example 1 is aseptically grown in a fermentor on a medium containing 100 g / l of xylose, 10 g / l of yeast extract and 3 g / l of Bactopeptone. The pH of the medium was adjusted to 5.0 and the stirring speed to 400 rpm and aeration to about 0.5 g / min. After 50 hours of culture, the xylose was depleted. The xylitol content was 74 g / l (yield 74%).

Esimerkki 5;Example 5;

Toistettiin esimerkissä 4 kuvattua menetelmää paitsi että alkuksyloosipitoisuus oli 250 g/1. 160 tunnin kasvatuksen jälkeen oli ksyloosi kulunut loppuun ja ksylitolipitoisuus oli 138 g/1 (saanto 55 %).The procedure described in Example 4 was repeated except that the alkucylose content was 250 g / l. After 160 hours of growth, the xylose was depleted and the xylitol content was 138 g / l (yield 55%).

Esimerkki 6:Example 6:

Kasvatetaan edellisessä esimerkissä mainittua kantaa fermentorissa fed-batch-kasvatuksena. Kasvatusliuoksen alkuti-lavuus oli 60 % lopputilavuudesta ja koostumus 100 g/1 ksy-loosia, 10 g/1 hiivauutetta ja 3 g/1 Bactopeptonia. Kasvatus aloitettiin kuten esim. 4, mutta kun ksyloosipitoisuus oli laskenut arvoon 40 g/1, aloitettiin ksyloosiliuoksen syöttö väkevyydessä 350 g/1. Syötöllä ksyloosipitoisuus pidettiin fermentorissa arvossa 40 g/1. Kun saavutettiin lopputila-vuus, syöttö lopetettiin. 120 tunnin kasvatuksen jälkeen ksyloosi oli kulunut loppuun ja ksylitolipitoisuus oli 164 g/1, mikä vastaa ksylitolisaantoa 78 %.The strain mentioned in the previous example is grown in a fermentor as fed-batch culture. The initial volume of the culture medium was 60% of the final volume and the composition was 100 g / l xylose, 10 g / l yeast extract and 3 g / l Bactopeptone. The culture was started as in e.g. 4, but when the xylose content had dropped to 40 g / l, the feed of the xylose solution at a concentration of 350 g / l was started. With the feed, the xylose content in the fermentor was kept at 40 g / l. When the final volume was reached, the feed was stopped. After 120 hours of growth, the xylose was depleted and the xylitol content was 164 g / l, corresponding to a xylitol yield of 78%.

Claims (3)

6 763776 76377 1. Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi ksyloosipitoisista seoksista, tunnettu siitä, että hiivakantaa Candida guilliermondii VTT-C-71006, talletusnumero NCYC 1644, viljellään edullisesti rajoitetusti ilmastetuissa olosuhteissa ksyloosipitoisessa kasvatusalustassa lämpötilassa 20-40 °C ajan, joka vaihtelee 20 tunnista 10 vuorokauteen, jonka jälkeen kasvatusalustassa muodostunut ksylitoli otetaan talteen. 2. patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hiivan kasvun rajoittamiseksi ja siten ksylitoli-saannon parantamiseksi lisätään kasvualustaan furfuraalia 0,2-1,0 g/1.A process for the preparation of xylitol from xylose-containing mixtures, characterized in that the yeast strain Candida guilliermondii VTT-C-71006, accession number NCYC 1644, is preferably cultured under limited aerated conditions in a xylose-containing medium at a temperature of 20-40 ° C for up to 20 hours. the xylitol formed is recovered. Process according to Claim 1, characterized in that 0.2 to 1.0 g / l of furfural is added to the medium in order to limit the growth of the yeast and thus to improve the yield of xylitol. 3. Patenttivaatimuksen 1 tai 2 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että kasvualustana käytetään hemiselluloo-sapitoisten materiaalien hydrolyysissä saatua ksyloosipitois-ta pentoosirikasta sokeriseosta. 1 Jonkin edellisistä patenttivaatimuksista mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että fermentoinnissa käytetään fed-batch-menetelmää.Process according to Claim 1 or 2, characterized in that the xylose-containing pentose-rich sugar mixture obtained in the hydrolysis of hemicellulosic materials is used as the growth medium. Process according to one of the preceding claims, characterized in that the fed-batch process is used in the fermentation.
FI870147A 1987-01-15 1987-01-15 MICROBIOLOGICAL FRAMSTAELLNINGSMETOD. FI76377C (en)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FI870147A FI76377C (en) 1987-01-15 1987-01-15 MICROBIOLOGICAL FRAMSTAELLNINGSMETOD.
PCT/FI1987/000162 WO1988005467A1 (en) 1987-01-15 1987-12-08 Process for the preparation of xylitol from xylose by cultivating candida guilliermondii
JP63500556A JPH02502333A (en) 1987-01-15 1987-12-08 Method for preparing xylitol from xylose by culturing Candida guillemondii
EP88900367A EP0344163A1 (en) 1987-01-15 1987-12-08 Process for the preparation of xylitol from xylose by cultivating candida guilliermondii

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FI870147A FI76377C (en) 1987-01-15 1987-01-15 MICROBIOLOGICAL FRAMSTAELLNINGSMETOD.
FI870147 1987-01-15

Publications (3)

Publication Number Publication Date
FI870147A0 FI870147A0 (en) 1987-01-15
FI76377B FI76377B (en) 1988-06-30
FI76377C true FI76377C (en) 1989-05-10

Family

ID=8523778

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FI870147A FI76377C (en) 1987-01-15 1987-01-15 MICROBIOLOGICAL FRAMSTAELLNINGSMETOD.

