EP0980427B1 - Utilisation des proteines ulip dans le diagnostic et la therapie des cancers et des syndromes neurologiques paraneoplasiques - Google Patents

Utilisation des proteines ulip dans le diagnostic et la therapie des cancers et des syndromes neurologiques paraneoplasiques Download PDF

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EP0980427B1
EP0980427B1 EP98912541A EP98912541A EP0980427B1 EP 0980427 B1 EP0980427 B1 EP 0980427B1 EP 98912541 A EP98912541 A EP 98912541A EP 98912541 A EP98912541 A EP 98912541A EP 0980427 B1 EP0980427 B1 EP 0980427B1
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EP
European Patent Office
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ulip
pop
polypeptide
protein
antibodies
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EP98912541A
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German (de)
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EP0980427A1 (fr
Inventor
Michèle AGUERA
Marie-Françoise BELIN
Jérôme HONNORAT
Pappachan Kolattukudy
Than Tam Quach
Tamara Byk
André SOBEL
Dominique Aunis
Jean-Christophe Antoine
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Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
Original Assignee
Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
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    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/46—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
    • C07K14/47—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides

Definitions

  • the invention relates to the use of proteins known as ULIP / POP in the diagnosis and therapy of cancers and paraneoplastic neurological syndromes.
  • PNS Paraneoplastic neurological syndromes
  • Several clinical pictures have long been individualized (encephalomyelitis, Denny Brown's sensory neuropathy, cerebellar atrophy, limbic encephalitis opsoclonus ”) corresponding in fact to the elective or preferential involvement of certain groups of neurons.
  • the frequency of inflammatory cells in the vicinity of lesions has evoked for many years the possibility of an autoimmune or viral process.
  • anti-Yo antibodies are found in the serum and CSF of women with paraneoplastic cerebellar atrophy and gynecological cancer (ovary, breast or uterus) (Greenlee et al., 1983, Jaeckle et al., 1985).
  • Anti-Ri antibodies are found in the serum and CSF of patients (mainly women) with opso-myoclonus, cerebellar syndrome and breast cancer. These antibodies recognize two proteins of 50 and 80 kDa specific neurons of the central nervous system (Luque et al., 1991).
  • Anti-Hu antibodies are the most frequently encountered during SNPs. They are found in the serum and CSF of patients with Denny-Brown syndrome or encephalomyeloneuritis and small cell lung cancer (Graus et al., 1985; Dalmau et al., 1992). These autoantibodies recognize several proteins of 37 to 45 kDa specifically expressed by all the neurons of the nervous system.
  • the anti-CV2 autoantibodies present in the sera of patients with paraneoplastic neurological syndrome were defined by their ability to recognize, by indirect immunohistochemistry, a specifically expressed cytoplasmic antigen in the adult rat brain, by a sub-population of oligodendrocytes of the brainstem, marrow and cerebellum.
  • This antigen is located in the adult brain in a subpopulation of oligodendrocytes or in cells that retain differentiating abilities in the adult brain (olfactory bulb, dentate gyrus).
  • the recognized antigen would play a role in neuronal survival, via Neuron / Oligodendrocyte interactions, as suggested by the loss of neurons observed in the post-mortem brain of PNS patients.
  • the Applicant has characterized the target antigen of anti-CV2 autoantibodies which corresponds to a protein hereinafter designated "POP-66” for "paraneoplastic oligodendrocyte protein 66 kDa”.
  • POP-66 belongs to the family of proteins called ULIP (for Unc-33 like phosphoprotein), involved in the control of neuronal development and axonal transport (T. Byk et al. , 1996) and also studied in the form of CRMP proteins (Goshima et al., 1995, Wang et al., 1996), TOAD-64 (Minturn et al., 1995) and DRPs (Hamajima et al., 1996). Specifically, POP-66 has been identified as being in fact the human form of ULIP-4.
  • the Applicant has shown that the protein recognized by the anti-CV2 antibodies of SNP patients is POP-66 / ULIP-4 and has established the involvement of ULIP proteins in paraneoplastic neurological syndromes and associated cancers.
  • the proteins of the ULIP family could play a role in any other form of cancer, not associated with SNPs. More particularly, the ULIP proteins would be involved in particular in tissue cancers with an embryonic origin common to the central nervous system.
