ES2342637T3 - Compuestos profarmacos y procedimiento para su preparacion. - Google Patents

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Abstract

Un compuesto que comprende: (1) un agente terapéutico capaz de entrar en una célula diana, (2) un oligopéptido que tiene una fórmula (AA)n-AA4-AA3-AA2-AA1, en donde: cada AA independientemente representa cualquier aminoácido genéticamente modificado; n es un número entero de 0 a 12; AA4 representa un aminoácido no genéticamente codificado; AA3 representa cualquier aminoácido; AA2 representa cualquier aminoácido; y AA1 representa cualquier aminoácido, en donde el oligopéptido se selecciona de: DAlaThiβAlaβAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 1), ThiβAlaβAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 2), βAlaβAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 3), βAlaAlaAlaIle (SEQ ID NO: 4), βAlaAlaAlaLeu (SEQ ID NO: 5), βAlaPheTyrLeu (SEQ ID NO: 6), βAlaPheThrPhe (SEQ ID NO: 7), βAlaPheGlyIle (SEQ ID NO: 8), βAlaPheGlyLeu (SEQ ID NO: 9), βAlaPhePhePhe (SEQ ID NO: 10), βAlaPhePheIle (SEQ ID NO: 11), βAlaPhePheLeu (SEQ ID NO: 12), βAlaPheAlaIle (SEQ ID NO: 13), βAlaPheAlaLeu (SEQ ID NO: 14), ThiGlyAlaLeu (SEQ ID NO: 15), NalGlyAlaLeu (SEQ ID NO: 16), βAlaLeuTyrLeu (SEQ ID NO: 17), βAlaLeuThiLeu (SEQ ID NO: 18), βAlaLeuThrPhe (SEQ ID NO: 19), βAlaLeuThrIle (SEQ ID NO: 20), βAlaLeu ThrLeu (SEQ ID NO: 21), βAlaLeuSerLeu (SEQ ID NO: 22), βAlaLeuPyrLeu (SEQ ID NO: 23), βAlaLeuLeuLeu (SEQ ID NO: 24), βAlaLeuGlyPhe (SEQ ID NO: 25), βAlaLeuGlyIle (SEQ ID NO: 26), ThiLeuGlyLeu (SEQ ID NO: 27), βAlaLeuGlyLeu (SEQ ID NO: 28), AibLeuGlyLeu (SEQ ID NO: 29), βAlaLeuPheIle (SEQ ID NO: 30), βAlaLeuPheLeu (SEQ ID NO: 31), βAlaLeuAibLeu (SEQ ID NO: 32), βAlaLeuAlaAla (SEQ ID NO: 33), βAlaLeuAlaβAla (SEQ ID NO: 34), βAlaLeuAlaPhe (SEQ ID NO: 35), βAlaLeuAlaGly (SEQ ID NO: 36), βAlaLeu AlaIle (SEQ ID NO: 37), βAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 38), TicLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 39), ThzLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 40), ThiLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 41), NaIleuAlaLeu (SEQ ID NO: 42), NAALeuAlaLeu (SEQ ID NO: 43), D-LeuLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 44), D-AlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 45), D-MetLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 46), APP LeuAlaLeu (SEQ ID NO: 47), AmbLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 48), βAlaLeuAlaNal (SEQ ID NO: 49), βAlaLeuAlaSer (SEQ ID NO: 50), βAlaLeuAlaTyr (SEQ ID NO: 51), βAlaMetTyrPhe (SEQ ID NO: 52), βAlaMetTyrLeu (SEQ ID NO: 53), βAlaMetGlyIle (SEQ ID NO: 54), ThiMetGlyLeu (SEQ ID NO: 55), βAlaMetPhePhe (SEQ ID NO: 56), βAlaMetPheIle (SEQ ID NO: 57), TicMetAlaLeu (SEQ ID NO: 58), NaIMetAlaLeu (SEQ ID NO: 59), NAA MetAlaLeu (SEQ ID NO: 60), βAlaMetAlaLeu (SEQ ID NO: 61), APPMetAlaLeu (SEQ ID NO: 62), βAlaNleTyrIle (SEQ ID NO: 63), βAlaNleTyrLeu (SEQ ID NO: 64), βAlaNleThrIle (SEQ ID NO: 65), βAlaNleThrLeu (SEQ ID NO: 66), βAlaNleGlyPhe (SEQ ID NO: 67), βAlaNleGlyIle (SEQ ID NO: 68), βAlaNleGlyLeu (SEQ ID NO: 69), βAlaNlePheIle (SEQ ID NO: 70), βAlaNleAlaIle (SEQ ID NO: 71), βAlaNleAlaLeu (SEQ ID NO: 72), βAlaNleAla Phe (SEQ ID NO: 73), βAlaNvaAlaLeu (SEQ ID NO: 74), βAlaPheTyrIle (SEQ ID NO: 75), ThiProGlyLeu (SEQ ID NO: 76), ThiProAlaLeu (SEQ ID NO: 77), NalProAlaLeu (SEQ ID NO: 78), βAlaProAlaLeu (SEQ ID NO: 79), βAlaPhe(CI)AlaLeu (SEQ ID NO: 80), βAlaPhe(NO2)AlaIle (SEQ ID NO: 81), βAlaPhe(NO2)AlaLeu (SEQ ID NO: 82), βAlaPhgAlaLeu (SEQ ID NO: 83), βAlaPyrAlaLeu (SEQ ID NO: 84), TicThrGlyLeu (SEQ ID NO: 85), βAlaThiGlyIle (SEQ ID NO: 86), βAlaThiAlaLeu (SEQ ID NO: 87), βAlaTicAlaIle (SEQ ID NO: 88), βAlaTicAlaLeu (SEQ ID NO: 89), βAlaValAlaLeu (SEQ ID NO: 90), βAlaTrpAlaLeu (SEQ ID NO: 91), βAlaTyrTyrPhe (SEQ ID NO: 92), βAlaTyrTyrIle (SEQ ID NO: 93), βAlaTyrTyrLeu (SEQ ID NO: 94), βAlaTyrThrLeu (SEQ ID NO: 95), βAlaTyrPheLeu (SEQ ID NO: 96), βAlaTyrGlyIle (SEQ ID NO: 97), ThiTyrGlyLeu (SEQ ID NO: 98), βAlaTyrGlyLeu (SEQ ID NO: 99), βAlaTyrPheIle (SEQ ID NO: 100), βAlaTyrAlaIle (SEQ ID NO: 101), ThiTyrAlaLeu (SEQ ID NO: 102), y βAlaTyrAlaLeu (SEQ ID NO: 103). (3) opcionalmente, un grupo enlazador, y (4) un grupo estabilizante cargado negativamente que impide la escisión de dicho oligopéptido por las enzimas presentes en la sangre completa, en donde el oligopéptido está unido directamente al grupo estabilizante en el extremo amino del oligopéptido y AA1 del oligopéptido está unido directamente al agente terapéutico o unido indirectamente a través del grupo enlazador al agente terapéutico en un segundo sitio de unión del oligopéptido, y en donde el compuesto se escinde selectivamente por una enzima asociada con la célula diana, en donde el grupo estabilizante se selecciona de: ácido succínico, ácido diglicólico, ácido maleico, ácido piroglutámico, y ácido glutárico.

Description

Compuestos profármacos y procedimiento para su preparación.
Introducción Campo técnico
La presente invención se refiere a nuevos compuestos y a métodos para prepararlos. Los compuestos actúan generalmente como profármacos y en la mayoría de los casos son versiones modificadas de compuestos existentes, especialmente agentes citotóxicos. Estos profármacos tienen mayor especificidad para las dianas a las que van destinados y especificidad reducida para las dianas a las que no van destinados.
Fundamento
Muchos agentes terapéuticos, tales como antraciclinas y alcaloides de vinca son especialmente eficaces para el tratamiento de cánceres. Sin embargo, estas moléculas se caracterizan frecuentemente in vivo por una toxicidad aguda, especialmente toxicidad para la médula ósea y para las mucosas, así como una cardiotoxicidad crónica en el caso de las antraciclinas y toxicidad neurológica crónica en el caso de los alcaloides de vinca. Similarmente, el metotrexato se puede usar para el tratamiento de reacciones inflamatorias, tales como enfermedades reumáticas, pero su alta toxicidad limita sus aplicaciones. Es deseable el desarrollo de más agentes antitumorales específicos para una mayor eficacia contra las células tumorales y una disminución en el número y gravedad de los efectos secundarios de estos productos (toxicidad, destrucción de células no tumorales, etc.). También es deseable el desarrollo de agentes anti-inflamatorios más específicos.
Para minimizar los problemas de toxicidad, los agentes terapéuticos se presentan ventajosamente a los pacientes en la forma de profármacos. Los profármacos son moléculas capaces de ser convertidas en fármacos (compuestos terapéuticos activos) in vivo por ciertas modificaciones químicas o enzimáticas de su estructura. Para los fines de reducir la toxicidad, esta conversión debe estar confinada al sitio de acción o tejido diana en lugar del sistema circulatorio o tejido no diana. Sin embargo, los profármacos se caracterizan frecuentemente por una baja estabilidad en la sangre y el suero, puesto que la sangre y el suero contienen enzimas que degradan los profármacos.
Una clase deseable de profármacos que supera dichos problemas se ha descrito en la Publicación del Tratado de Cooperación de Patentes (PCT) Nº WO 96/05863 y en la Patente de EE.UU. Nº 5.962.216. Son deseables otros compuestos profármacos útiles y métodos de preparar dichos profármacos, sin embargo como lo son los métodos de preparar los profármacos.
Un objeto particular de la invención es un profármaco que presenta una alta especificidad de acción, una toxicidad reducida, y una estabilidad mejorada en la sangre con respecto a los profármacos de estructura similar (especialmente los de estructura más próxima) que han existido en el dominio público.
Sumario de la invención
Los compuestos de la invención como se definen en las reivindicaciones son una forma de profármacos de un agente terapéutico unido directamente o indirectamente a un oligopéptido, que a su vez está unido a un grupo estabilizante.
Más generalmente, la presente invención se puede describir como nuevos compuestos profármacos de un agente terapéutico, especialmente profármacos que comprenden un agente terapéutico antitumoral, que presenta propiedades terapéuticas mejoradas con respecto a los producto de la técnica anterior, especialmente propiedades terapéuticas mejoradas en el tratamiento de tumores cancerosos y/o en el tratamiento de reacciones inflamatorias, tales como enfermedades reumáticas. Las propiedades terapéuticas incluyen menor toxicidad y mayor eficacia. Se desean particularmente profármacos que presenten una alta especificidad de acción, una toxicidad reducida y una mejor estabilidad en suero y sangre, y que no se desplacen hasta las células dianas hasta que no sean activados por una enzima asociada a las células dianas. También se consideran los compuestos profármacos de un marcador que permite caracterizar los tumores (diagnosis, progresión del tumor, análisis de los factores segregados por las células tumorales, etc.).
La presente invención también se refiere a una composición farmacéutica que comprende el compuesto de acuerdo con la invención y opcionalmente un adyuvante o vehículo farmacéuticamente aceptable.
Se describe además un método de disminuir la toxicidad modificando un agente terapéutico para crear un profármaco.
Se describen varios procesos para crear un profármaco de la invención.
Breve descripción de los dibujos
Las Figuras 1A-1D son una tabla de abreviaturas, nombres y estructuras.
La Figura 2 es un esquema ilustrativo de la escisión de un profármaco de la invención en la vecindad extracelular de la célula diana.
La Figura 3 ilustra una síntesis de Fmoc-\betaAla-Leu-Ala-Leu, un compuesto intermedio típico de la invención.
La Figura 4 ilustra una síntesis por la "ruta Fmoc" de metil-succinil-\betaAla-Leu-Ala-Leu, un compuesto intermedio típico de la invención.
La Figura 5 ilustra una síntesis por la "ruta Fmoc" de la forma sal de suc-\betaAla-Leu-Ala-Leu-DOX, un compuesto intermedio típico de la invención.
La Figura 6 ilustra una síntesis por la ruta del "éster succinílico" de la forma sal de Suc-\betaAla-Leu-Ala-Leu-DOX, un compuesto típico de la invención.
La Figura 7 ilustra una síntesis de un \betaAla-Leu-Ala Leu-DOX protegido en el grupo amino, un compuesto intermedio típico de la invención.
La Figura 8 ilustra una síntesis por la "ruta del éster alílico" la forma sal de Suc-\betaAla-Leu-Ala-Leu-DOX, un compuesto intermedio típico de la invención.
La Figura 9 ilustra una síntesis por la "ruta de resina" de suc-\betaAla-Leu-Ala-Leu-DOX, un compuesto intermedio típico de la invención.
Las Figuras 10A-10C son una tabla de oligopéptidos útiles en el profármaco de la invención.
La Figura 11 es una gráfica de supervivencia de un modelo de xenoinjerto en ratones para animales a los que se ha administrado vehículo con o sin fármaco.
La Figura 12 es una gráfica de supervivencia de un modelo de xenoinjerto en ratones que compara un profármaco de doxorubicina y otro de doxorubicina.
Descripción detallada Abreviaturas
Aca = Ácido 6-aminocaproico
ACN = Acetonitrilo
Aib = Ácido aminoisobutírico
All= Alilo
Aloc = Aliloxicarbonilo
Amb = Ácido 4-(aminometil)benzoico
APP = Ácido 3-amino-3-fenilpropiónico
DCC = N,N'-Diciclohexilcarbodiimida
Boc = t-Butiloxicarbonilo
Cap = Ácido caproico
DBN = 1,5-Diazabiciclo[4.3.0]non-5-eno
DBO = 1,4-Diazabiciclo[2.2.2]octano
DBU = 1,8-Diazabiciclo[5.4.0]undec-7-eno
DCM = Diclorometano
DIC = N,N'-Di-isopropilcarbodiimida
DIEA = Di-isopropiletilamina
Dg = Ácido diglicólico
DMF = Dimetilformamida
Dnr = Daunorubicina
Dox = Doxorubicina
Et_{2}O = Éter dietílico
Fmoc = 9-Fluorenilmetiloxicarbonilo
Gl= Ácido glutárico
HATU = Hexafluorofosfato de O-(7-azabenzotriazol-1-il)-1,1,3,3-tetrametiluronio
HBTU = Hexafluorofosfato de 2-(1H-benzotriazol-1-il)-1,1,3,3-tetrametiluronio
HEPES = Hidroxietilpiperidina
HOBt = N-Hidroxibenzotriazol
HPLC = Cromatografía de líquidos a alta presión
MeOH = Metanol
NAA = Ácido 3-amino-4,4-difenilbutírico
Nal = 2-Naftilalanina
Naph = Ácido 1,8-naftalen-dicarboxílico
Nle = Norleucina
NMP = N-metilpirrolidina
Nva = Norvalina
Resina de PAM = 4-Hidroximetilfenilacetamidometilo
Phg = Fenilglicina
Pyg = Ácido piroglutámico
Pyr = 3-Piridilalanina
RT, rt = Temperatura ambiente
Suc = Ácido succínico
TCE = Tricloroetilo
TFA = Ácido trifluroacético
THF = Tetrahidrofurano
Thi = 2-Tienilalanina
Thz = Ácido tiazolidin-4-carboxílico
Tic = Ácido tetrahidroisoquinolin-3-carboxílico.
El compuesto de la invención como se define en las reivindicaciones es una forma profármaco de un agente terapéutico unido directamente o indirectamente a un oligopéptido, que a su vez está unido a un grupo estabilizante.
Más generalmente, la presente invención se puede describir como nuevos compuestos profármacos de un agente terapéutico, especialmente profármacos que comprenden un agente terapéutico antitumoral, que presenta mejores propiedades terapéuticas con respecto al producto de la técnica anterior, especialmente mejores propiedades terapéuticas en el tratamiento de tumores cancerosos y/o en el tratamiento de reacciones inflamatorias, tales como enfermedades reumáticas. Las mejores propiedades terapéuticas incluyen menor toxicidad y mayor eficacia. Se desean particularmente profármacos que presenten una alta especificidad de acción, una toxicidad reducida, una mejor estabilidad en suero y sangre, y que no se desplacen a las células dianas hasta que sean activados por una enzima asociada a la célula diana. También se consideran compuestos profármacos de un marcador que facilita la caracterización de tumores (diagnosis, progresión del tumor, análisis de los factores segregados por las células tumorales, etc.).
La presente invención se refiere también a la composición farmacéutica que comprende el compuesto de acuerdo con invención y opcionalmente un adyuvante o vehículo farmacéuticamente aceptable.
Además se describe un método de disminuir la toxicidad modificando un agente terapéutico para crear un profármaco.
Se describen varios procesos para crear un profármaco de la invención.
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Profármaco
El profármaco de la invención reivindicada es una forma modificada de un agente terapéutico y comprende varias porciones, que incluyen:
(1)
un agente terapéutico,
(2)
un oligopéptido, y
(3)
un grupo estabilizante, y
(4)
opcionalmente, un grupo enlazador.
Cada una de las porciones del profármaco se analiza con mayor detalle más adelante. La orientación típica de estas porciones del profármaco es como sigue:
(grupo estabilizante)-(oligopéptido)-(grupo enlazador opcional)-(agente terapéutico).
El grupo estabilizante está unido directamente al oligopéptido en un primer sitio de unión del oligopéptido. El oligopéptido está directamente o indirectamente unido al agente terapéutico en un segundo sitio de unión del oligopéptido. Si el oligopéptido y el agente terapéutico están unidos indirectamente entonces hay presente un grupo enlazador.
La unión directa de dos porciones del profármaco significa unión covalente entre las dos porciones. El grupo estabilizante y el oligopéptido están por tanto unidos directamente mediante una unión covalente en el primer sitio de unión del oligopéptido que es el término o extremo N del oligopéptido. Cuando el oligopéptido y el agente terapéutico están unidos directamente entonces están unidos covalentemente entre sí en el segundo sitio de unión del oligopéptido. El segundo sitio de unión del oligopéptido es típicamente el término o extremo C de oligopéptido, pero puede estar en cualquier otra parte del oligopéptido.
La unión indirecta de las dos porciones del profármaco significa que cada una de las dos porciones está unida covalentemente a un grupo enlazador. En una realización alternativa, el profármaco tiene la unión indirecta del oligopéptido al agente terapéutico. Por tanto, típicamente, el oligopéptido está unido covalentemente al grupo enlazador que, a su vez, está unido covalentemente al agente terapéutico.
El profármaco de la invención es escindible dentro del oligopéptido directamente o indirectamente unido al agente terapéutico. Para que el profármaco sea eficaz el oligopéptido unido al agente terapéutico es la porción activa del profármaco propiamente dicho o es fácilmente convertible en la porción activa del profármaco usualmente por una o más exopeptidasas. La porción activa del profármaco es la parte del profármaco que por liberación desde la porción restante del compuesto profármaco entra en la célula diana y ejerce su efecto terapéutico directamente o frecuentemente tras más conversión dentro de la célula diana.
Las estructuras del grupo estabilizante y el oligopéptido se seleccionan además para limitar la liberación del oligopéptido por enzimas distintas de las que pueden estar presentes en la sangre o en las células no dianas. El grupo estabilizante bloquea la degradación del profármaco y puede actuar proporcionando una carga preferible u otras características físicas del profármaco por exopeptidasas. La secuencia de aminoácidos del oligopéptido se diseña para asegurar más la especificidad para la trouasa.