Country Status (4)

Country Link
EP (1) EP0344163A1 (en)
JP (1) JPH02502333A (en)
FI (1) FI76377C (en)
WO (1) WO1988005467A1 (en)

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2641545A1 (en) * 1989-01-10 1990-07-13 Agrocinq Process for the biosynthesis of xylitol
RU2108388C1 (en) * 1989-01-17 1998-04-10 Суомен Ксюрофин Ой Method of preparing xylitol from xylose an aqueous solution
US7109005B2 (en) 1990-01-15 2006-09-19 Danisco Sweeteners Oy Process for the simultaneous production of xylitol and ethanol
FI86440C (en) 1990-01-15 1992-08-25 Cultor Oy FRAME FOR SAMPLING OF XYLITOL OR ETHANOL.
FI913197A0 (en) 1991-07-01 1991-07-01 Xyrofin Oy THEREFORE A REDUCED MEASURE AT THE METABOLISER OF XYLITOL, FOERFARANDE FOER BILDANDE AV DESSA OCH DERAS ANVAENDNING VID FRAMSTAELLNING AV XYLITOL.
EP0672161B1 (en) * 1992-11-05 1999-09-22 Xyrofin Oy Recombinant method and host for manufacture of xylitol
US7226761B2 (en) 1992-11-05 2007-06-05 Danisco Sweeteners Oy Manufacture of five-carbon sugars and sugar alcohols
US6723540B1 (en) 1992-11-05 2004-04-20 Xyrofin Oy Manufacture of xylitol using recombinant microbial hosts
FR2720406B1 (en) * 1994-05-27 1996-08-14 Agronomique Inst Nat Rech Composition of microorganisms and process for the production of xylitol.
FI20011889A (en) 2001-09-26 2003-03-27 Xyrofin Oy Process for the preparation of xylitol
JP2010104361A (en) * 2008-10-02 2010-05-13 Musashino Chemical Laboratory Ltd Method of producing saccharified liquid using lignocellulosic biomass
US10435721B2 (en) 2016-12-21 2019-10-08 Creatus Biosciences Inc. Xylitol producing metschnikowia species

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3619369A (en) * 1968-10-31 1971-11-09 Noda Inst For Scientific Res Process for producing xylitol by fermentation

Also Published As

Publication number Publication date
WO1988005467A1 (en) 1988-07-28
EP0344163A1 (en) 1989-12-06
FI870147A0 (en) 1987-01-15
JPH02502333A (en) 1990-08-02
FI76377B (en) 1988-06-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI76377C (en) MICROBIOLOGICAL FRAMSTAELLNINGSMETOD.
FR2671560A1 (en) PROCESS FOR SIMULTANEOUS SACCHARIFICATION AND FERMENTATION FOR THE PRODUCTION OF ETHANOL USING BRETTANOMYCES CUSTERSII YEAST (CBS 5512) FERTILIZING CELLOBIOSE
US4567145A (en) Continuous production of ethanol by use of respiration deficient mutant yeast
US4376167A (en) Hydrolysis of raffinose by alpha-galactoxidase
Linko et al. Alcoholic fermentation of D-xylose by immobilized Pichia stipitis yeast
US5998181A (en) Fermentation process for preparing xylitol using Candida tropicalis
Purane et al. Gluconic acid production from golden syrup by Aspergillus niger strain using semiautomatic stirred-tank fermenter
EP0425001B1 (en) Natural delta-lactones and process of the production thereof
Yi et al. Formation of α, ω-dodecanedioic acid and α, ω-tridecanedioic acid From different substrates by immobilized cells of a mutant of Candida tropicalis
RU2096461C1 (en) Yeast strain yarrowia lipolytica - producer of citric acid and method of citric acid production
Satomura et al. Intracellular Lipase Formation by Washed Mycelium Biochemical Studies on Sclerotinia Libertiana. Part 13
LU87203A1 (en) PROCESS FOR THE PREPARATION OF TANNASE FOR THE PRODUCTION OF GALLIC ACID USING A CULTURE OF ASPERGILLUS, TANNASE THUS OBTAINED AND USE THEREOF FOR THE PRODUCTION OF GALLIC ACID
US6406904B1 (en) Process for preparing optically active 4-halogeno-1,3-butanediol and its derivative using pseudomonas
US3337415A (en) Method of preparing 6-amino-penicillanic acid
JP4066287B2 (en) Novel microorganism and method for producing erythritol using the same
Willershausen et al. Production of ligninases in stirred tank fermentors
US6395535B1 (en) Optical resolution of 4-halogeno-3-alkanoyloxy-butyronitrile
Van Der Heijden et al. Use of the yeast Hansenula polymorpha (Pichia angusta) to remove contaminating sugars from ethyl β-d-fructofuranoside produced during sucrose ethanolysis catalysed by invertase
US5849551A (en) Microbiological process for producing γ-decalactone
KR0175497B1 (en) Process for preparing xylitol by oxidation reduction potential control
KR100299544B1 (en) Production method of erythritol by pichia strain
Tsujimura et al. Peroxidase production by carbon and nitrogen sources fed-batch culture of Arthromyces ramosus
US3736232A (en) Process for growing microorganisms
RU2088665C1 (en) Fungus strain aspergillus niger - producer of citric acid
KR840001150B1 (en) Process for preparing d-(-)- -hydroxy isobutyric acid

Legal Events

Date Code Title Description
FG Patent granted

Owner name: DANISCO SWEETENERS OY

MA Patent expired