  • the subject of the present invention is therefore a purified polypeptide ULIP, derivative or polypeptide fragment of said purified polypeptide comprising an amino acid sequence SEQ ID No. 8.
  • the subject of the present invention is a purified polypeptide, derivative, or biologically active polypeptide fragment of said purified polypeptide, comprising the amino acid sequence SEQ ID No. 8, said polypeptide being designated by "POP-66 / ULIP- 4 ".
  • a fragment of the polypeptide of sequence SEQ ID No. 8 of interest is in particular the antigenic fragment PARASCPGKIS (amino acids No. 517 to No. 527).
  • the subject of the invention is also an isolated nucleic acid sequence SEQ ID No. 7 or a sequence derived from the sequence SEQ ID No. 7 because of the degeneracy of the genetic code, or because of mutation, deletion or deletion. insertion of at least one nucleotide, said derived sequences having a biological activity substantially identical to that of the peptide encoded by the sequence SEQ ID No. 7.
  • the different nucleotide sequences of the invention may be of artificial origin or not. They may be DNA or RNA sequences, obtained by screening sequence libraries using probes prepared on the basis of the sequence SEQ ID No. 8. Such libraries may be prepared by standard techniques of molecular biology, known to those skilled in the art.
  • nucleotide sequences according to the invention can also be prepared by chemical synthesis, or by mixed methods including the chemical or enzymatic modification of sequences obtained by screening the libraries.
  • nucleotide sequences allow the production of nucleotide probes, capable of hybridizing strongly and specifically with a nucleic acid sequence, a genomic DNA or a messenger RNA, encoding a peptide according to the invention or a biologically fragment asset of it.
  • the appropriate hybridization conditions correspond to the temperature and ionic strength conditions usually used by those skilled in the art (Sambrook et al., 1989), in preference to temperature conditions between (T m minus 5 ° C) and (T m minus 30 ° C) and more preferably at temperature conditions between (T m minus 5 ° C) and (T m minus 10 ° C) ) (high stringency), where Tm is the theoretical melting temperature, defined as the temperature at which 50% of the paired strands separate. Such probes are also part of the invention.
  • the probes of the invention comprise at least 10 nucleoides, and at the most comprise the entirety of a nucleotide sequence SEQ ID No. 7 or its complementary strand.
  • the cDNA probes of the invention are furthermore advantageously usable for the detection of chromosomal abnormalities.
  • nucleotide sequences according to the invention are also useful for producing and using sense and / or antisense oligonucleotide primers for specific sequencing or amplification reactions according to the PCR technique (polymerase chain reaction) or any other variant of it.
  • the nucleotide sequences according to the invention also have uses in the therapeutic field, for the production of antisense sequences, capable of hybridizing specifically with a nucleic acid sequence, including a messenger RNA, which can be used in gene therapy.
  • the invention thus relates to antisense sequences capable of inhibiting, at least partially, the production of a polypeptide according to the invention, as defined above.
  • They are particularly useful in the treatment of disorders of the central and peripheral nervous system and vision, particularly in the treatment of paraneoplastic neurological syndromes, as well as in the treatment of cancer, including tumors associated with paraneoplastic neurological syndromes.
  • nucleotide sequences according to the invention may also be used for the production of recombinant proteins ULIP according to the invention.
  • proteins can be produced from the nucleotide sequences defined above, according to production techniques of recombinant products known to those skilled in the art.
  • the nucleotide sequence used is placed under the control of signals allowing its expression in a cellular host.
  • An efficient system for producing a recombinant protein requires having a vector, for example of plasmid or viral origin, and a compatible host cell.
  • the cellular host may be selected from prokaryotic systems, such as bacteria, or eukaryotes, such as, for example, yeasts, insect cells, CHO (Chinese hamster ovary cells) or any other advantageously available system.
  • prokaryotic systems such as bacteria
  • eukaryotes such as, for example, yeasts, insect cells, CHO (Chinese hamster ovary cells) or any other advantageously available system.
  • a preferred cellular host for the expression of the proteins of the invention consists of the bacterium E. coli.
  • the vector must include a promoter, translation initiation and termination signals, as well as appropriate transcriptional regulatory regions. It must be able to be stably maintained in the cell and may possibly have particular signals specifying the secretion of the translated protein.
  • control signals are chosen according to the cellular host used.