Es deseable convertir un agente terapéutico, especialmente un agente terapéutico antitumoral y/o anti-inflamatorio, en inactivo por modificación del agente terapéutico a la forma de profármaco. De acuerdo con la invención, las células dianas son usualmente células tumorales o células que participan en las reacciones anti-inflamatorias, especialmente las asociadas a enfermedades reumáticas, tales como macrófagos y monocitos. La modificación del agente terapéutico a una forma profármaco también tiende a reducir algunos de los efectos secundarios de los agentes terapéuticos.
En la célula diana, el agente terapéutico (opcionalmente unido a uno o dos aminoácidos y posiblemente también al grupo enlazador) actúa o directamente sobre su sitio de acción intracelular específico o tras una modificación bajo la acción de proteasas intracelulares, mata a la célula diana o bloquea su proliferación. Puesto que las células normales liberan poca o ninguna trouasa in vivo, el compuesto de acuerdo con la invención se mantiene inactivo y no entra en las células normales o lo hace en una cantidad relativamente pequeña.
El profármaco se administra al paciente, transportado a través del torrente sanguíneo en una forma estable, y cuando está en la vecindad de una célula diana, es activado por la trouasa. Puesto que la enzima está sólo mínimamente presente dentro de la vecindad extracelular de las células normales, el profármaco se mantiene y su porción activa (incluyendo el agente terapéutico) y entra en las células normales sólo mínimamente, en el mejor de los casos. En la vecindad del tumor u otras células dianas, sin embargo, la presencia de la enzima relevante en el ambiente local causa la escisión del profármaco. El ejemplo mostrado en la Figura 2 representa un profármaco tetrapeptídico protegido en el extremo N que se escinde del resto del profármaco extracelularmente y entra en la célula diana. Una vez dentro de la célula diana, puede ser modificado adicionalmente para proporcionar el efecto terapéutico. Aunque la porción active del profármaco pueda entrar en las células normales en alguna extensión, la porción activa se libera del resto del profármaco principalmente en la vecindad de las células dianas. Por tanto, se minimiza la toxicidad para las células normales.
La liberación de la porción activa del profármaco incluyendo el agente terapéutico ocurre preferiblemente en el ambiente inmediato de la célula diana. En la célula diana, el agente terapéutico actúa o directamente sobre su sito de acción intracelular específico o después de modificación bajo la acción de proteasas intracelulares u otras enzimas, puede ser modificado a otra forma que mata la célula diana o bloquea su proliferación. Un diagrama esquemático de esta acción para un profármaco ilustrativo de la invención se muestra en la Figura 2.
Este proceso es particularmente útil para, y está diseñado para, la destrucción de las células dianas cuando el tejido diana excreta una enzima u otro factor que no es secretado por células normales. En la presente descripción "células normales" significa células no dianas que podrían ser encontradas por el profármaco tras la administración del profármaco del modo apropiado para su uso destinado. Puesto que las células normales (es decir, las que no son dianas) liberan poco o nada de la(s) enzima(s) de las células diana que son responsables de la escisión del enlace que une la porción activa (incluyendo el agente terapéutico) del profármaco del resto del profármaco in vivo, el compuesto de la invención se mantiene inactivo y no entra en las células normales.
En una realización alternativa, la orientación del profármaco se puede invertir de modo que un bloque del extremo C está unido al oligopéptido y el agente terapéutico está unido directamente o indirectamente al extremo N del oligopéptido.
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Trouasa
La trouasa es la enzima que se cree es crítica para la activación especifica del profármaco en el tejido diana. La trouasa es una endopeptidasa que muestra un grado notable de discriminación entre leucina e isoleucina en el lado carboxilo del sito de escisión del oligopéptido. Una característica definitoria es que en condiciones de ensayo apropiados, la trouasa fácilmente escinde la succinil-(\betaAlaLeuAlaLeu-daunorubicina aunque es al menos veinte veces menos activa con la succinil-PAlaIleAlaLeu-daunorubicina.
Se cree que la trouasa está asociada con células dianas. Muy probablemente se general directamente por las células dianas o por las células normales que están asociadas con las células dianas, tales como el tejido estromal o los macrófagos. Así por ejemplo, la trouasa puede ser secretada o estar presente de algún otro modo en la vecindad extracelular de la célula diana. En muchos casos, el profármaco de la invención incluye un agente terapéutico para el tratamiento de cáncer y la célula diana es una célula tumoral. Así, la trouasa puede ser secretada extracelularmente por la célula diana o puede estar presente extracelularmente porque generalmente hay bastante cantidad de lisis celular asociada con los tumores. La lisis celular también está asociada con el tejido inflamatorio que es otro sitio diana.
Sin embargo la actividad de trouasa es baja en plasma humano. La actividad de trouasa se ha observado en extractos de células de carcinoma y en medios acondicionados procedentes de células de carcinoma, glóbulos rojos y diversos tejidos humanos, especialmente el riñón. La trouasa de células de carcinoma tiene un pI aparente de \sim 5,1, un peso molecular por filtración a través de gel de aproximadamente 68 kD y un óptimo de actividad a pH neutro. Es inhibida por inhibidores de metaloproteinasas, EDTA y 1,10-fenantrolina pero no por inhibidores de serina, tiol, o proteinasas ácidas, tales como aminoetilbenceno-sufonato, E64, pepstatina, leupeptina, aprotinina, CA074, o fumagilina. Además la trouasa inactivada por EDTA puede ser reactivada por cationes de cobalto (50-100 \muM) y manganeso (50-1000 \muM) pero no por cationes de zinc o cúpricos.
Un esquema de purificación parcial de trouasa a partir de sobrenadante por ultracentrifugación (145.000 x g 30 minutos) de homogeneizado de células HeLa (carcinoma cervical) consiste en cuatro etapas como sigue:
1. Cromatografía de cambio aniónico usando una columna 15Q (Pharmacia) eluida con un gradiente lineal de NaCl 0 a 0,5 M en cloruro de trietilamina 20 mM, pH 7,2, Triton X-100 al 0,01%.
2. Cromatografía de afinidad usando una columna Chelating Sepharose Fast Flow (Pharmacia) pre-cargada con CoCl_{2} y eluida con un gradiente lineal de imidazol 0 a 100 mM en fosfato de sodio 10 mM, NaCl 0,5 M, pH 7,2, Triton X-100 al 0,01%, NaN_{3} al 0,02%.
3. Electroforesis natural preparativa
4. Cromatografía de líquidos de alta rendimiento con filtración por gel usando una columna de 7,8 mm X 60 cm de TSK Gel G-3000SWXL (TosoHaas) eluida con 0,3 mL/min fosfato de potasio 50 mM, sulfato de potasio 200 mM, pH 7.2.
La posterior escisión de la porción activa del profármaco liberado después de la escisión por la trouasa puede ocurrir intracelularmente o extracelularmente y se cree que es catalizada por aminoexopeptidasas. Experimentos in vitro indican que las aminoexopeptidasas de amplias especificidades están presentes en sangre humana, así como en ambientes de células de carcinoma.
Grupo estabilizante
Una porción importante del profármaco es el grupo estabilizante, que sirve para proteger al compuesto profármaco de la degradación en la sangre circulante cuando se administra al paciente y permite que el profármaco alcance la vecindad de la célula diana relativamente intacto. El grupo estabilizante protege al profármaco de la degradación por proteinasas y peptidasas presentes en la sangre, suero sanguíneo, y tejido normal. Particularmente, puesto que el grupo estabilizante protege el extremo terminal N del oligopéptido, y por tanto es denominado un protector de N o bloqueador de N, sirve para proteger contra las exopeptidasas a las que el profármaco de otro modo puede ser susceptible.
El compuesto es menos tóxico in vivo que el agente terapéutico de partida porque el profármaco no se escinde en la sangre, el corazón, el cerebro, la médula ósea, la mucosa y similares. Esta disminución de la toxicidad se aplica en particular a los efectos agudos, tales como tales como la toxicidad para la médula ósea y la mucosa, así la posible cardiotoxicidad o neurotoxicidad.
Idealmente, el grupo estabilizante es útil en el profármaco de la invención si sirve para proteger al profármaco de la degradación, especialmente por hidrólisis, cuando se ensaya por conservación del compuesto profármaco en sangre humana 37ºC durante 2 horas y da como resultado una escisión menor de 20%, preferiblemente menor del 2%, del profármaco por las enzimas presentes en la sangre humana en las condiciones de ensayo dadas.
Los grupos estabilizantes de la invención son ácido succínico, ácido diglicólico, ácido maleico, ácido piroglutámico y ácido glutárico.
Adicionalmente, la administración intravascular de un profármaco cargado positivamente agregante a ratones dio como resultado una toxicidad aguda. Sin embargo, no se observó dicha toxicidad cuando la carga de este profármaco se revirtió por derivatización con un grupo estabilizante cargado negativamente. Este efecto se analiza con más detalle más adelante.
Por tanto, cuando la agregación del agente terapéutico es un problema se prefiere que el grupo estabilizante unido esté cargado negativamente o sea neutro.
Toxicidad in vivo
Muchos compuestos citotóxicos tienen inherentemente baja solubilidad. Las antraciclinas cargadas positivamente por ejemplo forman agregados a alta concentración y estos agregados inducen coagulación intravenosa cuando dichos agregados se administran intravenosamente. Los autores de la presente invención hemos descubierto que la trouasa reconoce un conjunto específico de secuencias peptídicas hidrófobas. Cuando una de estas secuencias hidrófobas (por ejemplo, \beta-Ala-Leu-Ala-Leu) está conjugada con un compuesto citotóxico (por ejemplo: doxorubicina), da como resultado un compuesto menos soluble que forma grandes agregados cuando se encuentra en formulaciones acuosas para inyección IV (el método preferido de administrar fármacos anti-cancerosos). Puesto que la mayoría de los péptidos tienen extremos amino cargados positivamente a pH fisiológico, estos agregados forman una superficie cargada poli-positivamente in vivo. Estos agregados administrados intravenosamente inducían una cascada de coagulación y la muerte en ratones en pocos minutos (usualmente en menos de 30 minutos) desde la administración. Esto hace inadecuados para uso terapéutico cualesquiera profármacos cargados positivamente que estén formulados con suspensión de agregados.
Diversos experimentos apoyan la hipótesis que los agregados se forman con doxorubicinas conjugadas con péptidos. El examen de soluciones similarmente formuladas por dispersión con luz láser y ultrafiltración con exclusión de tamaños demostró que sólo una pequeña cantidad del material tenía un peso molecular inferior a 10 kD. La magnitud del peso molecular de los agregados se encontró que era inferior a alrededor de 70 kD. Cuando a los animales se les administró concomitantemente (véase el ejemplo 6) heparina con la dosis IV la toxicidad aguda se redujo grandemente o se eliminó. Cuando a los animales se les administraron diluciones diluidas del mismo fármaco (misma dosis total) no se produjo toxicidad aguda. Estos resultados, considerados juntos con los informes de la bibliografía, apoyan la conclusión de que los profármacos peptídicos de compuestos que forman agregados debido a la insuficiente solubilidad no tienen efectos terapéuticos óptimos. Una solución a este problema de los agregados hace a los profármacos peptídicos más prácticos. Cuando estos profármacos peptídicos forman agregados debido a una insuficiente solubilidad a las concentraciones formuladas deseadas, el grupo estabilizante en la cadena peptídica debe terminar en una funcionalidad cargada negativamente o neutra. El uso de succinilo como grupo estabilizante en el profármaco peptídico hace al profármaco no agudamente tóxico (véase el ejemplo 6). Esto resuelve un problema importante en el uso de profármacos peptídicos como terapias prácticas para seres humanos.
Puesto que los radicales químicos que tiene más de dos ácidos carboxílicos también son aceptables como parte del profármaco, el grupo del extremo que tiene ácidos dicarboxílicos (o ácidos carboxílicos de orden superior) se define más generalmente como protegido en el extremo N. El grupo protegido en el extremo N como se usa en la presente memoria es un derivado de monoamida de un radical químico que contiene dos o más ácidos carboxílicos en donde la amida esta unida al extremo amino del péptido y los restantes ácidos carboxílicos están libres y no acoplados. Para este fin, el protector en el extremo N es preferiblemente ácido succínico o ácido glutárico, siendo ácido succínico el más preferido. Otros ejemplos de protectores en el extremo N útiles en el compuesto profármaco de la invención incluyen ácido diglicólico y ácido maleico.
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Oligopéptido
Los oligopéptidos se definen generalmente como polipéptidos de corta longitud, típicamente de veinte aminoácidos o menos. Sin embargo un oligopéptido útil en el profármaco de la invención es de una longitud de al menos cuatro aminoácidos. En el extremo superior los oligopéptidos de menos de, o igual a, doce aminoácidos son más útiles, aunque un oligopéptido puede tener una longitud de cadena mayor que doce aminoácidos y entrar dentro ambos de la definición del término como es generalmente reconocido en el campo técnico. Por tanto, la porción de oligopéptido del profármaco de la invención tiene cuatro a doce aminoácidos inclusive.
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Esquema de numeración
El oligopéptido tiene una fórmula o secuencia (AA)_{n}-AA^{4}-AA^{3}-AA^{2}-AA^{1}, en donde:
cada AA independientemente representa cualquier aminoácido genéticamente modificado;
n es un número entero de 0 a 12;
AA^{4} representa un aminoácido no genéticamente codificado;
AA^{3} representa cualquier aminoácido;
AA^{2} representa cualquier aminoácido; y
AA^{1} representa cualquier aminoácido.
Esto corresponde a una secuencia de posición P(n+2)...P2-P1-P1'-P2'.
Se cree que la trouasa escinde entre las posiciones P1 y P1'.
A menos que se indique otra cosa, todos los aminoácidos son de la configuración L.
Los aminoácidos preferidos en el oligopéptido son como sigue:
En la posición P2, uno de los siguientes: \beta-Alanina, ácido tiazolidin-4-carboxíco, 2-tienilalanina, 2-naftilalanina, D-alanina, D-leucina, D-metionina, D-fenilalanina, ácido 3-amino-3-fenilpropionico, ácido \gamma-aminobutírico, ácido 3-amino-4,4-difenilbutírico.
También son posibles ácido tetrahidroisoquinolin-3-carboxílico, ácido 4-aminometilbenzoico o ácido aminoisobutírico en la posición P2.
En la posición P1, uno de los siguientes: leucina, tirosina, fenilalanina, p-Cl-fenilalanina, p-nitrofenilalanina, valina, norleucina, norvalina, fenilglicina, triptófano, ácido tetrahidroisoquinolin-3-carboxílico, 3-piridilalanina, alanina, glicina o tienilalanina.
También son posibles metionina, valina o prolina en la posición P1.
En la posición P1', uno de los siguientes: alanina, leucina, tirosina, glicina, serina, 3-piridilalanina o 2-tienilalanina.
Son también posibles ácido aminoisobutírico, treonina o fenilalanina.
En la posición P2', uno de los siguientes: leucina, fenilalanina, isoleucina, alanina, glicina, tirosina, 2-naftilalanina o serina.
También es posible \beta-alanina en la posición P2'.
Los oligopéptidos usados en el profármaco de la invención son: DAlaThi\betaAla\betaAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 1), Thi\betaAla\betaAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 2), \betaAla\betaAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 3), \betaAlaAlaAlaIle (SEQ ID NO: 4), \betaAlaAlaAlaLeu (SEQ ID NO: 5), \betaAlaPheTyrLeu (SEQ ID NO: 6), \betaAlaPheThrPhe (SEQ ID NO: 7), \betaAlaPheGlyIle (SEQ ID NO: 8), \betaAlaPheGlyLeu (SEQ ID NO: 9), \betaAlaPhePhePhe (SEQ ID NO: 10), \betaAlaPhePheIle (SEQ ID NO: 11), \betaAlaPhePheLeu (SEQ ID NO: 12), \betaAlaPheAlaIle (SEQ ID NO: 13), \betaAlaPheAlaLeu (SEQ ID NO: 14), Thi
GlyAlaLeu (SEQ ID NO: 15), NalGlyAlaLeu (SEQ ID NO: 16), \betaAlaLeuTyrLeu (SEQ ID NO: 17), \betaAlaLeuThiLeu (SEQ ID NO: 18), \betaAlaLeuThrPhe (SEQ ID NO: 19), \betaAlaLeuThrIle (SEQ ID NO: 20), \betaAlaLeuThrLeu (SEQ ID NO: 21), \betaAlaLeuSerLeu (SEQ ID NO: 22), \betaAlaLeuPyrLeu (SEQ ID NO: 23), \betaAlaLeuLeuLeu (SEQ ID NO: 24), \betaAlaLeuGlyPhe (SEQ ID NO: 25), \betaAlaLeuGlyIle (SEQ ID NO: 26), ThiLeuGlyLeu (SEQ ID NO: 27), \betaAlaLeuGly
Leu (SEQ ID NO: 28), AibLeuGlyLeu (SEQ ID NO: 29), \betaAlaLeuPheIle (SEQ ID NO: 30), \betaAlaLeuPheLeu (SEQ ID NO: 31), \betaAlaLeuAibLeu (SEQ ID NO: 32), \betaAlaLeuAlaAla (SEQ ID NO: 33), \betaAlaLeuAla\betaAla (SEQ ID NO: 34), \betaAlaLeuAlaPhe (SEQ ID NO: 35), \betaAlaLeuAlaGly (SEQ ID NO: 36), \betaAlaLeuAlaIle (SEQ ID NO: 37), \betaAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 38), TicLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 39), ThzLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 40), Thi
LeuAlaLeu (SEQ ID NO: 41), NaIleuAlaLeu (SEQ ID NO: 42), NAALeuAlaLeu (SEQ ID NO: 43), D-LeuLeu
AlaLeu (SEQ ID NO: 44), D-AlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 45), D-MetLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 46), APPLeu
AlaLeu (SEQ ID NO: 47), AmbLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 48), \betaAlaLeuAlaNal (SEQ ID NO: 49), \betaAlaLeuAlaSer (SEQ ID NO: 50), \betaAlaLeuAlaTyr (SEQ ID NO: 51), \betaAlaMetTyrPhe (SEQ ID NO: 52), \betaAlaMetTyrLeu (SEQ ID NO: 53), \betaAlaMetGlyIle (SEQ ID NO: 54), ThiMetGlyLeu (SEQ ID NO: 55), \betaAlaMetPhePhe (SEQ ID NO: 56), \betaAlaMetPheIle (SEQ ID NO: 57), TicMetAlaLeu (SEQ ID NO: 58), NaIMetAlaLeu (SEQ ID NO: 59), NAA
MetAlaLeu (SEQ ID NO: 60), \betaAlaMetAlaLeu (SEQ ID NO: 61), APPMetAlaLeu (SEQ ID NO: 62), \betaAlaNleTyrIle (SEQ ID NO: 63), \betaAlaNleTyrLeu (SEQ ID NO: 64), \betaAlaNleThrIle (SEQ ID NO: 65), \betaAlaNleThrLeu (SEQ ID NO: 66), \betaAlaNleGlyPhe (SEQ ID NO: 67), \betaAlaNleGlyIle (SEQ ID NO: 68), \betaAlaNleGlyLeu (SEQ ID NO: 69), \betaAlaNlePheIle (SEQ ID NO: 70), \betaAlaNleAlaIle (SEQ ID NO: 71), \betaAlaNleAlaLeu (SEQ ID NO: 72), \betaAlaNleAla
Phe (SEQ ID NO: 73), \betaAlaNvaAlaLeu (SEQ ID NO: 74), \betaAlaPheTyrIle (SEQ ID NO: 75), ThiProGlyLeu (SEQ ID NO: 76), ThiProAlaLeu (SEQ ID NO: 77), NalProAlaLeu (SEQ ID NO: 78), \betaAlaProAlaLeu (SEQ ID NO: 79), \betaAlaPhe(CI)AlaLeu (SEQ ID NO: 80), \betaAlaPhe(NO_{2})AlaIle (SEQ ID NO: 81), \betaAlaPhe(NO_{2})AlaLeu (SEQ ID NO: 82), \betaAlaPhgAlaLeu (SEQ ID NO: 83), \betaAlaPyrAlaLeu (SEQ ID NO: 84), TicThrGlyLeu (SEQ ID NO: 85), \betaAlaThiGlyIle (SEQ ID NO: 86), \betaAlaThiAlaLeu (SEQ ID NO: 87), \betaAlaTicAlaIle (SEQ ID NO: 88), \betaAlaTicAlaLeu (SEQ ID NO: 89), \betaAlaValAlaLeu (SEQ ID NO: 90), \betaAlaTrpAlaLeu (SEQ ID NO: 91), \betaAlaTyrTyrPhe (SEQ ID NO: 92), \betaAlaTyrTyrIle (SEQ ID NO: 93), \betaAlaTyrTyrLeu (SEQ ID NO: 94), \betaAlaTyrThrLeu (SEQ ID NO: 95), \betaAlaTyrPheLeu (SEQ ID NO: 96), \betaAlaTyrGlyIle (SEQ ID NO: 97), ThiTyrGlyLeu (SEQ ID NO: 98), \betaAlaTyrGlyLeu (SEQ ID NO: 99), \betaAlaTyrPheIle (SEQ ID NO: 100), \betaAlaTyrAlaIle (SEQ ID NO: 101), ThiTyrAlaLeu (SEQ ID NO: 102), y \betaAlaTyrAlaLeu (SEQ ID NO: 103).
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Aminoácidos de bloqueo
La porción del oligopéptido del profármaco incluye un aminoácido de bloqueo como AA^{4} de la secuencia de oligopéptido, es decir en la posición P2 de la secuencia de posiciones, de acuerdo con el esquema de numeración descrito anteriormente. El aminoácido de bloqueo es un aminoácido no codificado genéticamente.
La función del aminoácido de bloqueo en la posición P2 es mantener la selectividad para la escisión del profármaco por trouasa e inhibir la escisión del oligopéptido por otras enzimas en esa porción del oligopéptido más estrechamente unida (unida directamente o indirectamente) a la porción del agente terapéutico del compuesto profármaco. Más particularmente colocando un aminoácido de bloqueo en la posición P2, se reduce la escisión indeseable dentro de los enlaces peptídicos de los cuatro aminoácidos de la secuencia del oligopéptido AA^{4}-AA^{3}-AA^{2}-AA^{1} y la secuencia de posiciones P2-P1-P1'-P2'. Se cree que la trouasa escinde entre las posiciones P1 y P1' posiciones del oligopéptido. Puesto que se sabe que la sangre y las células normales están asociadas con una variedad de peptidasas, colocar un aminoácido de bloqueo en la posición P2 sirve para proteger la porción del oligopéptido del profármaco in vivo hasta que el profármaco esté en la vecindad de la célula diana. Específicamente al colocar un aminoácido de bloqueo en la posición P2, se cree que se protege al oligopéptido de escisión indeseable entre P2 y P1. Sin el aminoácido de bloqueo el profármaco podría ser vulnerable tanto a las exopeptidasas como a las endopeptidasas presentes en la sangre y en tejido normal, pudiendo ambas clases de enzimas degradar por otra parte el profármaco antes de que alcanzara su diana. El Ejemplo 2 que se facilita más adelante ilustra este importante aspecto del profármaco.
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Agentes terapéuticos
Los agentes terapéuticos que son particularmente útiles para la modificación con el fin de obtener una forma profármaco de acuerdo con invención son los que poseen una estrecha ventana terapéutica. Un fármaco o agente terapéutico con una estrecha ventana terapéutica es uno en el cual la dosis en la que es evidente la toxicidad, por técnicas médicas estándares, es demasiado próxima a la dosis en la que es evidente la eficacia.
El agente terapéutico conjugado con el grupo estabilizante y el oligopéptido y, opcionalmente el grupo enlazador para formar el profármaco de la invención puede ser útil para el tratamiento de cánceres, enfermedades inflamatorias o algún otra estado médico. Preferiblemente, el agente terapéutico se selecciona de la siguiente clase de compuestos: agentes alquilantes, agentes anti-proliferantes, agentes de unión a tubulina, alcaloides de vinca, enediinas, podofilotoxinas o derivados de podofilotoxinas, la familia de fármacos de pteridina, taxanos, antraciclinas, dolastatinas, inhibidores de topoiosomerasa y cis-platinos.
Particularmente, el agente terapéutico se selecciona ventajosamente de los siguientes compuestos: doxorubicina, daunorubicina, vinblastina, vincristina, caliqueaamicina, etopósido, fosfato de etopósido, CC-1065, duocarmicina, KW-2189, metotrexato, metopterina, aminopterina, diclorometotrexato, docetaxel, paclitaxel, epitiolono, combretastatina, fosfato de combretastatina A_{4}, dolastatina 10, dolastatina 11, dolastatina 15, topotecan, camptotecina, mitomicina C, porfiromicina, 5-fluoracilo, 6-mercaptopurina, fludarabina, tamoxifeno, arabinósido de citosina, arabinósido de adenosina, colchicina, carboplatino, mitomicina C, bleomicina, melfalan o uno de sus derivados o análogos.
Grupos enlazadores
Un grupo enlazador entre el oligopéptido y el agente terapéutico puede ser ventajoso por razones tales como las siguientes:
1.
Como un espaciador por consideraciones estéricas para facilitar la liberación enzimática de los aminoácidos AA^{1}.
2.
Para proporcionar una química de unión apropiada entre el agente terapéutico y el oligopéptido.
3.
Para mejorar el proceso sintético de preparar el conjugado del profármaco (por ejemplo, pre-derivatizando el agente terapéutico o el oligopéptido con el grupo enlazador antes de la conjugación para mejorar el rendimiento o la especificidad).
4.
Para mejorar las propiedades físicas del profármaco.
5.
Para proporcionar un mecanismo adicional para la liberación intracelular del fármaco.
Las estructuras del agente enlazador están dictadas por la funcionalidad requerida. Ejemplos de productos químicos enlazadores potenciales son hidrazida, éster, éter y sulfhidrilo. El ácido aminocaproico es un ejemplo de grupo enlazador bifuncional. Cuando se usa el ácido aminocaproico en el grupo enlazador, no es contado como un aminoácido en el esquema de numeración del oligopéptido.
Composiciones farmacéuticas
La invención también incluye una composición farmacéutica que comprende un compuesto, particularmente un compuesto profármaco, de acuerdo con invención y, un adyuvante o vehículo farmacéuticamente aceptable.
La invención se refiere también al uso de la composición farmacéutica para la preparación de un producto medicinal destinado al tratamiento de un estado médico.
La composición farmacéutica puede ser administrada al paciente, por ejemplo, parenteralmente, especialmente intravenosamente, intramuscularmente o intraperitonealmente. Las composiciones farmacéuticas de la invención para administración parenteral comprenden soluciones, suspensiones o emulsiones acuosas o no acuosas estériles. Como disolvente o vehículo farmacéuticamente aceptable se pueden emplear propilenglicol, polietilenglicol, ésteres orgánicos inyectables, por ejemplo oleato de etilo o ciclodextrinas. Estas composiciones también pueden comprender agentes humectantes, emulsionantes y/o dispersantes.
La esterilización se puede realizar de varios modos, por ejemplo usando un filtro bacteriológico, por incorporación de agentes esterilizantes en la composición o por irradiación. Las composiciones también pueden prepararse en la forma de composiciones sólidas estériles que se pueden disolver en el momento de su uso en agua estéril o cualquier otro medio inyectable estéril.
La composición farmacéutica también puede comprender adyuvantes que son bien conocidos en la técnica (por ejemplo, vitamina C, agentes antioxidantes, etc.) y capaces de ser usados en combinación con el compuesto de la invención para mejorar y prolongar el tratamiento del estado médico para el cual se administran.
Las dosis para la administración a un paciente de los compuestos de acuerdo con la invención son generalmente al menos las dosis usuales del agente terapéutico conocidas en la técnica, descritas en Bruce A. Chabner y Jerry M. Collins, Cancer Chemotherapy, Lippincott Ed., ISBN 0-397-50900-6 (1990) o pueden ser ajustadas, dentro del criterio del médico encargado del tratamiento, para acomodarla a la superior eficacia de las formulaciones del profármaco o a las circunstancias particulares del paciente que se trata. Las dosis administradas varían por tanto de acuerdo con el agente terapéutico usado para la preparación del compuesto de acuerdo con la invención.
Tratamiento con el compuesto profármaco
Se describe también un método para el tratamiento terapéutico de un estado médico que comprende administrar, especialmente parenteralmente o intravenosamente, a un paciente una dosis terapéuticamente eficaz de la composición farmacéutica.
El compuesto profármaco es útil para el tratamiento de muchos estados médicos incluyendo cáncer, enfermedades neoplásicas, tumores, enfermedades inflamatorias y enfermedades infecciosas. Ejemplos de enfermedades preferidas son cáncer de mama, cáncer colo-rectal, cáncer de hígado, cáncer de pulmón, cáncer de próstata, cáncer de ovarios, cáncer de cerebro, y cáncer de páncreas. El compuesto profármaco formulado en vehículos farmacéuticamente aceptables (tales como solución salina isotónica), puede ser administrado a animales o seres humanos en dosis intravenosas que varían desde 0,05 mg/kg/dosis/día a 300 mg/kg/dosis/día. También se puede administrar en forma de un goteo intravenoso u otro método de infusión lenta.
Los receptores usuales del profármaco de la invención son pacientes humanos, aunque también se considera el uso veterinario.
Métodos generales de la química del proceso Oligopéptido: Método General para la síntesis de péptidos
Las secuencias de péptidos u oligopéptidos de los conjugados de profármaco de esta invención pueden ser sintetizadas por métodos de síntesis de péptidos en fase sólida (usando la química Boc o Fmoc) o por síntesis en fase de solución. Los métodos generales Boc y Fmoc se usan ampliamente y están descritos en las siguientes referencias: Merrifield, J. A. Chem. Soc., 88:2149 (1963); Bodanszky y Bodanszky, The Practice of Peptide Synthesis, Springer-Verlag, Berlin, 7-161 (1994); Stewart, Solid Phase Peptide Synthesis, Pierce Chemical, Rockford, (1984).
Método general de fase sólida con Fmoc
Usando el método de síntesis en fase sólida preferido automatizado o manual, se sintetiza un péptido de longitud y secuencia deseadas a través de la adición por etapas de aminoácidos a una cadena en crecimiento que está unida a una fase sólida. Ejemplos de resinas compatibles con Fmoc útiles incluyen, pero sin limitación, resina Wang, resina HMPA-PEGA, resina ácida de Rink, o una resina de hidroxietil-fotoenlazador. El extremo C de la cadena peptídica se une covalentemente a una resina polímera y se añaden de un modo por etapas los \alpha-aminoácidos protegidos con un reactivo de acoplamiento. Un grupo protector de \alpha-amino preferido es el grupo Fmoc, que es estable en condiciones de acoplamiento y puede eliminarse fácilmente en condiciones alcalinas suaves. Los disolventes de reacción son preferiblemente, pero sin limitación, DMF, NMP, DCM, MeOH y EtOH. Ejemplos de agentes de acoplamiento son: DCC, DIC, HATU y HBTU. La escisión del grupo protector del extremo N se consigue en piperidina al 10 - 100% en DMF a 0 - 40ºC, siendo preferida la temperatura ambiente. Al final de la síntesis el grupo protector Fmoc final se separa usando el método de escisión en el extremo N. El péptido restante sobre la resina se escinde la resina junto con cualesquiera grupos protectores de cadenas laterales sensibles a los ácidos tratando la resina en condiciones ácidas. Por ejemplo un agente de escisión ácido es una mezcla de ácido trifluoroacético (TFA) en diclorometano. Si se usa la resina de hidroxietil-fotoenlazador, la longitud de onda apropiada para inducir la escisión es luz ultravioleta de longitud de onda \lambda = 365 nm. Una representación esquemática de este proceso se da en la Figura 3.
Método general de protección en el extremo N en la vía de síntesis en fase sólida
La preparación de péptidos derivatizados en el extremo N se consigue convenientemente en fase sólida. Cuando la síntesis del péptido es completa se separa el Fmoc terminal mientras el péptido está todavía en el soporte sólido. El protector del extremo N de elección se acopla a continuación usando condiciones estándares de acoplamiento de péptidos en el extremo N del péptido. Una vez completado el acoplamiento del protector del extremo N, el péptido se escinde la resina usando el método descrito anteriormente.
Método general con Boc en fase sólida
Para el método en fase sólida usando el química con Boc, es útil la resina de Merrifield o la resina de PAM. Los aminoácidos se acoplan a la cadena en crecimiento en fase sólida por adiciones sucesivas de aminoácidos protegidos con Boc con un agente de acoplamiento activado. Ejemplos de agentes de acoplamiento son: DCC, DIC, HATO y HBTU. Los disolventes de reacción pueden ser DMF, DCM, MeOH, y NMP. La escisión del grupo protector Boc se consigue en TFA al 10 - 100% en DCM a 0 - 40ºC, prefiriéndose la temperatura ambiente. Tras completarse el ensamblamiento conjunto de la cadena peptídica se separa el grupo protector del extremo N (usualmente Boc) como se ha descrito antes. El péptido se separa de la resina usando HF líquido o ácido trifluorometano-sulfónico en diclorometano.
Método general para la preparación de Fmoc-oligopéptido por síntesis en fase de solución
Alternativamente, el compuesto intermedio profármaco-péptido puede ser preparado mediante una síntesis en fase de solución, utilizando química de Boc o Fmoc. En la presentación esquemática de los métodos (Figura 4), el tetrapéptido con Leu en el extremo C se usa generalmente como ejemplo, pero ha de entenderse que pueden realizarse también reacciones similares con otros tetrapéptidos C-terminales. El péptido puede ser acumulado en el ensamblaje por etapas de modo análogo al del método en fase sólida (en la dirección N-terminal o en la dirección C-terminal) o a través del acoplamiento de dos dipéptidos adecuadamente protegidos o un tripéptido con un solo aminoácido.
Un método de síntesis en fase de solución es una acumulación etapa a etapa del compuesto intermedio profármaco-péptido usando química Fmoc, se muestra en la Figura 4. El extremo C debe ser protegido para reducir la formación de productos secundarios. El grupo R en el extremo C en la Figura 4 es Me, tBu, bencilo o TCE. (Adviértase cuando que cuando el protector de N es metil-succinilo el grupo R en el extremo C no puede ser metilo). Aunque se da como disolvente DMF, pueden usarse en su lugar otros disolventes tales como DMSO, CH_{3}CN o NMP (o sus mezclas). La piridina, Et_{3}N u otras bases pueden usarse en lugar de piperidina en desproteger el extremo amino protegido de la cadena peptídica en crecimiento. Similarmente, aunque se da HBTU en el diagrama anterior como agente activante, se pueden usar otros agentes activantes tales como DCC, DIC, DCC + HOBt, OSu, ésteres activados, azida o trifenil-fosforil-azida. Adicionalmente, se puede usar el péptido protegido con cloruro de ácido o bromuro de ácido para acoplar directamente al aminoácido o fragmento peptídico. Al completarse el ensamblamiento se desprotege el extremo N del oligopéptido y el péptido protegido en el extremo C está listo para aceptar la protección de extremo N.
Método general para la preparación de oligopéptidos protegidos en el extremo N mediante síntesis en fase de solución
Cuando se construye el oligopéptido protegido en el extremo N mediante síntesis en fase de solución, el extremo protegido en el extremo N necesita ser sintetizado por un método ligeramente modificado (Figura 4). Primeramente el extremo C del Fmoc-oligopéptido necesita ser protegido con un grupo protector lábil a los ácidos o sensible a la hidrogenación compatible con la desprotección selectiva del extremo C sobre el extremo N. Luego el grupo protector Fmoc necesita ser separado del oligopéptido para revelar el extremo N. Con el extremo N desprotegido y el extremo C protegido, el oligopéptido se hace reaccionar con el hemiéster activado del protector de N deseado. El protector de N se puede activar usando métodos para activar aminoácidos tales como DCC o HATU en base y un disolvente apropiado. Alternativamente, cuando se usa hemisuccinato de metilo, el acoplamiento también se puede hacer vía cloruro de hemisuccinato de metilo (u otro haluro de ácido) (Figura 4) usando un disolvente inerte en presencia de una base orgánica o inorgánica, tales como DIEA, trietilamina o Cs_{2}CO_{3}. Un ejemplo de dicha síntesis puede ser haciendo reaccionar hemisuccinato de metilo y éster bencílico del oligopéptido 38 (véase la Figura 10A). El método de acoplamiento puede ser uno cualquiera de los métodos generalmente usados en la técnica (véanse por ejemplo: Bodanszky, M., The Practice of Peptide Synthesis, Springer Verlag, 185 (1984); Bodanszky, M., Principies of Peptide Synthesis, Springer Verlag, 159 (1984). Luego se puede separar el grupo bencilo por hidrogenación catalítica proporcionando la forma de metil-succinilo protegida en el extremo N del oligopéptido 38. Otros ejemplos de grupos protectores del C terminal selectivamente separables adecuados, pueden ser, pero sin limitación, tBu, alcoxi-metilo y TCE. Otros métodos de conseguir esta etapa se describen en la literatura técnica.
Cualquier combinación del método anterior puede considerarse, tal como "condensación de fragmentos" de di-, o tri-péptidos. Las condiciones de reacción son bien conocidas en la técnica y están detalladas en las citas dadas. La ventaja de los métodos antes descritos es la fácil purificación del producto producido por síntesis en fase de solución.