  • the nucleotide sequences according to the invention may be inserted into autonomously replicating vectors within the chosen host, or integrative vectors of the chosen host.
  • Such vectors will be prepared according to the methods commonly used by those skilled in the art, and the resulting clones can be introduced into a suitable host by standard methods, such as, for example, electroporation.
  • the invention is further directed to host cells transfected with these prior vectors. These cells can be obtained by introducing into host cells a nucleotide sequence inserted into a vector as defined above, and then culturing said cells under conditions allowing the replication and / or expression of the transfected nucleotide sequence.
  • These cells can be used in a method for producing a recombinant polypeptide according to the invention or any biologically active fragment or derivative thereof.
  • the method for producing a polypeptide of the invention in recombinant form is itself included in the present invention, and is characterized in that the transfected cells are cultured under conditions allowing the expression of a recombinant polypeptide. according to the invention or any fragment or biologically active derivative thereof, and that said recombinant polypeptide is recovered.
  • the purification methods used are known to those skilled in the art.
  • the recombinant polypeptide can be purified from lysates and cell extracts, from the supernatant of the culture medium, by methods used separately or in combination, such as fractionation, chromatography methods, immunoaffinity techniques using specific mono or polyclonal antibodies, etc.
  • An alternative is to produce a recombinant polypeptide fused to a "carrier" protein (chimeric protein).
  • carrier chimeric protein
  • recombinant protein POP-66 / ULIP-4 makes it possible to manufacture a fast and reliable test (of the Elisa or Western Blot type) for detecting anti-CV2 antibodies.
  • the subject of the invention is also the monoclonal antibodies or their fragments, Fab or F (ab ') 2, or immunoconjugates, directed against a purified polypeptide ULIP comprising an amino acid sequence SEQ ID No. 8, derivative or fragment biologically active polypeptide of ULIP and their use for the purification or detection of a ULIP protein in a biological sample.
  • Polyclonal antibodies can be obtained from the serum of an animal immunized against the protein, produced for example by genetic recombination according to the method described above, according to the usual procedures.
  • the monoclonal antibodies can be obtained according to the conventional method of hybridoma culture described by Kohler and Milstein.
  • the antibodies may be humanized antibodies, Fab and F (ab ') 2 fragments. They can also be in the form of immunoconjugates or labeled antibodies.
  • antibodies raised against a protein of the ULIP family are useful for detecting abnormal expression of ULIP protein in patients with neurological syndromes, in whom no cancer has been diagnosed by conventional methods.
  • This abnormal expression of ULIP protein may be correlated with the existence of a cancer that had not been identified.
  • the antibodies directed against a ULIP protein, in particular against POP-66 / ULIP-4 are useful for the early diagnosis of a cancer.
  • a method for determining allelic variability, mutation, deletion, insertion, loss of heterozygosity or genetic abnormality of the POP-66 / ULIP-4 gene, located on chromosome 10 in the 26q region that may be involved in pathologies implements at least one nucleotide sequence SEQ ID No. 7.
  • a method comprising at least one step of PCR amplification of the nucleotide sequence of POP-66 / ULIP-4 likely to present a polymorphism, a mutation, a deletion or an insertion, using a pair of nucleotide sequence primers, a step in which one proceeds to the treatment of the amplified products with the aid of appropriate restriction enzymes and a step in which the detection or the determination of at least one of the products of the enzymatic reaction is carried out.
  • the mutations associated with said chromosome 10 may be investigated in relation to cancer, in particular peripheral cancer tumors and primary brain tumors of glial origin, for example.
  • the subject of the invention is also a pharmaceutical composition
  • a pharmaceutical composition comprising at least one purified POP-66 protein, polypeptide fragment or biologically active derivative thereof, a nucleotide sequence or fragment encoding said protein, an antisense sequence capable of specifically hybridizing with a nucleotide sequence coding for said protein, or an antibody directed against said protein, associated with a pharmaceutically acceptable carrier.
  • the invention preferably comprises pharmaceutical compositions comprising as active principle a purified POP-66 polypeptide, derivative or polypeptide fragment of POP-66, preferably in soluble form, associated with a pharmaceutically acceptable vehicle.
  • compositions provide a novel approach for treating disorders of the central and peripheral nervous system and vision, including paraneoplastic neurological syndromes. Moreover, they are useful for treating neurological disorders related to neuronal loss and / or under-expression of ULIP proteins in the nervous system.