Conjugado del profármaco Métodos generales para las etapas de conjugación y desprotección
La forma protegida en el extremo N del oligopéptido-agente terapéutico (conjugados del profármaco) descrita en esta invención se puede sintetizar acoplando una forma Fmoc (que significa que Fmoc está unido al extremo N del oligopéptido) del oligopéptido con daunorubicina o cualquier agente terapéutico apropiado usando los reactivos activantes estándares usados en la síntesis de péptidos. El disolvente puede ser tolueno, acetato de etilo, DMF, DMSO, CH_{3}CN, NMP, THF, DCM o cualquier otro disolvente inerte adecuado como es conocido en la técnica y los reactivos son solubles en él. Los disolventes preferidos son DMF y NMP. El intervalo de temperatura apropiado es -25 a +25ºC, prefiriéndose la temperatura ambiente. El agente activante se puede seleccionar de uno de los siguientes: de PyBOP, HBTU, HATU, EDC, DIC, DCC, DCC+HOBT, OSu, ésteres activados, azida o trifenilfosforilazida. El agente activante preferido es HBTU o HATU. Alternativamente, se puede usar también para esta reacción de acoplamiento el cloruro de ácido o el bromuro de ácido del péptido protegido. Para la reacción de acoplamiento se requieren 2-4 equivalentes, ventajosamente 2-2,5 equivalentes de una base. La base se puede seleccionar de bases inorgánicas tales como CsCO_{3}, Na o K_{2}CO_{3}, o bases orgánicas, tales como TEA, DIEA, DBU, DBN, DBO, piridina, piridinas sustituidas, N-metil-morfolina etc., preferiblemente TEA o DIEA. La reacción se puede llevar a cabo a temperaturas entre -15ºC y 50ºC, ventajosamente entre -10ºC y 10ºC. El tiempo de reacción está entre 5-90 minutos y ventajosamente es 20-40 minutos. El producto se aísla vertiendo la mezcla de reacción en agua y filtrando el precipitado formado. El producto bruto se puede purificar adicionalmente por recristalización en DCM, THF, acetato de etilo o acetonitrilo, preferiblemente en diclorometano o acetonitrilo. La forma Fmoc aislada del conjugado oligopéptido-agente terapéutico se desprotege luego durante 2-90 minutos, preferiblemente 3-8 minutos, usando un exceso de diez a cien veces de base a una temperatura entre -10ºC y 50ºC. Idealmente se prefieren 5-60 equivalentes de la base. La piperidina es la base preferida para desproteger los grupos Fmoc. El extremo amino desprotegido del conjugado oligopéptido-agente terapéutico se acila con un anhídrido de diácido como hemi-éster activado para dar la forma protegida en el extremo N final del oligopéptido-agente terapéutico (profármaco).
Alternativamente, el profármaco final se puede preparar similarmente a partir de la forma protegida en el extremo N del oligopéptido, tal como una forma de hemiéster metílico de oligopéptido protegido en el extremo N con succinilo y conjugado a un agente terapéutico. Este método se ilustra en la Figura 6. El oligopéptido-agente terapéutico protegido en el extremo N se desprotege ahora por métodos compatibles para la estabilidad del agente terapéutico. Por ejemplo, para las antraciclinas los autores del invento protegimos con un grupo metilo y desprotegimos con una esterasa. Para otros agentes terapéuticos para desproteger podríamos seleccionar grupos protectores bencilo e hidrogenación catalítica.
La forma sal del oligopéptido protegido en el extremo N-agente terapéutico se prepara con un disolvente seleccionado del grupo siguiente: alcohol (incluyendo metanol, etanol o isopropanol), agua, acetonitrilo, tetrahidrofurano, diglima u otros disolventes polares. La fuente de sodio es un equivalente molar de NaHCO_{3}, NaOH, Na_{2}CO_{3}, NaOAc, NaOCH_{3} (en general alcóxido de sodio) o NaH. Una columna de cambio aniónico cargada con Na^{+} (tal como cambiadores iónicos fuertes o débiles) también es útil para esta última etapa de preparar la forma sal de oligopéptido protegido en el extremo N- agente terapéutico cuando sea apropiado. El sodio se describe en esta aplicación solo como un ejemplo. Cualquier sal farmacéuticamente aceptable se puede usar para protectores de N cargados negativamente.
Generalmente, el profármaco se puede convertir en una forma de sal farmacéuticamente aceptable para mejorar la solubilidad de dicho profármaco. El oligopéptido protegido en el extremo N-agente terapéutico se neutraliza con una sal farmacéuticamente aceptable por ejemplo, NaHCO_{3}, Na_{2}CO_{3}, NaOH tris(hidroximetil)aminometano, KHCO_{3}, K_{2}CO_{3}, CaCO_{3}, NH_{4}OH, CH_{3}NH_{2}, (CH_{3})_{2}NH, (CH_{3})_{3}N, acetiltrietilamonio. La forma sal preferida del profármaco es la de sodio y la sal neutralizante preferida es NaHCO_{3}.
Está bien documentado que las moléculas de tipo antraciclinas, incluyendo doxorubicina y daunorubicina forman sales en disolventes orgánicos en concentraciones muy bajas (Matzanke, B. F., et al., Eur. J. Biochem., 207:747-55 (1992); Chales, J. B., et al., Biochemistry, 21:3927-32 (1982); Hayakawa, E., et al.; Chem. Pharm. Bull. 39:1282-6 (1991). Los autores de la presente invención hemos encontrado que esto es un obstáculo considerable para conseguir altos rendimientos de producto puro cuando se preparan conjugados de péptido-antraciclina. La formación de gel contribuye a la formación de reacciones secundarias indeseables. Un modo de minimizar este problema es usar soluciones muy diluidas (1-2%) para la reacción de acoplamiento, sin embargo, esto no es práctico en un ambiente de proceso (grandes cantidades de residuos, aislamiento complicado). Para superar este problema hemos inventado un método en donde se usan urea y otros agentes caotrópicos para romper las fuertes fuerzas de unión hidrófobas y por puentes de hidrógeno que forman el gel. Por tanto, si la reacción de acoplamiento se realiza en un disolvente que contiene urea, ventajosamente 20% hasta solución saturada de urea en DMF o NMP, las reacciones secundarias pueden mantenerse por debajo del 2% incluso si la concentración de reaccionantes excede del 10%. Este invención hace que sea práctica la etapa de conjugación a altas concentraciones y produce buenos rendimientos y pureza mejorada sobre los métodos que no usan urea ni otros agentes caotrópicos.
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Método enzimático general
La hidrólisis de oligopéptido protegido en el extremo N-agente terapéutico hasta el compuesto totalmente protegido en el extremo N catalizada por ácidos o bases conduce a una mezcla de reacción compleja debido a la labilidad de muchos agentes terapéuticos incluso en condiciones moderadamente ácidas o básicas. Los inventores hemos encontrado que las enzimas pueden promover la hidrólisis sin destruir el sustrato o el producto. Las enzimas adecuadas para esta reacción se pueden seleccionar de esterasas, lipasas y pueden estar en sus formas naturales, solubles en agua o inmovilizadas por acoplamiento cruzado, o unión a materiales de soporte sólidos comercialmente disponibles De las enzimas solubles evaluadas es especialmente útil la lipasa de Candida Antarctica "B" (Altus Biologics). Ejemplos de enzimas inmovilizadas por acoplamiento cruzado es ChiroCLEC-PC^{TM} (Altus Biologics). La lipasa de Candida Antarctica "B" Altus Biologics) se puede inmovilizar por reacción con Sepharose^{TM} 4 Fast Flow (American Pharmacia Biotech) activada con NHS. El pH de la mezcla de reacción durante la hidrólisis se controla cuidadosamente y se mantiene pH fijo entre 5,5 y 7,5, ventajosamente entre 5,7 y 6,5, mediante la adición controlada de solución de NaHCO_{3}. Cuando se completa la reacción el producto se aísla por liofilización de la mezcla de reacción filtrada. Las enzimas inmovilizadas permanecen sobre la torta de filtración y, si se desea, se pueden reutilizar.
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Método general del éster alílico
El profármaco también puede prepararse mediante acoplamiento de la forma hemi-ésteres de alilo de oligopéptido protegido en el extremo N con un agente terapéutico y luego liberando el ácido libre del conjugado. La Figura 8 ilustra este proceso con Sucinil-\betaAla-Leu-Ala-Leu y doxorubicina.
El acoplamiento de alil-sucinil-\betaAla-Leu-Ala-Leu con doxorubicina se puede llevar a cabo mediante uno de los métodos de conjugación de oligopéptidos.
La alil-sucinil-\betaAla-Leu-Ala-Leu-doxorubicina también puede ser sintetizada haciendo reaccionar hemisuccinato de alilo, que se preparó por métodos conocidos (Casimir, J. R., et. al., Tet. Lett. 36/19 3409 (1995)), con \beta-Ala-Leu-Ala-Leu-doxorubicina similarmente como se describió el acoplamiento de los precursores del tetrapéptido protegido con la doxorubicina en los métodos previos. Los disolventes inertes adecuados son THF, diclorometano, acetato de etilo, tolueno, preferiblemente THF a partir del cual precipita la forma ácido del producto a medida que progresa la reacción. El ácido aislado se convierte en su sal sódica como se ha descrito antes. Los tiempos de reacción varían entre 10-180 minutos, ventajosamente 10-60 minutos, a temperaturas entre 0-60ºC, preferiblemente 15-30ºC.
La separación del grupo alilo puede realizarse con Pd (0), o Ni(0), ventajosamente el Pd(0) promovió la transferencia del grupo alilo a las moléculas aceptoras, como es bien conocido en la técnica y documentado en la literatura profesional (Genet, J-P, et al., Tet. Lett., 50, 497, 1994; Bricout, H., et. al Tet. Lett., 54:1073 (1998), Genet, J-P. et. al. Synlett, 680 (1993); Waldmann, H., et. al., Bioorg. Med. Chem., 7:749 (1998); Shaphiro, G., Buechler, D., Tet. Lett., 35:5421 (1994)). La cantidad de catalizador puede ser 0,5-25% en moles respecto al sustrato.
Método general con tritilo o tritilo sustituido
El profármaco también se puede sintetizar mediante el método mostrado en la Figura 7. Este enfoque utiliza un R'-tetrapéptido, en donde R' es tritilo o tritilo sustituido. El acoplamiento del R'-tetrapéptido con un agente terapéutico se puede realizar mediante uno de los métodos descritos antes para conjugación de un oligopéptido protegido con un agente terapéutico a 30-120 minutos a 0-20ºC.
La separación del grupo tritilo o tritilo sustituido se puede conseguir en condiciones ácidas para dar el profármaco cargado positivamente. Este profármaco cargado positivamente está protegido en N como se ilustra en la Figura 4 y se describe anteriormente. La desprotección del tritilo se puede conseguir con ácido acético, ácido fórmico y ácido clorhídrico diluido.
El profármaco se puede convertir en el agente terapéutico succinil- o glutaril-oligopéptido 38 haciéndolo reaccionar con anhídrido succínico. El agente terapéutico succinil- o glutaril-oligopéptido 38 se puede convertir en cualquier sal farmacéuticamente aceptable. El disolvente para la etapa de acoplamiento DMF, DMSO, CH_{3}CN, NMP, o cualquier otro disolvente adecuado es conocido en la técnica.
Método general de conjugación en fase sólida en dirección inversa
El compuesto profármaco de la presente invención se puede sintetizar usando química de fase sólida mediante métodos de dirección "por etapas" inverso (a partir del N-terminal hasta el C-terminal).
Un modo es usar resinas para inmovilizar hemiéster succinílico, por ejemplo éster succinil-mono-bencílico o éster alílico. Ejemplos de resinas que podrían ser seleccionadas son "Resina de Wang" (Wang, S. S., J. Am. Chem. Soc., 95:1328 (1973); Zhang, C, Mjaili, A. M. M., Tet. Lett,. 37:5457(1996)), "Resinas de Rink" (Rink, H., Tet. Let., 28:3787 (1987)), "Resina de tritilo o tritilo sustituido", (Chen, C., et. al., J. Am. Chem. Soc., 116:2661 (1994); Bartos, K. et. al., Peptides. Proc. 22^{nd} European Peptide Symposium (1992); Schneider, C. H.; Eberle, A. N. (Eds.), ESCOM. Leiden, pp. 281 (1993). El éster inmovilizado se desprotege luego y se hace reaccionar con \beta-alanina similarmente protegida en el C terminal. Estas etapas se repiten luego con leucina, alanina, y finalmente ésteres de leucina seguido por el acoplamiento de doxorubicina al succinil-tetrapéptido inmovilizado. La molécula se libera luego de la resina usando condiciones ácidas suaves para formar Suc-oligopéptido 38-doxorubicina libre. Esta metodología se representa en el esquema de la Figura 9. Otra versión de la síntesis en fase sólida sería cuando el éster succinil-tetrapéptido está inmovilizado. Luego se desprotege C-terminalmente, seguido por la etapa de acoplamiento a la doxorubicina y finalmente se libera de la resina como se representa en el esquema de la Figura 9. La forma ácida de la molécula de profármaco se convierte finalmente en su sal de sodio como se ha descrito antes.
Compuestos específicos
Compuestos de la invención incluyen los profármacos, Suc-\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dox, Suc-\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dnr, y Glutaril-\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dox.Dox,
Adicionalmente, son importantes para el proceso de preparación de los profármacos de la invención los siguientes compuestos intermedios:
\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dox
Trityl-\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dox
Difenilmetil-\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dox
Benciloxicarbonil-\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dox
Fmoc-\betaAla-Leu-Ala-Leu-OBn
\betaAla-Leu-Ala-Leu-OBn
Metil-sucinil-\betaAla-Leu-Ala-Leu-OBn,
Metil-sucinil-\betaAla-Leu-Ala-Leu,
Fmoc-\betaAla-Leu-Ala-Leu,
Fmoc-Thi-Tyr-Gly-Leu,
Fmoc-\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dnr,
Fmoc-Thi-Tyr-Gly-Leu-Dnr
Suc-Thi-Tyr-Gly-Leu-Dnr
Gl-\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dox
Lactato de \betaAla-Leu-Ala-Leu-Dox
Alil-sucinil-\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dox
Suc-\betaAla-Leu-Ala-Leu
Ésteres metílicos de Suc-\betaAla-Leu-Ala-Leu
Fmoc-\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dox
Metil-sucinil-\betaAla-Leu-Ala-Leu-Dox, y
Hemi-sucinato de alilo.
Ejemplos
Ejemplo 1
Escrutinio de profármacos potenciales con trouasa y sangre humana
Basándose en los análisis por HPLC de los productos de digestión, la activación de peptidil-toxina a toxina libre tiene lugar por medio de una serie de reacciones de escisión catalizadas por enzimas. Por ejemplo, la tetrapeptidil protegido en el extremo N-toxina, succinil-\beta-alanil-leucil-alanil-leucil-doxorubicina, se convierte en leucil-doxorubicina en extractos de células de carcinoma o medios acondicionados de células de carcinoma en dos etapas catalizadas por al menos dos enzimas. La escisión inicial por endopeptidasa tiene lugar entre los aminoácidos AA^{3} (P1) y AA^{2} (P1') proporcionando la alanil-leucil-doxorubicina. Posteriormente, la exopeptidasa separa la alanina dando leucil-doxorubicina que se sabe que es absorbida por las células en las que se libera la toxina activa, doxorubicina.
Un buen candidato para el profármaco peptidil protegido en el extremo N-toxina de mayor índice terapéutico debe ser activado por las células cancerígenas pero ser relativamente estable en la sangre humana completa. Se utilizaron tres preparaciones diferentes de carcinoma para escrutar las diversas peptidil protegido en el extremo N-toxinas. Estas tres preparaciones fueron las siguientes:
(a)
homogeneizado de células MCF 7/6 (carcinoma de mama)
(b)
medios acondicionados de MCF 7/6 (carcinoma de mama), y
(c)
mezcla de fracciones de intercambio aniónico de extracto de células HeLa (carcinoma cervical).
Los compuestos que podían ser hidrolizados dando un conjugado de toxina y un solo aminoácido se volvieron a analizar para determinar la estabilidad en la sangre humana completa.
Las muestras de ensayo se incubaron a 37ºC durante 2 horas con las tres preparaciones diferentes de la enzima de carcinoma y con la sangre completa, extraída con acetonitrilo, y analizada por HPLC, utilizando detección por fluorescencia. Con pocas excepciones, los resultados de la escisión catalizada por enzimas de carcinoma fueron los mismos para una fracción parcialmente purificada a partir de células HeLa, homogeneizado de células MFC 7/6 o medios acondicionados de MCF 7/6.
Preparación de soluciones de enzimas de células de carcinoma (a) Homogeneizado de células MCF 7/6
Las células MCF 7/6 se cultivaron hasta confluencia en un medio exento de suero que contenía DMEM:F 12 (1:1), 50 mg/L de seroalbúmina bovina, ITS-X y concentrado lipídico. Se recogieron 100 mL de células por centrifugación a 4ºC y 10.000 x g, durante 20 minutos y se decantó el líquido sobrenadante. El sedimento se volvió a poner en suspensión en 2 mL de solución salina tamponada con fosfato (Gibco) y se volvió a centrifugar a 18.000 x g durante 10 minutos. Después de decantar el líquido sobrenadante, se homogeneizaron las células (aproximadamente 300 \muL en húmedo) triturándolas en 1,7 mL de tampón HEPES 10 mM a pH 7,2 (sal sódica). El homogeneizado se centrifugó a 18.000 x g a 4ºC durante 5 minutos y el líquido sobrenadante se dividió en partes alícuotas y se conservó a \leq -20ºC para un uso posterior en el escrutinio del compuesto.
(b) Medios acondicionados de MCF 7/6
Las células MCF 7/6 se cultivaron hasta confluencia en medio DMEM/F 12 (1:1) que contenía suero bovino fetal al 10%, L-glutamina al 0,05% (p/v), 250 UI/mL de penicilina y 100 \mug/mL de estreptomicina. A continuación las células se lavaron dos veces con solución salina tamponada con fosfato y se incubaron 24 hora en CO_{2} al 5%, a 37ºC, en DMEMIF12 (1:1), BSA al 0,02% e ITSX. A continuación se decantaron los medios acondicionados y utilizando una aparato de células agitadas provisto de una membrana de ultrafiltración YM10 (límite de exclusión de peso molecular 10.000) (Millipore), se intercambiaron una vez con tampón HEPES 10 mM, a pH 7,2 y se concentraron veinte veces. Esta solución se conservó en partes alícuotas a -20ºC para utilizar en el escrutinio del compuesto.
(c) Mezcla de fracciones de intercambio aniónico de células HeLa
Treinta mil millones de células HeLa producidas comercialmente (carcinoma cervical humano, Computer Cell Culture Center, Seneffe, Bélgica) se homogeneizaron en un equipo de ultrasonidos y con un homogeneizador Dounce en 108 mL de solución acuosa de lisis. La solución de lisis contenía Triton X-100 al 0,02% p/v, azida de sodio al 0,04% p/v y un cóctel de inhibidores de proteasa (2 comprimidos/50 mL de Complete^{TM}, comprimidos exentos de EDTA, Roche Molecular Biochemicals). El homogeneizado celular se centrifugó 30 minutos a 4ºC a 5000 x g y el sedimento se homogeneizó en otros 108 mL de solución de lisis utilizando un homogeneizador Dounce y se centrifugó como anteriormente. Se reunieron los líquidos sobrenadantes y se centrifugaron durante 90 minutos a 60.000 x g a 4ºC.