  • POP-66 / ULIP-4 also reveals an interest in neurodegenerative pathologies such as multisystemic atrophies which are conditions similar to those of SNPs and for which an abnormality of an oligodendrocyte subpopulation has been detected (Papp et al. ., 1992).
  • compositions according to the invention are moreover useful in anticancer therapy.
  • Antibodies directed against one or more ULIP proteins can be associated with antineoplastic agents, thus allowing targeting of the drugs to the tumor cells.
  • They can also be associated with a hydrophilic chemical group chosen so as to pass or not the blood-brain barrier, depending on the type of tumor.
  • the ULIP proteins and in particular POP-66 as well as the nucleotide sequences coding for said proteins and antisense sequences or oligonucleotides, may be useful in the therapy of any type of cancer in which a gene encoding a ULIP protein is involved.
  • cancers include peripheral tumors, such as small cell lung cancer, thymoma, breast and ovarian cancer, as well as brain tumors, preferably primary brain tumors. glial origin.
  • POP-66 in non-proliferative cells of the normal brain, its absence in normal tissues such as lung or thymus for example, its differential re-expression during the tumorigenesis of these tissues and the modulation of its expression in a tumor line during the differentiation suggest in this respect that POP-66 could be a tumor suppressor gene.
  • compositions according to the invention may be administered systemically, preferably intravenously, intramuscularly, intradermally or orally.
  • dosages and optimal dosage forms can be determined according to the criteria generally taken into account in the establishment of a therapeutic treatment adapted to a patient such as the age or the body weight of the patient, the severity of general condition, tolerance to treatment and side effects, etc.
  • a purified protein of the ULIP family, polypeptide fragment or biologically active derivative thereof, a nucleotide sequence or fragment encoding said protein, an antisense sequence capable of hybridizing specifically with a nucleotide sequence coding for said protein, or an antibody directed against said pharmaceutically acceptable vehicle-associated protein, can be used for the manufacture of a medicament for treating neurodegenerative diseases and neoplasms.
  • a method of treating neurodegenerative diseases and neoplasms involves administering to a subject in need of such treatment a therapeutically effective amount of a purified protein of the ULIP family, polypeptide fragment or biologically active derivative thereof, a sequence or nucleotide sequence fragment coding for said protein, an antisense sequence capable of specifically hybridizing with a nucleotide sequence coding for said protein, or an antibody directed against said protein, associated with a pharmaceutically acceptable vehicle.
  • the amino acid sequence was completed on SEQ ID NO: 8 by C-terminal amino acids (# 554 to # 568). This missing C-terminal region in FIG. 12 is very well conserved between ULIP-4 rat and mouse as well as between the different ULIPs.
  • POP-66 The purification of POP-66 is performed according to the material and methods described in the article by Honnorat et al., 1996, from serum of patients with PNS.
  • Tissues stored at -70 ° C before use, were treated with a solution containing DTT (dithiothreitol) (Sigma) 0.2M Ampholine 3-10 (Pharmacia) 2%, Triton X-100 (Merck) 2% and placed at 2-4 ° C. Immediately prior to use, solid urea (Pharmacia) was added to obtain an 8M solution.
  • DTT dithiothreitol
  • Ampholine 3-10 Ampholine 3-10
  • Triton X-100 Merck
  • the POP-66 protein is soluble, at least in part, and precipitates entirely at a concentration of 40% ammonium sulfate.
  • the anti-CV2 antibodies recognize several bands of isoelectric points between 5.85 and 6.55. All of these bands correspond to the POP-66 protein recognized by the anti-CV2 antibodies. This spectrum suggests the possibility of transcriptional modifications (phosphorylations and / or glycosylations) of the protein.
  • the protein zone between 5.85 and 6.55, of p1 is used for a further electrophoretic migration in polyacrylamide gel denaturing medium previously equilibrated with an equilibration solution (0, 05 mol / l Tris / HCl, pH 6.8, 6M urea, 30% glycerol, 1% w / v SDS for 2 x 10 minutes) to which DTT (0.25% w / v) and blue are added bromophenol.
  • the template is prepared as a double-stranded cDNA (Promega kit) from rRNA poly (A + ) extracted from the brain of 10-day-old rats (Zivic-Miller, USA) using the isolation kit.
  • Fast Track mRNA Invitrogen).
  • the PCR amplification conditions are as follows: 35 cycles at 94 ° C, 1 minute for denaturation, 55 ° C, 1 minute for hybridization and 72 ° C, two minutes for extension.
  • PCR products are analyzed by electroeluted 1% agarose gel electrophoresis, cloned into a TA cloning vector (Invitrogen) and sequenced using the T7 and SP6 promoter primer sites.
  • TA cloning vector Invitrogen
  • the deduced amino acid sequence of the MFB-17 clone agrees with the sequences of the two original peptides of POP-66 determined by amino acid sequence analysis.
  • MFB-17 is a partial cDNA with a nucleotide sequence identical to that of a segment of TOAD-64, a rat neuronal protein (Minturn et al. al., 1995).
  • the amino acid sequence deduced from the TOAD-64 cDNA is consistent with the sequences of the seven peptides determined by partial sequence analysis of the protein recognized by the anti-CV2 antibodies after electrophoretic purification.
  • the molecular weight, isoelectric point, immunohistochemical profile and regulation of TOAD-64 are similar to those of POP-66 antigen.
  • the cDNA-ds matrix of rat brains was amplified with two sets of primers located at the 5 'and 3' ends of the coding regions. (meaning: GGCATATGTCTTATCAGGGGAAG; antisense GCGAATTCTTAGCCCAGGCTGATG).
  • the deduced amino acid sequence from the open reading frame indicates that this C-22 clone belongs to the ULIP gene family represented by several genes of the EST sequences.
  • the deduced amino acid sequence of C-22 has a 30% homology with the amino acid sequence of the Caenorhabditis elegans unc-33 protein .
  • ULIP-1 is represented by a mouse "unc-33 like" phosphoprotein which has a 76% homology with TOAD-64, Crmp-62, and Munc, a mouse sequence recently available on Genbank.
  • ULIP-2 is composed of TOAD-64, Crmp-62 and Munc which have between them an identity of 97% of amino acids.
  • the partial human EST sequences i.e. hcrmp-1, which have 75% identity with ULIP-1 or ULIP-2 were found. They belong to a third group called ULIP-3.
  • the last identified group termed ULIP-4 includes r-CRMP-3 in rats and ULIP-4 forms in mice and POP-66 / ULIP-4 in humans.
  • the C-22 nucleotide sequence has an identity of 97% with the partial sequence EST, hCrmp-1, and thus defines the third member of the ULIP-3 group.
  • the TOAD-64, Crmp-62 and C-22 genes each encode a protein of 572 amino acids in length, while the amino acid sequence deduced from ULIP-1 yields a protein of 570 amino acids.
  • RNA is extracted and separated by electrophoresis on 1% agarose gel and transferred to Nytran membrane (Duchemin et al., 1987).
  • the blots are hybridized with a 32- P-labeled C-22 coding sequence; 0.5 mM phosphate buffer and 5% SDS at 65 ° C for 16 hours.
  • the blots are washed successively three times with 2xSSC, 0.1% SDS at room temperature, then 1xSSC, 0.1% SDS at 65 ° C for 60 minutes, and exposed to X-rays.
  • the kinetics of the C-22 gene in rat brains during development shows that the messenger is detectable during the embryonic period at day E17.
  • the amount of C-22 transcripts increases until day 7 postnatal and then decreases rapidly from the second week after birth to a level virtually undetectable in adults.
  • C-22 mRNA could not be detected by Northern Blot analysis in several brain regions such as frontal cortex, midbrain and thalamus in adults and rats over two years old.
  • C-22 mRNA could not be detected in non-neuronal tissues, such as heart, lung, liver, kidney in one week old rats and adult rats.
  • the full length ULIP-2 and ULIP-3 cDNAs and mouse ULIP-1 and ULIP-4 cDNAs were directionally subcloned into the pET-21a (+) E. coli expression vector after introduction of a 5'Nde I site and a 3 'EcoRI site by PCR, and the four constructs were resequenced.
  • the target gene expression induced by IPTG was carried out according to the manufacturer's protocol (Novagen).