Cromatografía
Una porción del líquido sobrenadante de la ultracentrifugación se diluyó dos veces con un tampón de trietanolamina.HCl 20 mM a pH 7,2 que contenía Triton X-100 al 0,01% (p/v) y azida de sodio al 0,02% (p/v) (tampón de equilibrado). 30 mL de la solución resultante, correspondiente a aproximadamente 180 mg de proteína, se cargaron (1 ml/minuto) a 4ºC en una columna cromatográfica de intercambio aniónico a baja presión Source^{TM} 15Q (Amersham Pharmacia Biotech) de 2,6 x 9,4 cm. A continuación se lavó la columna con 250 ml del tampón de equilibrado y un caudal de 1 mL/minuto. Las proteínas se eluyeron en un gradiente de concentración lineal de NaCl (0-0,5 M en el tampón de equilibrado, el volumen total del gradiente fue 1000 ml) a un caudal de 3 mL/minuto. Se recogieron fracciones cada dos minutos y se utilizaron para la determinación de la actividad enzimática usando como sustrato \beta-alanil-leucil-alanil-leucil-doxorubicina. Su transformación en L-alanil-L-leucil-doxorubicina se cuantificó por cromatografía de líquidos de alta resolución en fase inversa utilizando la detección por fluorescencia del resto de antraciclina. Se mezclaron las fracciones que contenían los mayores niveles de actividad (fracciones nº 43-46; NaCl \sim0,13 M), complementadas con inhibidores de proteasa (Complete^{TM}, comprimidos exentos de EDTA, Roche Molecular Biochemicals) y se conservaron en partes alícuotas a -80ºC.
Sangre humana completa
La sangre humana se recogió usando tubos comerciales para la recogida de la sangre completa con citrato tamponado con ácidos.
Escrutinio de los compuestos
Los compuestos de ensayo se incubaron durante 2 horas a 37ºC a una concentración de 12,5 \mug/mL con las siguientes soluciones enzimáticas:
a)
homogeneizado de células MFC 7/6 diluido 1:27 en HEPES 10 mM, CoCl_{2} 1 mM, a pH 7,2
b)
medios acondicionados de MFC 7/6
c)
mezcla 1 de fracciones del intercambio aniónico de células HeLa diluida 1:57 en HEPES 10 mM, CoCl_{2} 1 mM a pH 7,2.
d)
sangre humana completa que contenía CoCl_{2} 1 mM
Después de la incubación, se añadieron tres volúmenes de acetonitrilo para detener la reacción y separar la proteína de la mezcla. La muestra se centrifugó a 18.000 g durante 5 minutos y se mezclaron 100 \muL del líquido sobrenadante con 300 \muL de agua antes del análisis por HPLC.
Para el análisis por HPLC se inyectaron 50 \muL de la muestra en una columna cromatográfica TSK Super-ODS de 2 \mum, 4,6 x 50 mm a 40ºC y se eluyó 3 minutos con un gradiente lineal desde 26% a 68% de acetonitrilo en tampón de acetato de amonio acuoso 20 mM a pH 4,5 y a 2 mL/min. La detección se realizó por fluorescencia usando una longitud de onda de excitación de 235 nm y una longitud de onda de emisión de 560 nm.
Los oligopéptidos que fueron escindidos por la trouasa en las condiciones dadas y eran estables en la sangre humana se muestran en las Figuras 10A-10C.
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Ejemplo 2
La especificidad para la trouasa la proporciona un aminoácido no codificado genéticamente en la posición P2
La especificidad se consigue por incorporación de un aminoácido no codificado genéticamente en lugar de un aminoácido codificado genéticamente en la posición P2. Específicamente, la (protección en el extremo N con succinilo)-(oligopéptido 38)-daunorubicina, que contenía el aminoácido no codificado genéticamente \beta-alanina en la posición P2, se incubó durante 2 horas a 37ºC con cada una de las preparaciones enzimáticas preparadas como se ha descrito en el Ejemplo 1. A continuación se estimó el grado de escisión analizando por HPLC las mezclas resultantes. Estos resultados se compararon con los resultados obtenidos con las mismas incubaciones realizadas con el mismo compuesto excepto que en la posición P2 se encontraba el aminoácido genéticamente codificado L-alanina. El grado (índice) de escisión por el homogenizado celular era 1,3 veces mayor con el compuesto con L-alanina en la posición P2 que con el compuesto con \beta-alanina en la posición P2. El grado de escisión por el medio acondicionado era aproximadamente igual en los dos compuestos. Sin embargo, con la preparación de trouasa parcialmente purificada, el grado de escisión del compuesto con L-alanina en la posición P2 era sólo 0,6 veces el del compuesto con \beta-alanina en la posición P2. Estos resultados sugieren que la presencia de L-alanina en la posición P2 puede haber proporcionado un segundo sitio de escisión para las mezclas de enzimas más en bruto; reduciendo así la probabilidad de que, in vivo, la liberación del fármaco activo estaría localizada en el tejido tumoral.
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Ejemplo 3
El profármaco es eficaz y bien tolerado en los modelos de xeno-injerto de tumor
El conjugado (protección en el extremo N con succinilo)-(oligopéptido 38)-agente terapéutico Dox ha demostrado ser eficaz en la inhibición del desarrollo de tumores humanos en diversos modelos de xenoinjerto en ratones atímicos, incluyendo el tumor de mama MCF-7/6 dependiente de estrógenos y los carcinomas colo-rectales resistentes a adriamicina CXF280/10 y LS-174T. Por ejemplo, cuando grupos de 10 ratones con tumores LS 174T implantados por vía subcutánea se trataron semanalmente con cinco dosis intravenosas del conjugado (protección en el extremo N con succinilo)-(oligopéptido 38)-agente terapéutico Dox, se observó una significativa extensión replicable dependiente de la dosis en los valores medios de los días de supervivencia (VMDS), así como una disminución del tamaño del tumor (volumen del tumor) en comparación con los controles tratados con vehículos (Grupo 1) a las dosis de 57 (Grupo 2), 64 (Grupo 3) y 71 (Grupo 4) mg/kg del conjugado (protección en el extremo N con succinilo)-(oligopéptido 38)-agente terapéutico Dox, siendo la mayor dosis equivalente a 40 mg/kg de doxorubicina (véase la Figura 11). El fármaco era inocuo y bien tolerado a niveles de dosis repetidas y frecuencias de dosificación que demostraron eficacia anti-tumoral. Se observó alguna pérdida de peso corporal dependiente de la dosis. En estudios de apoyo, no se observaron toxicidad en el riñón ni mielosupresión a dosis de hasta 106,8 mg/kg del conjugado (protección en el extremo N con succinilo)-(oligopéptido 38)-agente terapéutico Dox.
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Ejemplo 4
El profármaco es más inocuo y más eficaz que los compuestos con los que se compara
Se pudieron administrar dosis significativamente mayores del conjugado (protección en el extremo N con succini-
lo)-(oligopéptido 38)-agente terapéutico Dox, en comparación con la doxorubicina, consiguiendo una eficacia sin toxicidad significativa en el modelo de xenoinjerto de carcinoma colo-rectal humano LS-174T. El conjugado (protegido en el extremo N con succinilo (Grupo 5))-(oligopéptido 38)-agente terapéutico Dox, a dosis eficaces de 49 (Grupo 3), 57 (Grupo 4) y 64 mg/kg (Grupo 5) mostró una eficacia superior en comparación con la de doxorubicina a 3,0 mg/kg (Grupo 2) y solución salina (Grupo 1), en inhibir el tumor LS-174T de crecimiento rápido, resistente a adriamicina (Figura 12). Se observó la toxicidad limitante de la dosis (cardiotoxicidad y mielosupresión) administrando repetidamente doxorubicina a 3 mg/kg o superior (Grupo 2). Así los autores de la presente invención demostramos que pueden administrarse mayores dosis del conjugado (protección en el extremo N con succinilo)-(oligopéptido 38)-agente terapéutico Dox, que de doxorubicina, favoreciendo la inhibición del tumor sobre la toxicidad sistémica.
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Ejemplo 5
Agregación de \betaAlaLeuAlaLeu-Dox
Se ha demostrado que los fármacos de antraciclina poco solubles forman agregados cuando se preparan en tampones acuosos. Menozzi, et al., Self-association of doxorubicin and related compounds in aqueous solutions, J. Pharmaceut. Sci., 73(6):766-770 (1984). Confalonieri, C. et al., The use of new laser particle sizer and shape analyser to detect and evaluate gelatinous microparticles suspended in reconstituted anthracycline infusion solutions, J. Pharmaceut. Biomed. Anal., 9(1):1-8 (1991). Se realizó una estimación del tamaño del agregado \betaAlaLeuAlaLeu-Dox en una solución acuosa de 17,4 \mumol/ml intentando filtrar estas soluciones a través de unidades de filtración Amicon Centricon^{TM}. Se disolvieron por separado doxorubicina (17,4 \mumol/ml) y \betaAlaLeuAlaLeu-Dox (17,4 \mumol/ml) en agua destilada y se colocaron en filtros Centricon con un límite de exclusión de peso molecular (abreviadamente MWCO por la expresión inglesa molecular weight cutoff) de 3.000, 10.000, 30.000 y 50.000. Cada unidad filtrante se centrifugó durante 2 horas a 1500 g. La cantidad de fármaco retenida y la que pasaba a través del filtró se cuantificó a \lambda 475 nm y se convirtió en porcentaje. La Tabla 1 siguiente muestra que el 81% de la doxorubicina pasaba el filtro de 3.000 MWCO mientras que sólo el 5% del conjugado, \betaAlaLeuAlaLeu-Dox pasaba a través del filtro de 3.000 de MWCO. Los datos también muestran que la unidad de 50.000 MWCO retiene más del 40% del \betaAlaLeuAlaLeu-Dox. Estos datos demuestran que un porcentaje significativo de agregados de \betaAlaLeuAlaLeu-Dox tenían un tamaño mayor que 50 kD (>50 moléculas/agregado).
Esto demuestra que a la dosis especificada en el Ejemplo 6, siguiente, el conjugado estaba en estado agregado. Por consiguiente, estos datos apoyan la hipótesis de que los agregados del conjugado oligopéptido 38-agente terapéutico doxorubicina, contribuyen a la toxicidad aguda observada en estos agregados moleculares cargados positivamente.
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TABLA 1
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Ejemplo 6
Inyección intravenosa de \betaAlaLeuAlaLeu-Dox en ratones
Se sabe que se produce probablemente una toxicidad aguda por la interacción de polímeros cargados positivamente, tales como protaminas, polilisina o sus agregados, y la superficie luminal de los vasos sanguíneos. DeLucia III, A., et al., Efficacy and toxicity of differently charged polycationic protamine-like peptides for heparin anticoagulation reversal, J. Vasc. Surg. 18:49-60 (1993). Ekrami, H. M. and Shen, W. C., Carbamylation decreases the cytotoxicity but not the drug-carrier properties of polylysines, J. Drug Targ., 2:469-475 (1995). Se ha demostrado además que la heparina reduce los efectos tóxicos del sulfato de protamina en el miocardio de conejo. Wakefield, T. W., et al., Heparin-mediated reductions of the toxic effects of protamine sulfate on rabbit myocardium, J. Vasc. Surg., 16:47-53 (1992). Para demostrar la hipótesis de que la toxicidad aguda observada en la presente invención era debida a los agregados de los profármacos cargados positivamente, se administró \betaAlaLeuAlaLeu-Dox (174 \mumol/mL) a ratones después de un tratamiento previo de 1 hora con 4.000 U.I. de heparina por vía intravenosa (IV) en comparación con el control (IV). La Tabla 2 muestra que después de la heparina, una dosis anteriormente agudamente letal de \betaAlaLeuAlaLeu-Dox era significativamente menos tóxica.
Estos datos apoyan la hipótesis de que la toxicidad aguda es debida a un agregado cargado positivamente que provoca un efecto similar al observado con las protaminas o polilisina. Los profármacos cargados negativamente y con carga neutra de la invención no presentan este efecto secundario indeseable.
TABLA 2
2
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De acuerdo con la hipótesis antes mencionada, la protección del grupo amino terminal de \betaAlaLeuAlaLeu-Dox con un resto cargado negativamente dio como resultado la desaparición completa del efecto de toxicidad aguda a niveles de dosis tan elevadas como 250 mg de doxorubicina. HCl eq./Kg.
Como prueba de esto, en un experimento relacionado, todos los animales sobrevivieron hasta 8 días cuando se trataron por vía intravenosa de tres a cinco ratones por grupo con un bolo por vía IV de 250 mg/kg (Dox.HCl eq.) de succinil-\betaAlaLeuAlaLeu-Dox y glutaril-\betaAlaLeuAlaLeu-Dox.
Métodos analíticos para los ejemplos restantes
Las secuencias peptídicas, sintetizadas por métodos en fase sólida o en solución, se utilizaron sin más purificación si la HPLC analítica (métodos A, B y D) mostró que el producto en bruto tenía una pureza superior al 80%. Si no era así, el material se purificó por el Método C de HPLC preparativa.
Método A de HPLC
Los análisis por HPLC analítica se realizaron en un sistema Waters 2690 utilizando una columna C-18 (4 \mum, DI 3,9 x 150 mm, caudal 1 mL/min) eluyendo con un gradiente de disolvente A (TFA al 0,1%/H_{2}O) y disolvente B (TFA al 0,1%/ACN) y los datos se procesaron a \lambda 254 nm usando el sistema Waters Millennium. El gradiente de la HPLC analítica comenzó con 90% de disolvente A y terminó con 100% de disolvente B durante un periodo de 14 minutos (lineal). La pureza de los compuestos para este método y los siguientes se determinó como el área en porcentaje relativo bajo la curva de los picos.
Método B de HPLC
Los análisis por HPLC analítica se realizaron en un sistema Waters 2690 utilizando una columna C-8 (3,5 \mum, DI 4,6 x 150 mm, caudal 1 mL/min) eluyendo con un gradiente de disolvente A (80% de formiato de amonio 20 mM y 20% de acetonitrilo) y disolvente B (20% de formiato de amonio 20 mM y 80% de acetonitrilo) y los datos se trataron a \lambda 254 nm usando el sistema Waters Millennium. El gradiente de la HPLC analítica comenzó con 100% de disolvente A hasta 100% de disolvente B durante un periodo de 30 minutos (lineal).
Método C de HPLC
La purificación preparativa de los productos en bruto se realizó utilizando un sistema Waters Delta Prep 4000 con una columna C-4 (15 \mum, DI 40 x 100 mm, caudal 30 mL/min) eluyendo con un gradiente de disolvente A (H_{2}O) y disolvente B (MeOH). El gradiente de la HPLC preparatoria comenzó con 80% de disolvente A y llegó hasta 100% de disolvente B durante un periodo de 70 minutos (lineal). Los datos se trataron a \lambda 254 nm usando el sistema Waters Millennium.
Método D de HPLC
La HPLC analítica se realizó en un instrumento Hewlett Packard utilizando una columna TSK superODS (TosoHaas); disolvente A (0,1% de TFA en agua); disolvente B (0,1% de TFA en acetonitrilo); gradiente: 30 a 36% de B en 2 minutos, 36 a 41% de B en 10 minutos, 41 a 90% de B en 3 minutos, 5 minutos con 90% de B, longitud de onda de la detección \lambda 254 nm.
Resonancia magnética nuclear (RMN) y espectroscopía de masas (EM)
Se realizaron determinaciones estructurales adicionales por técnicas de RMN y EM y los resultados apoyaban los compuestos reivindicados.
Método de cromatografía en cada fina (CCF)
Los análisis por CCF se realizaron en placas de gel de sílice 60F-254 nm-0,25 mm (Merck) con una solución al 88% de DCM/MeOH/H_{2}O/ácido fórmico 85/15/1/2 para elución.
Ensayo con ninhidrina
Se introdujeron unos cuantos miligramos de producto en un tubo de ensayo y se añadieron dos gotas de Solución A (50 mg/mL de ninhidrina en etanol), dos gotas de Solución B (4 mg/mL de fenol en etanol) y a continuación dos gotas de Solución C (2 mL de KSCN 0,01 M, acuoso en 100 mL de piridina). La mezcla se dejó en un baño de agua hirviendo durante cinco minutos. En presencia de una amina libre la solución se volvió púrpura.
Ejemplos de síntesis de los oligopéptidos específicos Fuentes de reactivos comercialmente disponibles
La doxorubicina y la daunorubicina fueron suministradas por Meiji (Japón), el Pd(PPh_{3})_{4} por Strem Chem (Newburyport, MA), el PEG por Shearwater (Huntsville, Alabama), los disolventes, HATU por Aldrich (Milwaukee, WI); todas las resinas y aminoácidos fueron suministrados por ABI (Foster City, CA), Novabiochem (San Diego, CA), Advanced ChemTech (Louisville, KY), Peptide International (Louisville, KY) o SynPep (Dublin, CA).
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Ejemplo 7
Forma Fmoc del éster bencílico del oligopéptido 38 [Fmoc-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-OBn]
La forma Fmoc del oligopéptido 38 (24,34 g, 0,04 mol) se añadió a un matraz de fondo redondo con DMF (350 mL) y un agitador magnético. Después que se disolvió el tetrapéptido, se añadió a la solución con agitación bromuro de bencilo (4,76 mL, 0,04 mol), seguido de carbonato de cesio (13,04 g, 0,04 mol). La mezcla de reacción se agitó a la temperatura ambiente durante 1,5 horas. A continuación, la mezcla de reacción se vertió lentamente en un matraz con 450 mL de agua con hielo. Se separó por precipitación una gran cantidad de sólido blanco que se recogió por filtración con succión. El producto se lavó con agua (2 x 200 mL) y se colocó en un desecador a vacío. El producto (24,2 g, 87%) se identificó por HPLC (Pureza: 95%). EM m/z calculado para C_{40}H_{50}N_{4}O_{7} 698,4, encontrado 699,5.
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Ejemplo 8
Éster bencílico del oligopéptido 38 [\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-OBn]
En un matraz de fondo redondo (25 mL), se disolvió la forma Fmoc del éster bencílico del oligopéptido 38 (0,7 g, 1,0 mmol) en 5 mL de DMF anhidra. Se añadió piperidina (1,2 mL, 12,1 mmol) a la solución y la mezcla se agitó a la temperatura ambiente durante 25 minutos. La reacción se detuvo bruscamente con agua (6 mL) y se extrajo con acetato de etilo (2x10 mL). Las capas orgánicas reunidas se lavaron otra vez con agua (2 x 5 mL), salmuera (5 mL) y se secó sobre sulfato de sodio. Después de eliminar el disolvente se obtuvo un sólido blanco (0,8 g). La pureza del producto era sólo del 67%. EM m/z calculado para C_{25}H_{40}N_{4}O_{5} 476,3, encontrado 477,2.
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Ejemplo 9
Forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del éster bencílico del oligopéptido 38 [mono-metil-succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-OBn]
En un matraz de fondo redondo (250 mL), se disolvió hemisuccinato de metilo (3,19 g, 24,2 mmol) en DMF anhidra (50 mL). Se añadieron a la solución DIEA (4,22 mL, 24,2 mmol) seguido por HBTU (9,17 g, 24,2 mmol). La mezcla se agitó a la temperatura ambiente durante 45 minutos. A esta mezcla se añadió una solución de éster bencílico del oligopéptido 38 (en bruto, que contenía 10,14 g, 21,3 mmol) en DMF anhidra (150 mL). La mezcla se agitó continuamente a la temperatura ambiente durante 2,5 horas. A continuación, la mezcla de reacción se vertió lentamente con agitación en un matraz con 200 mL de agua con hielo. Se separó por precipitación una gran cantidad de sólido blanco que se extrajo con acetato de etilo (3 x 200 mL). Las capas orgánicas reunidas se lavaron otra vez con agua (2 x 200 mL), salmuera (200 mL) y se secó sobre sulfato de sodio. Después de eliminar el disolvente se obtuvo un sólido blanco. La recristalización de este producto en bruto en acetato de etilo proporcionó 7,53 g del producto (60%) con una pureza del 80%. EM m/z calculado para C_{30}H_{46}N_{4}O_{8} 591,4, encontrado 590,33.