  • Rabbit antibodies (anti-Pep3) are directed against the peptide ITGPEGHVLSRPEEVE (amino acids 217-232 of the sequence SEQ ID No. 8), synthesized on a multiple peptide synthesis apparatus using F-moc (432A Peptide Synthesizer SYNERGY, Applied Biosystems). Purity was verified by sequence analysis by HPLC and mass spectrometry. 1 mg of the keyhole limpet hemocyanin-conjugated synthetic peptide in Freund's complete adjuvant was used to immunize rabbits with a booster dose of 0.5 mg bound peptide in complete adjuvant of Freund after 4 weeks. Anti-Pep3 antibodies recognized the four recombinant ULIP proteins expressed in E. coli.
  • Anti-peptide 4 antibodies directed against the LEDGTLHVTEGS peptide were produced according to the same protocol.
  • Antibodies against four of the sequenced peptides were produced. Two of the sera were particularly interesting.
  • Another antibody (Ac anti-pep4) recognizes in Western Blot a single band of 66 kDa likely to correspond to a single member of the family ( Figure 3). namely ULIP-2.
  • Immunocytochemistry can be performed by the indirect immunofluorescence technique. 12 ⁇ m thick sections are made by cryostat then mounted on a gelatin-coated slide, treated for 2 hours in PBS buffer and 1% bovine serum albumin (BSA) with 0.1% Triton X100 and incubated for 12 hours with serum of anti-CV2 patients in PBS-1% BSA at room temperature (1/100 dilution of serum). After several washes with PBS-1% BSA, the sections are incubated for 2 h with 1% diluted fluorescein conjugated anti-human rabbit anti-human serum (Dakopatts) in PBS-1% BSA. After washing in PBS the slides are examined under a microscope.
  • BSA bovine serum albumin
  • control sections are incubated with either fluorescein-conjugated anti-human IgG antiserum alone, or PBS-1% BSA alone, or patient serum alone, or control serum (patients not SNP) and fluorescein conjugated antibody at the same dilution.
  • the indirect immunoperoxidase labeling can be used. Frozen tissue sections fixed with paraformaldehyde are incubated with 0.3% H 2 O 2 (to destroy intrinsic peroxidase activity) and 10% normal rabbit serum (to avoid nonspecific binding of rabbit IgG) or 1% BSA. After incubation for 12 h with patient sera diluted to 111000 and washing, the sections are incubated for 2 h with biotinylated rabbit anti-human IgG antiserum diluted 1/1000 in PBS-1% BSA.
  • the bound human IgGs are visualized by incubation with an avidin-biotin-peroxidase complex (Vectastain ABC complex, Vector) and developed with 0.05% DAB (Sigma).
  • the control sections are obtained with sera of 15 patients without SNPs according to the same protocol.
  • the antipeptide-3 antibody recognizes antigen (s) present in several cut-off brain cell types of neonatal and adult rats ( Figure 4). Like the patient's anti-CV2 serum, the anti-peptide-4 antibodies do not reveal any cut-off antigen from newly born rat brain while they specifically mark a subpopulation of oligodendrocytes in the brain adult rat (Fig. 4).
  • FIG. 5 shows that the proliferative nerve cells of the progenitor zones of the nervous system evidenced by the accumulation of bromodeoxyuridine (BrdU) do not express POP-66 whereas the non-proliferative cells that correspond to the differentiating or migrating nerve cells express it.
  • BrdU bromodeoxyuridine
  • Figure 6 compares sections of human brains from healthy patients and patients with PNS.
  • SNP patients with circulating anti-CV2 antibodies the neurons of the gyrus dentatus and pyramidal neurons (central cell band) disappear, as well as an intense astrocytic reaction.
  • Partially purified ULIP-1 was obtained from brains of newborn mice by three purification steps. These brains were homogenized in 4 volumes of homogenization buffer (25 mM sodium phosphate, pH 7.8, 1 mM EGTA, 10 ⁇ g / ml leupeptin, 25 ⁇ g / ml aprotinin, and 10 ⁇ g / ml of The homogenates were centrifuged for 10 minutes at 400 x g The pellets were resuspended in 2 volumes of homogenization buffer, homogenized, and centrifuged again The supernatants from the two centrifugations were pooled, sonicated and centrifuged 1 hour at 100,000 x g The supernatant (S2) was loaded onto a DEAE-Sepharose CL-6B column (1.75 cm 2 x 26 cm) equilibrated with 100 ml buffer A (25 mM sodium phosphate, m.p.
  • homogenization buffer 25 mM sodium
  • Proteins were eluted in a decreasing linear gradient of 20 to 0% saturated ammonium sulfate in buffer B.
  • the fractions containing ULIP were collected, dialyzed twice against 20 volumes of buffer A.
  • the proteins were concentrated on a small (10 ml) column C1-6B of DEAE-Sepharose and eluted with 400 mM sodium chloride in buffer A.
  • the eluate was desalted on a Sephadex G-25 (NAP-10) column and concentrated in a final volume of 0.5 ml by evaporation.
  • the concentrated fraction was chromatographed in three successive stages, on two columns of serially mounted Fast Protein Liquid Chromotagraphy (FPLC) Superose 12, in buffer C (50 mM sodium phosphate, pH 7, 2. 150 mM sodium chloride) at a flow rate of 0.3 ml / minute.
  • the fractions (0.6 ml) were collected and the enriched fractions in ULIP were analyzed.
  • the presence of ULIP in the successive purification steps was tested by a one-dimensional Western blot using an anti-stathmin antibody capable of cross-reactivity.
  • the proteins were quantified according to the Bradford method.
  • One-dimensional electrophoresis was performed on 13% polyacrylamide gels according to the Laemmli method. Two-dimensional PAGE electrophoreses were performed as previously described. The isoelectric focusing gels contained 2% total ampholines, pH 6-8 and 3-10 in a ratio of 4: 1. The second dimension was conducted on 10% acrylamide gels. The proteins were either immunoblot or silver stained.
  • Proteins were transferred from the gels onto nitrocellulose in buffer containing 48 mM Tris, 39 mM glycine and 5% methanol.
  • the membrane was saturated with casein (2.5%) in the immunoblot solution (12 mM Tris-HCl pH 7.4, 160 mM NaCl, 0.1% Triton X-100) and tested with antiserum against rat stathmin peptide I (1: 10,000 dilution) or antiserum raised against recombinant ULIP protein (1: 20,000 dilution). ) diluted in an immunoblot solution containing 1% casein.
  • Bound antibodies were detected with either a '125
  • the fractions enriched in ULIP were separated on the two-dimensional polyacrylamide gels.
  • the gels are fixed for 30 minutes in 25% ethanol and 10% acetic acid and stained for 3 minutes in 0.1% amido black in 1% acetic acid and 40% methanol.
  • the gels were bleached in 1% acetic acid and the spots corresponding to the main form of ULIP were cut from these three gels, collected and digested with 2 mg / ml Lys C endoprotease.
  • the peptides eluted from the gel were then separated by HPLC on a DEAE-C18 column with a gradient of 0-55% acetonitrile in 0.1% trifluoroacetic acid. The peptides were then sequenced according to the automatic degradation of Edman.
  • ULIP-1 Neither the recombinant protein ULIP-1 nor the recombinant proteins TOAD-64 (ULIP-2) and C-22 (ULIP-3) are recognized by anti-CV2 sera.
  • the pattern of distribution of spots corresponding to POP-66 recognized by the anti-CV2 antibodies in two-dimensional electrophoresis does not correspond to the spots recognized by the anti-UL1P-1 antibodies.
  • POP-66 is a member of the ULIP family since the three POP-66 spots are recognized by the anti-pep3 Ab. POP-66 is therefore a member of the more basic pHi family.
  • Figure 7 shows that the three spots of the in vitro translation of ULIP-4 correspond to the spots recognized by CV2. These spots are not recognized in the ULIP-2 translation.
  • Serum CV2 therefore specifically recognizes ULIP-4.
  • In situ hybridization is carried out on chromosome preparations obtained from phytohemagglutinin stimulated human lymphocytes cultured for 72 hours. 5-bromodeoxyuridine was added during the last 7 hours of the culture (60 ⁇ g / ml of medium), to ensure an image of good quality post-hybridization chromosomal bands.
  • the clone containing a 1300 base pair insert encoding ULIP-4 in the Bluescript vector is tritium labeled by nick translation with a specific activity of 1x10 8 dpm. mcg-1.
  • the radiolabeled probe was hybridized to the metaphase stage at a final concentration of 200 ng per ml of hybridization solution.
  • the slides were exposed for 20 days at + 4 ° C. and then developed.