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Ejemplo 10
Forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del oligopéptido 38 [metil-succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu]
Se introdujo la forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del éster bencílico del oligopéptido 38 (1,0 g, pureza del 86%; 1,46 mmol) en un matraz Erlenmeyer con 100 mL de metanol. La solución se enturbió después de ser agitada durante algunos minutos. Se añadieron 50 mL de metanol, pero la solución todavía no era transparente. La solución se transfirió a un recipiente para reacción de hidrogenación. A este recipiente se añadió Pd-C (90 mg, humedad 10%, agua 50%; 0,042 mmol). Después de hidrogenación durante 2 horas a la temperatura ambiente, se detuvo la reacción y se filtró el catalizador. Después de eliminación del disolvente se obtuvo un sólido blanco (0,77 g, 78%). EM m/z calculado para C_{23}H_{40}N_{4}O_{8} 501,2, encontrado 500,3.
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Ejemplo 11
Síntesis del hemisuccinato de alilo protegido en el extremo N
Esta molécula se preparó según el procedimiento de Casimir, J. R., et. al. Tet. Lett. 36(19):3409, (1995). Se llevaron a reflujo 10,07 g (0,1 mol) de anhídrido succínico y 5,808 g (0,1 mol) de alcohol alílico en 100 mL de tolueno durante 6 horas. La mezcla de reacción se concentró a presión reducida. 15,5 g; 98%. El material resultante era suficientemente puro para ser usado en las reacciones posteriores. La pureza e identidad del producto semi-sólido se confirmó por ^{1}H RMN y ^{13}C RMN y por CL/EM.
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Ejemplo 12
Síntesis de alil-succinil-oligopéptido 38-Dox
En un matraz de fondo redondo (50 ml) se disolvieron la forma protegida en el extremo N con alilhemisuccinilo del oligopéptido 38 (1 g, 1,9 mmol) y doxorubicina (1,1 g, 1,9 mmol) en DMF anhidra (50 ml). Después de agitar la mezcla durante 5 minutos, se añadió a la solución DIEA (0,66 ml, 3,8 mmol) seguido de HATU (0,76 g, 1,9 mmol) y la mezcla se agitó a la temperatura ambiente durante 2 horas. Se separó la DMF con un evaporador rotatorio y el residuo se recogió en 4,0 ml de DCM:MeOH 1:1. A esta solución se añadió lentamente con agitación 100 mL de éter. Se formó un precipitado rojo que se recogió por filtración con succión. El sólido se lavó con éter (2 x 2 ml) y se secó en un desecador a vacío dando el conjugado alil-succinil-oligopéptido 38-agente terapéutico Dox, con una pureza del 90% por el Método B de HPLC.
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Ejemplo 13
Preparación de SSLD a partir de alil-succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-doxorubicina
A una solución agitada de 0,1 g (0,095 mmol) de alil-succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-doxorubicina en 2 mL de THF, bajo atmósfera de nitrógeno, se añadió 0,05 g (0,095 mmol) de tetrakis(trifenilfosfina)paladio en forma sólida. Después de 10 minutos se separó por filtración el precipitado formado durante la reacción y se lavó con THF. Peso seco: 0,1 g. Los sólidos fueron identificados por HPLC, ^{1}H RMN, CL/EM como succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox.
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Ejemplo 14
Síntesis de la forma Fmoc del oligopéptido 38 [Fmoc-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu]
La forma Fmoc del oligopéptido 38 se sintetizó aplicando el método en fase sólida con la química Fmoc estándar. Una síntesis típica usa la resina alcoxídica de Wang (carga de 0,60 mmol/g). Se usaron aminoácidos protegidos por Fmoc para la síntesis de péptidos en fase sólida. Para una escala de péptido 1 mM sobre resina, se pre-activaron 3 equivalentes de aminoácido con HBTU como agente de activación durante 5 minutos antes de ser añadidos a la resina junto con 2 equivalentes de DIEA. La reacción de acoplamiento se realizó durante 2 horas y a continuación se lavó con DMF (25 mL x 3) y DCM (25 mL x 3). Se repitió la reacción de acoplamiento usando 2 equivalentes de aminoácido en condiciones similares. El progreso de la reacción se controló con el ensayo con ninhidrina y si este ensayo con ninhidrina indicaba una reacción incompleta después de 2 horas se repetía por tercera vez la etapa de acoplamiento. Se realizó la desprotección utilizando piperidina al 20% en DMF durante 15-20 minutos. Se repitió la etapa de acoplamiento con el siguiente aminoácido hasta que el péptido deseado se ensambló en la resina. La escisión final del péptido de la resina se realizó tratando la resina con una solución de TFA al 95% y agua al 5%. Después de agitar la mezcla de reacción durante 2 horas a la temperatura ambiente, la resina se filtró a presión reducida y se lavó dos veces con TFA. Se reunieron los filtrados y el péptido precipitó añadiendo 400 mL de éter frío. El péptido se filtró a presión reducida y se secó obteniéndose la forma Fmoc del oligopéptido 38 (94% de pureza por el método A de HPLC). El péptido en bruto se usó en la siguiente etapa sin más purificación.
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Ejemplo 15
Síntesis de la forma Fmoc del oligopéptido 98 [Fmoc-Thi-Tyr-Gly-Leu]
La forma Fmoc del oligopéptido 98 se sintetizó por un método en fase sólida aplicando la química Fmoc estándar y resina alcoxídica de Wang (carga de 0,60 mmol/g). Para la síntesis de péptidos en fase sólida se utilizaron aminoácidos protegidos con Fmoc y Fmoc-Thi-OH. Para una escala de péptido 1 mM sobre resina, se preactivaron 3 equivalentes de aminoácidos con HBTU como agente de activación durante 5 minutos antes de ser añadidos a la resina junto con 2 equivalentes de DIEA. La reacción de acoplamiento se realizó durante 2 horas y a continuación se lavó con DMF (25 mL x 3) y DCM (25 mL x 3). Esta reacción de acoplamiento se repitió utilizando 2 equivalentes de aminoácidos en condiciones similares. El progreso de la reacción se controló utilizando el ensayo con ninhidrina y si este ensayo indicaba una reacción incompleta después de 2 horas se repetía por tercera vez la etapa de acoplamiento. Se realizó la desprotección utilizando piperidina al 20% en DMF durante 15-20 minutos. Se repitió la etapa de acoplamiento con el siguiente aminoácido hasta que el péptido deseado se ensambló en la resina. La escisión final del péptido de la resina se realizó tratando la resina con una solución de TFA al 95% y agua al 5%. Después de agitar la mezcla de reacción durante 2 horas a la temperatura ambiente, la resina se filtró a presión reducida y se lavó dos veces con TFA. Se reunieron los filtrados y el péptido precipitó añadiendo 400 mL de éter frío. El péptido se filtró a presión reducida y se secó obteniéndose la forma Fmoc del oligopéptido 38 (88% de pureza por el método A de HPLC). La forma Fmoc en bruto del oligopéptido 98 se usó en la siguiente etapa sin más purificación.
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Ejemplo 16
Síntesis de la forma Fmoc del oligopéptido 38-agente terapéutico Dnr [Fmoc-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dnr]
Daunorubicina.HCl (185 mg, 0,329 mmol) y la forma Fmoc del oligopéptido 38 (200 mg, 0,329 mmol) se disolvieron a la temperatura ambiente en DMF anhidra (15 mL). A esta solución se añadió agitando rápidamente DIEA (0,115 mL, 0,658 mmol) en una porción y la mezcla de reacción se agitó durante 15 minutos a la temperatura ambiente. La mezcla de reacción se enfrió hasta 0ºC en un baño de hielo y se añadieron lentamente 138 mg (0,362 mmol) de HATU durante 10 minutos. La mezcla de reacción se agitó durante otros 90 minutos a la temperatura ambiente. A esta mezcla de reacción se añadió agua enfriada con hielo (200 mL) que dio como resultado la formación de un precipitado rojo. El precipitado se recogió sobre una frita gruesa, se lavó con 3 x 50 mL de agua y 3 x 50 mL de éter dietílico y se secó a presión reducida obteniéndose el conjugado forma Fmoc del oligopéptido 38-agente terapéutico Dnr (rendimiento del 94%, pureza del 95% por el método A de HPLC). Este producto se usó en la siguiente etapa sin más purificación.
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Ejemplo 17
Síntesis de la forma Fmoc del oligopéptido 98-agente terapéutico daunorubicina (Fmoc-Thi-Tyr-Gly-Leu-Dnr)
Daunorubicina.HCl (90 mg, 0,16 mmol) y la forma Fmoc del oligopéptido 98 (120 mg, 0,16 mmol) se disolvieron a la temperatura ambiente en DMF anhidra (15 mL). A esta solución se añadió agitando rápidamente DIEA (0,56 mL, 0,16 mmol) en una porción y la mezcla de reacción se agitó durante 15 minutos a la temperatura ambiente. La mezcla de reacción se enfrió hasta 0ºC en un baño de hielo y se añadieron lentamente 61 mg (0,16 mmol) de HATU durante 10 minutos. La mezcla de reacción se agitó durante otros 90 minutos a la temperatura ambiente. A esta mezcla de reacción se añadió agua enfriada con hielo (150 mL) que dio como resultado la formación de un precipitado rojo. El precipitado se recogió sobre una frita gruesa, se lavó con 3 x 50 mL de agua y 3 x 50 mL de éter dietílico y se secó a presión reducida obteniéndose el conjugado forma Fmoc del oligopéptido 38-agente terapéutico daunorubicina (rendimiento del 94%, pureza del 91% por el método A de HPLC). Este producto se usó en la siguiente etapa sin más purificación.
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Ejemplo 18
Preparación de Fmoc-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-doxorubicina
3,0 g (5,17 mmol) de hidrocloruro de doxorubicina y 3,15 g (5,17 mmol) de Fmoc-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu se disolvieron a la temperatura ambiente en 230 mL de DMF anhidra bajo nitrógeno. A esta solución se añadió agitando rápidamente 1,798 mL (10,34 mmol) de DIEA en una porción y la mezcla de reacción se agitó a la temperatura ambiente durante 15 minutos. La mezcla de reacción se enfrió hasta \sim -2ºC en un baño de hielo/salmuera y se añadieron gota a gota agitando rápidamente 2,56 g (6,73 mmol) de HATU en 58 mL de DMF durante 12 minutos. La mezcla de reacción se agitó otros 30 minutos a -2ºC y a continuación se añadieron en una porción 0,285 mL (1,64 mmol) de DIEA. Se añadieron inmediatamente 580 mL de agua a 0ºC dando como resultado la formación de un precipitado rojo floculento. El precipitado se recogió sobre una frita de vidrio de porosidad gruesa, se lavó con 3 X 50 mL de agua y 3 x 50 mL de éter dietílico en agua y se secó al aire 16 horas obteniéndose 5,21 g de Fmoc-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox, rendimiento físico del 89,7%, pureza del 90,23% por el método B de HPLC.
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Ejemplo 19
Preparación de succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox a partir de Fmoc-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox
A una solución de 5,0 g (4,41 mmol) de Fmoc-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu en 230 mL de DMF anhidra bajo nitrógeno a la temperatura ambiente, se añadieron en una porción 21,8 mL (220 mmol) de piperidina dando como resultado un cambio de color del rojo al morado. La mezcla de reacción se agitó 5 minutos a la temperatura ambiente y a continuación se enfrió hasta aproximadamente -20ºC en un baño de nieve carbónica/acetona. A continuación se añadieron en una porción 22,5 g (0,225 mol) de anhídrido succínico manteniendo la temperatura ambiente por debajo de -5ºC. Después de agitar durante aproximadamente 2 minutos de -10ºC a -5ºC, el color cambió del morado al rojo/anaranjado. Se retiró el baño de enfriamiento y la mezcla de reacción se agitó durante 10 minutos. A continuación se redujo el volumen de la mezcla de reacción hasta aproximadamente 100 mL por evaporación rotatoria y a continuación se diluyó con 125 mL de cloroformo. A esta solución, se añadieron rápidamente 1400 mL de éter dietílico dando como resultado la formación de un precipitado rojo. Este precipitado se aisló en una frita de vidrio de porosidad media y se trituró con 5 X 200 mL de éter dietílico obteniéndose un material con una pureza del 89,13% por HPLC. El precipitado se lavó de nuevo con 1 x 20 mL de éter dietílico y se secó al aire obteniéndose 3,62 g de succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox (rendimiento físico del 81%, pureza del 88,2% por HPLC). Este material se agitó en 30 mL de agua a 0ºC y se añadieron 33,98 mL (0,95 eq.) de solución acuosa de NaHCO_{3} 0,1 M y se agitó la suspensión resultante hasta que se disolvieron todos los sólidos. Esta solución se liofilizó obteniéndose 3,77 g de succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox, (rendimiento físico del 99%, pureza del 89,06% por el método B de HPLC).
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Ejemplo 20
Síntesis de la forma protegida en el extremo N con succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dnr [Suc-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dnr]
Se añadió piperidina (0,442 mL, 4,48 mmol) a una solución de la forma Fmoc del oligopéptido 38-agente terapéutico Dnr (100 mg, 0,089 mmol) en 5 mL de DMF anhidra. La mezcla de reacción se agitó durante 5 minutos a la temperatura ambiente y a continuación se enfrió hasta -20ºC en un baño de nieve carbónica/acetona. A continuación se añadió a la mezcla de reacción en una porción anhídrido succínico (458 mg, 4,54 mmol). Se agitó rápidamente la mezcla de reacción a -5ºC durante 5 minutos y a continuación a la temperatura ambiente durante otros 90 minutos. A la mezcla de reacción se añadió éter dietílico anhidro, 250 mL, y el precipitado rojo resultante se aisló en una frita de vidrio de porosidad media. La torta de filtración se lavó con dos porciones sucesivas de 50 mL de éter dietílico y se secó a presión reducida obteniéndose la forma protegida en el extremo N con succinilo del conjugado del oligopéptido 38- agente terapéutico Dnr (rendimiento del 80%, pureza del 88% por el método B de HPLC). La CL/EM dio un peso molecular de 995 (peso molecular esperado 996).
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Ejemplo 21
Síntesis de la forma protegida en el extremo N con succinilo del oligopéptido 98- agente terapéutico daunorubicina [Suc-Thi-Tyr-Gly-Leu-Dnr]
A una solución la forma Fmoc del oligopéptido 98-agente terapéutico daunorubicina, (100 mg, 0,079 mmol) en 5 mL de DMF anhidra, se añadió en una porción piperidina (0,391 mL, 3,95 mmol) dando como resultado un cambio de color del rojo al morado. La mezcla de reacción se agitó durante 5 minutos a la temperatura ambiente y a continuación se enfrió hasta -20ºC en un baño de nieve carbónica/acetona. A continuación se añadieron a la mezcla de reacción enfriada en una porción 407 mg (4,02 mmol) de anhídrido succínico. La mezcla de reacción se agitó rápidamente a -5ºC durante 5 minutos y a continuación a la temperatura ambiente durante otros 90 minutos. A la mezcla de reacción se añadió éter dietílico anhidro, 200 mL, que dio como resultado la formación de un precipitado rojo. Este precipitado se aisló en una frita de vidrio de porosidad media, se lavó con 3 x 50 mL de éter dietílico y se secó a presión reducida obteniéndose la forma protegida en el extremo N con succinilo del conjugado oligopéptido 98-agente terapéutico Dnr (rendimiento del 80%, pureza del 81% por el método A de HPLC). La CL/EM dio un peso molecular de 1141 (peso molecular esperado 1142).
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Ejemplo 22
Síntesis de la sal sódica de la forma protegida en el extremo N con glutarilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox [GI-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox]
Se añadió piperidina (436 \muL, 4,413 mmol) a una solución de la forma Fmoc del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox (100 mg, 0,088 mmol) en DMF (4,5 mL). Después de agitar durante 5 minutos a la temperatura ambiente, la mezcla de reacción se enfrió hasta -5ºC y se añadió rápidamente anhídrido glutárico (624 mg, 5,472 mmol). Se retiró el baño frío tan pronto como cambió el color y la mezcla se agitó a la temperatura ambiente durante otros 10 minutos. Se separó la DMF por evaporación rotatoria y el residuo se disolvió en cloroformo (2,5 mL). Se añadió éter dietílico (14 mL) y el precipitado resultante se filtró. La torta de filtración se lavó con éter dietílico, se secó al aire y a continuación se volvió a poner en suspensión en agua (14 mL). La sal sódica se formó por adición gota a gota a la suspensión de NaOH 0,025 M (4 mL, 0,10 mmol) hasta la disolución completa del sólido. A continuación se liofilizó esta solución obteniéndose la sal sódica de la forma protegida en el extremo N con glutarilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox, con un rendimiento del 97% y con una pureza del 87% por el método D de HPLC.
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Ejemplo 23
"Método de la urea" para preparar el conjugado, es decir, el precursor para el acoplamiento por la ruta enzimática de la forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del oligopéptido 38-doxorubicina
Bajo atmósfera de nitrógeno anhidro se pusieron en suspensión/disolvieron 26,04 g (52,0 mmol) de la forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del oligopéptido 38 y 23,26 g (40,2 mmol) de hidrocloruro de doxorubicina en 800 mL de DMF saturada con urea, anhidra (-30% p/v) y 14,8 19,948 mL. 114,16 mmol DIEA. Esta mezcla se enfrió hasta 0-3ºC durante \sim 25 minutos. En este momento se añadieron 21,2 g (56,0 mmol) de HATU como una solución en \sim100 mL de DMF saturada con urea durante 10 minutos (el volumen de esta solución debe mantenerse al mínimo). La mezcla de reacción se agitó durante 10 minutos de -2 a 2ºC y verterse en 4000 mL de salmuera enfriada con hielo, que contenía 2% v/v de ácido acético durante aproximadamente cinco minutos con agitación enérgica. El producto se separó por filtración por un filtro de vidrio sinterizado de porosidad media, se lavó abundantemente con agua y se secó a presión reducida; rendimiento físico 43 g: 104,47%, pureza del 93,45% por el método B de
HPLC.
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Ejemplo 24
Síntesis de la forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox [metil-succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox]
En un matraz de fondo redondo (50 mL), se disolvieron la forma protegida en el extremo N con metil-hemisuccinilo del oligopéptido 38 (0,25 g, 0,5 mmol) y doxorubicina (0,29 g, 0,5 mmol) en DMF anhidra (20 mL). Después se agitó la mezcla durante 5 minutos y a la solución se añadió DIEA (0,17 mL, 1,0 mmol) seguido de HBTU (0,19 g, 0,5 mmol). La mezcla se agitó a la temperatura ambiente durante 4 h. Se separó la DMF por un evaporador rotatorio y el residuo se recogió en 4,0 mL de cloruro de metileno:metanol 1:1. A esta solución se añadieron lentamente y con agitación 40 ml de éter. Se formó un precipitado rojo que se recogió por filtración con succión. El sólido se lavó con éter (2 x 10 mL) y se secó en un desecador a vacío. Se obtuvieron 0,50 g de producto (98%) con una pureza
del 96%.
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Ejemplo 25
Hidrólisis de la forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox utilizando una enzima reticulada
La forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox (1,0 g, 0,975 mmol) y 100 mL de DMF se introdujeron en un matraz de 500 mL. La suspensión se agitó enérgicamente con un agitador magnético. Cuando se hubo disuelto completamente la forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox se añadieron 400 mL de agua desionizada y la solución resultante se agitó a 35ºC. Una suspensión de 1 g de la enzima inmovilizada CLEC-PC lavada (Altus Biologics) se lavó en tres partes alícuotas de agua desionizada y a continuación se volvió a poner en suspensión en 10 mL de DMF acuosa al 20% antes de su uso y la suspensión resultante se agitó a 35ºC con un control periódico por HPLC. Cuando se hubo consumido toda la forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox (\sim18 horas), la mezcla de reacción se filtró por una membrana filtrante de nailon de 0,45 \muM para separar la enzima CLEC-PC. La torta de CLEC-PC se lavó con 3 X 10 mL de metanol y los líquidos de lavado del metanol se reunieron con la mezcla de reacción filtrada. La mezcla de reacción filtrada más los líquidos de lavado de metanol se concentraron a continuación hasta obtener una goma roja en un evaporador rotatorio equipado con una bomba de alto vacío y un baño de agua a 30ºC. A continuación se puso en suspensión la goma roja en 50 mL de agua desionizada a la temperatura ambiente y se agitó rápidamente con un agitador mecánico. A esta suspensión se añadió durante 2 minutos una solución de 77,8 mg de bicarbonato de sodio (0,926 mmol, 0,95 eq.) en 100 mL de agua desionizada. La suspensión se agitó a la temperatura ambiente durante 20 minutos. La mezcla de reacción se filtró por una membrana filtrante de nailon de 0,45 \muM y se liofilizó. Se aislaron 0,936 g de la sal sódica de la forma protegida en el extremo N con succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox, rendimiento aproximadamente 100%, pureza del 84% por el método B de HPLC. Se registraron espectros de ^{1}H y ^{13}CRMN en espectrómetros de 600 y 150 MHz respectivamente y se realizó una EM por electropulverización, confirmando ambos la estructura deseada.
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Ejemplo 26
Hidrólisis de la forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox [metil-succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox] Uso de una enzima soluble
11,0 g (10,72 mmol) la forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del conjugado oligopéptido 38-agente terapéutico Dox se pusieron en suspensión en 800 mL de agua calidad HPLC y se homogeneizó durante 60 minutos con un homogeneizador Ultraturrax T8 obteniéndose una suspensión finamente dividida. Esta suspensión se agitó (500 rpm) a 35ºC y se ajustó a pH = 6,05 con NaHCO_{3} acuoso 76 mM. A continuación se añadió 1,0 g de lipasa de C. antarctica "B" (Altus Biologics) y la mezcla de reacción se agitó a 35ºC durante 48 horas. Durante el tiempo de reacción de 48 horas, el pH se mantuvo entre 5,3 y 6,2 por adición periódica de NaHCO_{3} 76 mM y la reacción se controló periódicamente por HPLC. Después de 48 horas, la reacción se completó en aproximadamente 98% confirmado por HPLC. A continuación se ajustó la mezcla de reacción a pH=7 con NaHCO_{3} acuoso 76 mM y se filtró a través de una almohadilla de Celite 521. La mezcla de reacción clarificada se acidificó a continuación hasta aproximadamente pH 3 con 5 mL de ácido acético glacial dando como resultado la formación de un precipitado rojo gomoso. El precipitado se aisló por filtración a través de Celite 521, lavado posterior de la almohadilla de Celite con metanol, filtración de la solución de metanol por un filtro de vidrio sinterizado de 10-20 \muM y evaporación rotatoria de la solución filtrada obteniéndose 7,31 g de producto rojo gomoso. Este producto se convirtió en la sal sódica por disolución en 70 mL de NaHCO_{3} 76 mM (0,95 eq.) y se liofilizó obteniéndose 7,30 g, rendimiento físico de la sal sódica de la forma protegida en el extremo N con succinilo del conjugado oligopéptido 38-agente terapéutico Dox 66,1%, pureza del 84,5% por HPLC.
El producto era idéntico al del ejemplo anterior.
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Ejemplo 27
Hidrólisis con lipasa de Candida antarctica "B" inmovilizada de la forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox
Se disolvieron 30,0 g de lipasa de Candida antarctica "B" (Altus Biologics) en 300 mL de agua y se dializaron frente a 3 x 4 L de NaHCO_{3} acuoso 50 mM (pH = 6,4). Después de diálisis, el volumen de la solución dializada era \sim300 mL. 360 mL de Sepharose 4 Fast Flow activada con NHS de Pharmacia se introdujeron en un embudo de vidrio sinterizado de porosidad gruesa y se lavaron con 5 x 450 mL de HCl acuoso 1 mM enfriado con hielo. A continuación se reunieron la Sepharose activada por NHS con la solución de enzima dializada. La suspensión resultante se agitó a la temperatura ambiente (aproximadamente 22ºC) durante 2,0 horas. A continuación se aisló el conjugado Sepharose/enzima sobre un filtro de vidrio sinterizado de porosidad gruesa y a continuación se agitó en 1000 mL de TRIS acuoso 100 mM (pH = 7,45) durante 15 minutos. Esta suspensión se filtró y se incubó con otros 1000 mL de tampón TRIS acuoso 100 mM (pH = 7,45) a 4ºC, durante una noche. La enzima inmovilizada por la mañana se separó por filtración y después de lavado con agua se introdujo en un matraz de fondo redondo, de tres bocas de 2000 mL. Se añadieron 43 g de la forma protegida en el extremo N con metil-succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox y los sólidos se pusieron en suspensión en 800 mL de agua desionizada. El matraz estaba provisto de un agitador elevado y un dispositivo estabilizador del pH para mantener el pH de la mezcla de reacción entre 5,9-6,2 por control con una bomba de jeringa. La bomba de jeringa se cargó de NaHCO_{3} 0,1 M. El progreso de la reacción se siguió por HPLC. Después de 6 días la enzima inmovilizada se separó por filtración y se liofilizó la fase líquida. A continuación se pusieron en suspensión los sólidos anhidros en \sim11 mL de THF anhidra y se separaron por filtración. 42,66 g, rendimiento físico 98,34%, pureza 93,43% (254 nm), 94,43% (480 nm) por el método B de HPLC.
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Ejemplo 28
Síntesis de la sal lactato del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox [lactato de \beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox]
Se añadió piperidina (26 mL, 264 mmol) a una solución de la forma Fmoc del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox, (6,00 g, 5,3 mmol) en DMF (265 mL). Después de agitar durante 5 minutos a la temperatura ambiente, la mezcla de reacción se introdujo en un baño de hielo con sal y se añadió inmediatamente tampón de lactato previamente enfriado (4ºC) al 10% a pH 3 (600 mL). La solución acuosa se extrajo con DCM (3 x 500 mL) y las sales en exceso se separaron por extracción en fase sólida. Se acondicionó gel de sílice en una columna C18 ODS-A (120 g) (500 mL de en metanol, 2 x 500 mL de agua) en una frita de vidrio y se cargó con la solución acuosa del producto en bruto, sal lactato. Después de lavar con agua (2 x 500 mL) y secar, la torta de filtración se disolvió en metanol. Se evaporó el metanol y el residuo se disolvió en agua. La solución resultante se liofilizó obteniéndose 3,54 g del conjugado sal lactato del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox (rendimiento 67%, pureza por el método B de HPLC: 89%).
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Ejemplo 29
Síntesis la forma protegida en el extremo N con succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox [succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox] a partir del sal lactato del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox [lactato de \beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox]
Se añadió DIEA (417 \muL, 2,40 mmol) a una solución de la sal lactato del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox (1,200 g, 1,20 mmol) en DMF (35 mL). Después de agitar durante 15 minutos a la temperatura ambiente, se añadió anhídrido succínico al 97% (2) (0,144 g, 1,44 mmol). La mezcla se agitó durante 2 horas y se separó la DMF por evaporación rotatoria. El residuo se disolvió en una mezcla de CHCl_{3}/CH_{3}OH 4/1 (6 mL) y se añadieron 200 mL de una mezcla de Et_{2}O/hexano 1/1. Después que la mezcla se agitó durante 30 minutos, el precipitado se filtró sobre papel cuantitativo (Whatman 42), se lavó (Et_{2}O/hexano: 1/1) y se secó al aire. La torta de filtración se puso en suspensión en agua (150 mL) y se añadió gota a gota NaOH 1M (\pm 1,2 eq., 1,5 mL) hasta su disolución completa (pH = 7,2). La solución se liofilizó obteniéndose 1,218 g de la forma protegida en el extremo N con succinilo del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox (rendimiento 97%; pureza por el método B de HPLC: 80,2%.
Ejemplo 30 Síntesis de la forma protegida en el extremo N con succinilo del conjugado oligopéptido 38- agente terapéutico Dox [succinil-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox] a partir del conjugado forma Fmoc del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox-[Fmoc-\beta-Ala-Leu-Ala-Leu-Dox]
Se añadió piperidina (2180 \muL, 22,06 mmol) a una solución de la forma Fmoc del conjugado del oligopéptido 38-agente terapéutico Dox (0,50 g, 0,44 mmol) en DMF (21,5 mL). Después de agitar durante 5 minutos a la temperatura ambiente, la mezcla de reacción se enfrió bruscamente hasta -5ºC y se añadió inmediatamente anhídrido succínico (2,25 g, 22,51 mmol). Se retiró el baño frío tan pronto como cambió el color y la mezcla se agitó a la temperatura ambiente durante 10 minutos. Se separó la DMF por evaporación rotatoria y el residuo se disolvió en cloroformo (12,5 mL). Se añadió rápidamente éter dietílico (360 mL). Inmediatamente apareció un precipitado. El precipitado se filtró por papel Whatman 42 y se lavó con Et_{2}O. El sólido se puso en suspensión en agua (120 mL; pH = 4,1) y se añadió gota a gota NaOH 0,025M (20 mL, 0,53 mmol) hasta su disolución completa (pH = 7,4). A continuación se liofilizó esta solución obteniéndose la forma protegida en el extremo N con succinilo del oligopéptido 38- gente terapéutico Dox, con un rendimiento del 89% y una pureza del 91% por el método D de HPLC.
La invención según las reivindicaciones se refiere por consiguiente a un compuesto profármaco, comprendiendo dicho compuesto:
(1)
un agente terapéutico capaz de entrar en una célula diana,
(2)
un oligopéptido de fórmula (AA)_{n}-AA^{4}-AA^{3}-AA^{2}-AA^{1}, en la que:
cada AA representa independientemente cualquier aminoácido codificado genéticamente,
n es un número entero de 0 a 12,
AA^{4} representa un aminoácido no codificado genéticamente,
AA^{3} representa cualquier aminoácido,
AA^{2} representa cualquier aminoácido, y
AA^{1} representa cualquier aminoácido,
(3)
un grupo estabilizante que impide la escisión de dicho oligopéptido por las enzimas presentes en la sangre completa, y
(4)
opcionalmente, un grupo enlazador no escindible por trouasa,
en el que el oligopéptido está unido directamente al grupo estabilizador en un primer sitio de unión del oligopéptido y AA^{1} del oligopéptido está unido directamente al agente terapéutico en un segundo sitio de unión del oligopéptido;
siendo el compuesto escindido selectivamente por una enzima asociada a la célula diana.
La invención según las reivindicaciones se refiere además a un método para disminuir la toxicidad de un agente terapéutico, en el que dicho agente terapéutico está destinado a la administración a un paciente, comprendiendo dicho método:
formar covalentemente un profármaco uniendo un oligopéptido escindible por trouasa a un grupo estabilizante en un primer sitio de unión del oligopéptido y uniendo directa o indirectamente el agente terapéutico a un segundo sitio de unión del oligopéptido, siendo el profármaco escindido selectivamente por trouasa, con lo que el profármaco proporciona al agente terapéutico una menor toxicidad cuando se administra al paciente.
La descripción incluye un método para formar un compuesto profármaco que comprende las siguientes etapas:
(1)
activar un oligopéptido protegido con Fmoc con un agente de activación en presencia de un agente terapéutico para formar un conjugado oligopéptido protegido con Fmoc-agente terapéutico,
(2)
desproteger el conjugado oligopéptido protegido con Fmoc-agente terapéutico poniéndolo en contacto con una base,
(3)
hacer reaccionar el conjugado oligopéptido-agente terapéutico con un grupo estabilizador,
(4)
neutralizar el conjugado grupo estabilizador-oligopéptido-agente terapéutico con una sal farmacéuticamente aceptable.
La descripción incluye también preparar un compuesto profármaco que comprende las siguientes etapas:
(1)
activar un grupo estabilizante protegido con un éster alquílico-oligopéptido con un agente de activación en presencia de un agente terapéutico formando un conjugado grupo estabilizante protegido con éster alquílico-oligopéptido-agente terapéutico,
(2)
desproteger el conjugado grupo estabilizante protegido con éster alquílico-oligopéptido-agente terapéutico, y
(3)
neutralizar el conjugado grupo estabilizante-oligopéptido-agente terapéutico con una sal farmacéuticamente aceptable.
Otro aspecto de la descripción es un método para preparar un compuesto profármaco que comprende las siguientes etapas:
(1)
activar un oligopéptido protegido con tritilo con un agente de activación en presencia de un agente terapéutico formando un conjugado oligopéptido protegido con tritilo-agente terapéutico,
(2)
desproteger el conjugado oligopéptido protegido con tritilo-agente terapéutico en condiciones ácidas durante 30-120 minutos de 0 a 25ºC,
(3)
hacer reaccionar el conjugado oligopéptido-agente terapéutico con un grupo estabilizante, y
(4)
neutralizar el grupo estabilizante-oligopéptido-agente terapéutico con una sal farmacéuticamente aceptable.
Las composiciones de la invención incluyen profármacos preparados por todos los métodos anteriores.
Estando ahora completamente descrita la invención, será evidente para los expertos en la técnica que pueden realizarse muchos cambios y modificaciones en ella sin separarse del alcance de las reivindicaciones que se acompañan.
<110> Coulter Pharmaceutical, Inc.
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<120> COMPUESTOS PROFÁRMACOS Y PROCEDIMIENTO PARA SU PREPARACIÓN
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<130> COUL-007/01WO
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<140> aún no disponible
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<141> 10-12-1999
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<150> 60/119,312
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<151> 08-02-1999
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<150> 60/111,793
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<151> 11-12-1998
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<160> 103
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<170> PatentIn Ver. 2.1
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<210> 1
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<211> 7
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<223> D-Alanina
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<222> (2)
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<223> 2-Tienilalanina
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<223> Beta-Alanina
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<400> 1
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<210> 2
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<211> 6
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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\hskip1cm
9
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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<400> 8
\hskip1cm
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<221> SITIO
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<222> (1)
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<221> SITIO
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<400> 10
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<210> 11
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<211> 4
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<212> PRT
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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\hskip1cm
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<221> SITIO
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\hskip1cm
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<210> 14
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<400> 14
\hskip1cm
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<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> 2-Tienilalanina
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<400> 15
\hskip1cm
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<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> 2-Naftilalanina
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<400> 16
\hskip1cm
18
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<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\hskip1cm
19
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 2-Tienilalanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\hskip1cm
20
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\hskip1cm
21
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\hskip1cm
22
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\hskip1cm
23
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\hskip1cm
24
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 3-Piridilalanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\hskip1cm
25
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
\hskip1cm
26
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 25
\hskip1cm
27
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
\hskip1cm
28
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 2-Tienilalanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 27
\hskip1cm
29
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 28
\hskip1cm
30
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Ácido aminoisobutírico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 29
\hskip1cm
31
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 30
\hskip1cm
32
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<223> Beta-Alanina
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<222> (1)
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\hskip1cm
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<221> SITIO
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<221> SITIO
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\hskip1cm
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Ácido tetrahidroisoquinolin-3-carboxílico
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<210> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Ácido tiazolidin-4-carboxílico
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<400> 40
\hskip1cm
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 2-Tienilalanina
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 41
\hskip1cm
43
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 2-Naftilalanina
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\hskip1cm
44
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Ácido 3-amino-4,4-difenilbutírico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 43
\hskip1cm
45
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> D-Leucina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\hskip1cm
46
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> D-Alanina
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\hskip1cm
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 46
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> D-Metionina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 46
\hskip1cm
48
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 47
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Ácido 3-amino-3-fenilpropiónico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 47
\hskip1cm
49
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Ácido 4-(aminometil)benzoico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 48
\hskip1cm
50
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 49
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (4)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 2-Naftilalanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 49
\hskip1cm
51
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 50
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 50
\hskip1cm
52
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 51
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 51
\hskip1cm
53
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 52
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 52
\hskip1cm
54
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 53
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 53
\hskip1cm
55
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 54
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 54
\hskip1cm
56
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<210> 55
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> 2-Tienilalanina
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\vskip0.400000\baselineskip
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<210> 56
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hskip1cm
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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\hskip1cm
59
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Ácido tetrahidroisoquinolin-3-carboxílico
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\hskip1cm
60
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<210> 59
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> 2-Naftilalanina
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<400> 59
\hskip1cm
61
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 60
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Ácido 3-amino-4,4-difenilbutírico
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<400> 60
\hskip1cm
62
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 61
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<400> 61
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\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Ácido 3-amino-3-fenilpropiónico
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<400> 62
\hskip1cm
64
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 63
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norleucina
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 63
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 64
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norleucina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 64
\hskip1cm
66
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 65
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norleucina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 65
\hskip1cm
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 66
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norleucina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 66
\hskip1cm
68
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 67
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norleucina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 67
\hskip1cm
69
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 68
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norleucina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 68
\hskip1cm
70
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<210> 69
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norleucina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 69
\hskip1cm
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 70
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norleucina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 70
\hskip1cm
72
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 71
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norleucina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 71
\hskip1cm
73
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 72
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norleucina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 72
\hskip1cm
74
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 73
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norleucina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 73
\hskip1cm
75
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 74
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Norvalina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 74
\hskip1cm
76
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 75
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 75
\hskip1cm
77
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> 2-Tienilalanina
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<400> 76
\hskip1cm
78
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<210> 77
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> 2-Tienilalanina
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 77
\hskip1cm
79
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 78
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> 2-Naftilalanina
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<400> 78
\hskip1cm
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<210> 79
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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<400> 79
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81
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<210> 80
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
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<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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<220>
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<222> (2)
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<223> Phe(Cl)
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<400> 80
\hskip1cm
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<210> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
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<223> Beta-Alanina
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Phe(NO2)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 81
\hskip1cm
83
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 82
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Phe(NO2)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 82
\hskip1cm
84
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 83
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fenilglicina
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 83
\hskip1cm
85
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 84
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 3-Piridilalanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 84
\hskip1cm
86
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 85
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
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<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Ácido tetrahidroisoquinolin-3-carboxílico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 85
\hskip1cm
87
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 86
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 2-Tienilalanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 86
\hskip1cm
88
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 87
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> 2-Tienilalanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 87
\hskip1cm
89
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 88
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Ácido tetrahidroisoquinolin-3-carboxílico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 88
\hskip1cm
90
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 89
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Tetrahidroisoquinolina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 89
\hskip1cm
91
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 90
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 90
\hskip1cm
92
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 91
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 91
\hskip1cm
93
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 92
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 92
\hskip1cm
94
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 93
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 93
\hskip1cm
95
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 94
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 94
\hskip1cm
96
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 95
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 95
\hskip1cm
97
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 96
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la Secuencia Artificial: Sintética
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITIO
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Beta-Alanina
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 96
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98
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<223> Beta-Alanina
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<223> 2-Tienilalanina
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<223> Beta-Alanina
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<400> 103
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105

Claims (17)

1. Un compuesto que comprende:
(1) un agente terapéutico capaz de entrar en una célula diana,
(2) un oligopéptido que tiene una fórmula (AA)_{n}-AA^{4}-AA^{3}-AA^{2}-AA^{1}, en donde:
cada AA independientemente representa cualquier aminoácido genéticamente modificado;
n es un número entero de 0 a 12;
AA^{4} representa un aminoácido no genéticamente codificado;
AA^{3} representa cualquier aminoácido;
AA^{2} representa cualquier aminoácido; y
AA^{1} representa cualquier aminoácido, en donde el oligopéptido se selecciona de: DAlaThi\betaAla\betaAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 1), Thi\betaAla\betaAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 2), \betaAla\betaAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 3), \betaAlaAlaAlaIle (SEQ ID NO: 4), \betaAlaAlaAlaLeu (SEQ ID NO: 5), \betaAlaPheTyrLeu (SEQ ID NO: 6), \betaAlaPheThrPhe (SEQ ID NO: 7), \betaAlaPheGlyIle (SEQ ID NO: 8), \betaAlaPheGlyLeu (SEQ ID NO: 9), \betaAlaPhePhePhe (SEQ ID NO: 10), \betaAlaPhePheIle (SEQ ID NO: 11), \betaAlaPhePheLeu (SEQ ID NO: 12), \betaAlaPheAlaIle (SEQ ID NO: 13), \betaAlaPheAlaLeu (SEQ ID NO: 14), ThiGlyAlaLeu (SEQ ID NO: 15), NalGlyAlaLeu (SEQ ID NO: 16), \betaAlaLeuTyrLeu (SEQ ID NO: 17), \betaAlaLeuThiLeu (SEQ ID NO: 18), \betaAlaLeuThrPhe (SEQ ID NO: 19), \betaAlaLeuThrIle (SEQ ID NO: 20), \betaAlaLeu
ThrLeu (SEQ ID NO: 21), \betaAlaLeuSerLeu (SEQ ID NO: 22), \betaAlaLeuPyrLeu (SEQ ID NO: 23), \betaAlaLeuLeuLeu (SEQ ID NO: 24), \betaAlaLeuGlyPhe (SEQ ID NO: 25), \betaAlaLeuGlyIle (SEQ ID NO: 26), ThiLeuGlyLeu (SEQ ID NO: 27), \betaAlaLeuGlyLeu (SEQ ID NO: 28), AibLeuGlyLeu (SEQ ID NO: 29), \betaAlaLeuPheIle (SEQ ID NO: 30), \betaAlaLeuPheLeu (SEQ ID NO: 31), \betaAlaLeuAibLeu (SEQ ID NO: 32), \betaAlaLeuAlaAla (SEQ ID NO: 33), \betaAlaLeuAla\betaAla (SEQ ID NO: 34), \betaAlaLeuAlaPhe (SEQ ID NO: 35), \betaAlaLeuAlaGly (SEQ ID NO: 36), \betaAlaLeu
AlaIle (SEQ ID NO: 37), \betaAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 38), TicLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 39), ThzLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 40), ThiLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 41), NaIleuAlaLeu (SEQ ID NO: 42), NAALeuAlaLeu (SEQ ID NO: 43), D-LeuLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 44), D-AlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 45), D-MetLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 46), APP
LeuAlaLeu (SEQ ID NO: 47), AmbLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 48), \betaAlaLeuAlaNal (SEQ ID NO: 49), \betaAlaLeuAlaSer (SEQ ID NO: 50), \betaAlaLeuAlaTyr (SEQ ID NO: 51), \betaAlaMetTyrPhe (SEQ ID NO: 52), \betaAlaMetTyrLeu (SEQ ID NO: 53), \betaAlaMetGlyIle (SEQ ID NO: 54), ThiMetGlyLeu (SEQ ID NO: 55), \betaAlaMetPhePhe (SEQ ID NO: 56), \betaAlaMetPheIle (SEQ ID NO: 57), TicMetAlaLeu (SEQ ID NO: 58), NaIMetAlaLeu (SEQ ID NO: 59), NAA
MetAlaLeu (SEQ ID NO: 60), \betaAlaMetAlaLeu (SEQ ID NO: 61), APPMetAlaLeu (SEQ ID NO: 62), \betaAlaNleTyrIle (SEQ ID NO: 63), \betaAlaNleTyrLeu (SEQ ID NO: 64), \betaAlaNleThrIle (SEQ ID NO: 65), \betaAlaNleThrLeu (SEQ ID NO: 66), \betaAlaNleGlyPhe (SEQ ID NO: 67), \betaAlaNleGlyIle (SEQ ID NO: 68), \betaAlaNleGlyLeu (SEQ ID NO: 69), \betaAlaNlePheIle (SEQ ID NO: 70), \betaAlaNleAlaIle (SEQ ID NO: 71), \betaAlaNleAlaLeu (SEQ ID NO: 72), \betaAlaNleAla
Phe (SEQ ID NO: 73), \betaAlaNvaAlaLeu (SEQ ID NO: 74), \betaAlaPheTyrIle (SEQ ID NO: 75), ThiProGlyLeu (SEQ ID NO: 76), ThiProAlaLeu (SEQ ID NO: 77), NalProAlaLeu (SEQ ID NO: 78), \betaAlaProAlaLeu (SEQ ID NO: 79), \betaAlaPhe(CI)AlaLeu (SEQ ID NO: 80), \betaAlaPhe(NO_{2})AlaIle (SEQ ID NO: 81), \betaAlaPhe(NO_{2})AlaLeu (SEQ ID NO: 82), \betaAlaPhgAlaLeu (SEQ ID NO: 83), \betaAlaPyrAlaLeu (SEQ ID NO: 84), TicThrGlyLeu (SEQ ID NO: 85), \betaAlaThiGlyIle (SEQ ID NO: 86), \betaAlaThiAlaLeu (SEQ ID NO: 87), \betaAlaTicAlaIle (SEQ ID NO: 88), \betaAlaTicAlaLeu (SEQ ID NO: 89), \betaAlaValAlaLeu (SEQ ID NO: 90), \betaAlaTrpAlaLeu (SEQ ID NO: 91), \betaAlaTyrTyrPhe (SEQ ID NO: 92), \betaAlaTyrTyrIle (SEQ ID NO: 93), \betaAlaTyrTyrLeu (SEQ ID NO: 94), \betaAlaTyrThrLeu (SEQ ID NO: 95), \betaAlaTyrPheLeu (SEQ ID NO: 96), \betaAlaTyrGlyIle (SEQ ID NO: 97), ThiTyrGlyLeu (SEQ ID NO: 98), \betaAlaTyrGlyLeu (SEQ ID NO: 99), \betaAlaTyrPheIle (SEQ ID NO: 100), \betaAlaTyrAlaIle (SEQ ID NO: 101), ThiTyrAlaLeu (SEQ ID NO: 102), y \betaAlaTyrAlaLeu (SEQ ID NO: 103).
(3) opcionalmente, un grupo enlazador, y
(4) un grupo estabilizante cargado negativamente que impide la escisión de dicho oligopéptido por las enzimas presentes en la sangre completa,
en donde el oligopéptido está unido directamente al grupo estabilizante en el extremo amino del oligopéptido y AA^{1} del oligopéptido está unido directamente al agente terapéutico o unido indirectamente a través del grupo enlazador al agente terapéutico en un segundo sitio de unión del oligopéptido, y en donde el compuesto se escinde selectivamente por una enzima asociada con la célula diana, en donde el grupo estabilizante se selecciona de: ácido succínico, ácido diglicólico, ácido maleico, ácido piroglutámico, y ácido glutárico.
2. El compuesto de la reivindicación 1, en donde n es un número entero de 0 a 8.
3. El compuesto de la reivindicación 1, en donde la célula diana es un tumor o una célula inflamatoria.
4. El compuesto de la reivindicación 1, en donde AA^{1} del oligopéptido se selecciona de fenilalanina, isoleucina, alanina, glicina, tirosina, 2-naftilalanina, serina y \beta-alanina.
5. El compuesto de la reivindicación 1, en donde AA^{2} del oligopéptido se selecciona de leucina, tirosina, alanina, glicina, serina, 3-piridilalanina, 2-tienilalanina, aminoisobutírico, treonina y fenilalanina.
6. El compuesto de la reivindicación 1, en donde AA^{3} del oligopéptido se selecciona de leucina, tirosina, fenilalanina, p-Cl-fenilalanina, p-Nitrofenilalanina, valina, norleucina, norvalina, fenilglicina, triptófano, ácido tetrahidroisoquinolin-3-carboxílico, 3-piridilalanina, alanina, glicina, tienilalanina, metionina, valina y prolina.
7. El compuesto de la reivindicación 1, en donde AA^{4} se selecciona de \beta-alanina, ácido tiazolidin-4-carboxílico, 2-tienilalanina, 2-naftilalanina, D-alanina, D-leucina, D-metionina, D-fenilalanina, ácido 3-amino-3-fenilpropiónico, ácido \gamma-aminobutírico, ácido 3-amino-4,4-difenilbutírico, ácido tetrahidroisoquinolin-3-carboxílico, ácido 4-aminometilbenzoico y ácido aminoisobutírico.
8. El compuesto de la reivindicación 1, en donde el grupo estabilizante reduce la interacción entre el compuesto y las células endoteliales que revisten los vasos sanguíneos cuando se administran al paciente.
9. El compuesto de la reivindicación 1, en donde el agente terapéutico se selecciona de agentes alquilantes, agentes anti-proliferantes, agentes de unión a tubulina, alcaloides de vinca, enediinas, podofilotoxinas o derivados de podofilotoxinas, la familia de fármacos de pteridina, taxanos, antraciclinas, dolastatinas, inhibidores de topoiosomerasa y cis-platinos.
10. El compuesto de la reivindicación 1, en donde el agente terapéutico se selecciona de doxorubicina, daunorubicina, vinblastina, vincristina, caliqueamicina, etopósido, fosfato de etopósido, CC-1065, duocarmicina, KW-2189, metotrexato, metopterina, aminopterina, diclorometotrexato, docetaxel, paclitaxel, epitiolono, combretastatina, fosfato de combretastatina A_{4}, dolastatina 10, dolastatina 11, dolastatina 15, topotecan, camptotecina, mitomicina C, porfiromicina, 5-fluoracilo, 6-mercaptopurina, fludarabina, tamoxifeno, arabinósido de citosina, arabinósido de adenosina, colchicina, Carboplatino, mitomicina C, bleomicina, melfalan o uno de sus derivados y análogos.
11. El compuesto de la reivindicación 1, en donde el agente terapéutico tiene un sitio activo intracelular.
12. El compuesto de la reivindicación 1, en donde AA^{1} del oligopéptido está unido directamente al agente terapéutico.
13. El compuesto de la reivindicación 1, en donde AA^{1} de la secuencia del oligopéptido está unido indirectamente al agente terapéutico en el segundo sitio de unión del oligopéptido mediante un grupo enlazador, seleccionándose dicho grupo enlazador de ácido aminocaproico, grupo hidrazida, un grupo éster, un grupo éter y un grupo sulfhidrilo.
14. Una composición farmacéutica que comprende:
(1)
un compuesto de acuerdo con las reivindicaciones precedentes
(2)
un vehículo farmacéuticamente aceptable.
15. Un método in vitro para disminuir la toxicidad de un agente terapéutico en donde el agente terapéutico está destinado a la administración a un paciente, comprendiendo el método:
formar covalentemente un profármaco uniendo un oligopéptido, que tiene una fórmula (AA)_{n}-AA^{4}-AA^{3}-AA^{2}-AA^{1}, en donde:
cada AA independientemente representa cualquier aminoácido genéticamente modificado,
n es un número entero de 0 a 12,
AA^{4} representa un aminoácido no genéticamente codificado,
y cada uno de AA^{1}, AA^{2}, y AA^{3} representa cualquier aminoácido,
en donde el oligopéptido se selecciona de: DAlaThi\betaAla\betaAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 1), Thi\betaAla\betaAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 2), \betaAla\betaAlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 3), \betaAlaAlaAlaIle (SEQ ID NO: 4), \betaAlaAlaAlaLeu (SEQ ID NO: 5), \betaAlaPheTyrLeu (SEQ ID NO: 6), \betaAlaPheThrPhe (SEQ ID NO: 7), \betaAlaPheGlyIle (SEQ ID NO: 8), \betaAlaPheGlyLeu (SEQ ID NO: 9), \betaAlaPhePhePhe (SEQ ID NO: 10), \betaAlaPhePheIle (SEQ ID NO: 11), \betaAlaPhePhe
Leu (SEQ ID NO: 12), \betaAlaPheAlaIle (SEQ ID NO: 13), \betaAlaPheAlaLeu (SEQ ID NO: 14), ThiGlyAlaLeu (SEQ ID NO: 15), NalGlyAlaLeu (SEQ ID NO: 16), \betaAlaLeuTyrLeu (SEQ ID NO: 17), \betaAlaLeuThiLeu (SEQ ID NO: 18), \betaAlaLeuThrPhe (SEQ ID NO: 19), \betaAlaLeuThrIle (SEQ ID NO: 20), \betaAlaLeuThrLeu (SEQ ID NO: 21), \betaAlaLeuSer
Leu (SEQ ID NO: 22), \betaAlaLeuPyrLeu (SEQ ID NO: 23), \betaAlaLeuLeuLeu (SEQ ID NO: 24), \betaAlaLeuGlyPhe (SEQ ID NO: 25), \betaAlaLeuGlyIle (SEQ ID NO: 26), ThiLeuGlyLeu (SEQ ID NO: 27), \betaAlaLeuGlyLeu (SEQ ID NO: 28), AibLeuGlyLeu (SEQ ID NO: 29), \betaAlaLeuPheIle (SEQ ID NO: 30), \betaAlaLeuPheLeu (SEQ ID NO: 31), \betaAlaLeuAibLeu (SEQ ID NO: 32), \betaAlaLeuAlaAla (SEQ ID NO: 33), \betaAlaLeuAla\betaAla (SEQ ID NO: 34), \betaAlaLeuAlaPhe (SEQ ID NO: 35), \betaAlaLeuAlaGly (SEQ ID NO: 36), \betaAlaLeuAlaIle (SEQ ID NO: 37), \betaAlaLeuAla
Leu (SEQ ID NO: 38), TicLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 39), ThzLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 40), ThiLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 41), NaIleuAlaLeu (SEQ ID NO: 42), NAALeuAlaLeu (SEQ ID NO: 43), D-LeuLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 44), D-AlaLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 45), D-MetLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 46), APPLeuAlaLeu (SEQ ID NO: 47), Amb
LeuAlaLeu (SEQ ID NO: 48), \betaAlaLeuAlaNal (SEQ ID NO: 49), \betaAlaLeuAlaSer (SEQ ID NO: 50), \betaAlaLeuAlaTyr (SEQ ID NO: 51), \betaAlaMetTyrPhe (SEQ ID NO: 52), \betaAlaMetTyrLeu (SEQ ID NO: 53), \betaAlaMetGlyIle (SEQ ID NO: 54), ThiMetGlyLeu (SEQ ID NO: 55), \betaAlaMetPhePhe (SEQ ID NO: 56), \betaAlaMetPheIle (SEQ ID NO: 57), Tic
MetAlaLeu (SEQ ID NO: 58), NaIMetAlaLeu (SEQ ID NO: 59), NAAMetAlaLeu (SEQ ID NO: 60), \betaAlaMetAlaLeu (SEQ ID NO: 61), APPMetAlaLeu (SEQ ID NO: 62), \betaAlaNleTyrIle (SEQ ID NO: 63), \betaAlaNleTyrLeu (SEQ ID NO: 64), \betaAlaNleThrIle (SEQ ID NO: 65), \betaAlaNleThrLeu (SEQ ID NO: 66), \betaAlaNleGlyPhe (SEQ ID NO: 67), \betaAlaNleGlyIle (SEQ ID NO: 68), \betaAlaNleGlyLeu (SEQ ID NO: 69), \betaAlaNlePheIle (SEQ ID NO: 70), \betaAlaNleAlaIle (SEQ ID NO: 71), \betaAlaNleAlaLeu (SEQ ID NO: 72), \betaAlaNleAlaPhe (SEQ ID NO: 73), \betaAlaNvaAlaLeu (SEQ ID NO: 74), \betaAlaPheTyrIle (SEQ ID NO: 75), ThiProGlyLeu (SEQ ID NO: 76), ThiProAlaLeu (SEQ ID NO: 77), NalProAlaLeu (SEQ ID NO: 78), \betaAlaProAlaLeu (SEQ ID NO: 79), \betaAlaPhe(CI)AlaLeu (SEQ ID NO: 80), \betaAlaPhe(NO_{2})AlaIle (SEQ ID NO: 81), \betaAlaPhe(NO_{2})AlaLeu (SEQ ID NO: 82), \betaAlaPhgAlaLeu (SEQ ID NO: 83), \betaAlaPyrAlaLeu (SEQ ID NO: 84), TicThrGlyLeu (SEQ ID NO: 85), \betaAlaThiGlyIle (SEQ ID NO: 86), \betaAlaThiAlaLeu (SEQ ID NO: 87), \betaAlaTicAlaIle (SEQ ID NO: 88), \betaAlaTicAlaLeu (SEQ ID NO: 89), \betaAlaValAlaLeu (SEQ ID NO: 90), \betaAlaTrpAlaLeu (SEQ ID NO: 91), \betaAlaTyrTyrPhe (SEQ ID NO: 92), \betaAlaTyrTyrIle (SEQ ID NO: 93), \betaAlaTyrTyrLeu (SEQ ID NO: 94), \betaAlaTyrThrLeu (SEQ ID NO: 95), \betaAlaTyrPheLeu (SEQ ID NO: 96), \betaAlaTyrGly
Ile (SEQ ID NO: 97), ThiTyrGlyLeu (SEQ ID NO: 98), \betaAlaTyrGlyLeu (SEQ ID NO: 99), \betaAlaTyrPheIle (SEQ ID NO: 100), \betaAlaTyrAlaIle (SEQ ID NO: 101), ThiTyrAlaLeu (SEQ ID NO: 102), y \betaAlaTyrAlaLeu (SEQ ID NO: 103),
a un grupo estabilizante cargado negativamente en un primer sitio de unión del oligopéptido y unir directamente o indirectamente el agente terapéutico en un segundo sitio de unión del oligopéptido,
en donde el grupo estabilizante se selecciona de: ácido succínico, ácido diglicólico, ácido maleico, ácido piroglutámico y ácido glutárico,
con lo cual el profármaco proporciona una toxicidad disminuida al agente terapéutico cuando se administra al paciente.
16. El método de la reivindicación 15, en donde el profármaco permite la administración al paciente de una dosis mayor del agente terapéutico con relación a la dosis del agente terapéutico sin unión al profármaco.
17. Un profármaco formado por el método de la reivindicación 15.
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