  • the chromosome smears were previously labeled with a Giemsa buffer solution and the metaphases were photographed.
  • the revelation of the bands was carried out by the Giemsa Fluorochrome-Photolysis (FPG) method and the metaphases were rephotographed before analysis.
  • FPG Giemsa Fluorochrome-Photolysis
  • the POP-66 / ULIP-4 gene is therefore located on chromosome 10 in the q25.2-q26 region.
  • the loci of neurodegenerative diseases and tumor suppressor genes involved in different types of cancer have been localized.
  • the locus of early-onset cerebellar disease (“infantil onset spinocerebellar ataxia") has been identified in the 10q24-26 region (Varilo et al., 1996, Nikati et al., 1995).
  • ULIP-1 is upregulated in retinoic acid-differentiated neuroblastoma cells and that ULIP-1 and ULIP-3 are up-regulated but ULIP-4 is downregulated in differentiated PC12 cells in the presence of NGF, suggesting that arrest of cell growth may be related to expression levels of ULIP proteins.
  • a "flag" sequence (EcoRl-ATGGACTACAAGGACGACGATGACAAGG-BamHI) (Kodak) was cloned into the EcoRI site of pSG5 followed by ULIP-1 (EMBEL X87817, base pairs: 309-2023), Ulip2 (Y10339, base pair: 23-1741), Ulip3 (Y09080, base pairs: 269-1991) or Ulip 4 (Y09079, base pairs: 102-1820), respectively.
  • HeLa cells were cultured in DMEM media (Gibco) supplemented with 10% fetal calf serum (v / v). Transfections were performed by calcium phosphate precipitation (Maniatis et al., 1978).
  • HeLa cells were mixed with 5 ⁇ g of plasmids pSG5flag-ULIP-1, 2, 3, 4 and 10 ⁇ g of pUC18. Twenty four hours after transfection, HeLa cells were fixed with 4% paraformadehyde and immunostained with different human sera (1/300 dilution), revealed by FITC-conjugated anti-human IgG antibodies (Biosys), or anti-Fiag antibodies (Kodak M2) (dilution 1/1000). ), revealed by anti-rabbit antibodies conjugated to Texas Red (Vector).
  • Double immunolabeling was performed on ULIP-transfected HeLa cells using anti-flag and anti-Pep3 antibodies. In cells transfected with any cDNA, 10 to 20% of them showed immunolabeling with the anti-flag antibodies revealed by Texas red-conjugated anti-mouse antibodies.
  • Double immunolabeling was also performed on ULIP-transfected HeLa cells using anti-flag and anti-CV2 antibodies.
  • G3PDH glycosylcholine dehydrogenase
  • Clontech a ubiquitous gene expressed in many tissues including the brain
  • the 5 ', 3' primers and the oligonucleotides of the G3PDH internal probes were synthesized and purified by Eurogentec.
  • the total mRNA (1 ⁇ g) was denatured (15 minutes at 65 ° C.) and transcribed into single-stranded cDNA (1.5 hours, 42 ° C.) in a final volume of 20 ⁇ l of buffer (50 mM Tris). HCl, 75 mM KCl, pH 8.3, Gibco BRL) containing 5 ng per ⁇ l oligo-dT 12-18 primer (Pharmacia Biotech), 40 Moloney murine leukemia virus reverse transcriptase units (Mu-LV).
  • RNA samples were diluted 1/10 in distilled water and the PCR reactions were carried out using 1 ⁇ l, 4 ⁇ l or 2 ⁇ l of the cDNA sample for the messenger RNA.
  • ULIP-2 and ULIP-3 in a buffer (50 mM KCl, 10 mM Tris-HCl, 0.1% Triton X100, 0.4% glycerol and 800 ⁇ M NaCl, Ph 9), wherein 40 ⁇ M of DTT, 3 mM of MgCl 2 , 0.2 mM of each dNTP, 0.4 ⁇ M of each selected primer and 2 units of AmpliTaq DNA polymerase (Promega) were added in a final volume of 50 ⁇ l.
  • a buffer 50 mM KCl, 10 mM Tris-HCl, 0.1% Triton X100, 0.4% glycerol and 800 ⁇ M NaCl, Ph 9
  • thermocycler Biomed-Hybaid
  • the products were separated by electrophoresis on 1% Seakem-agarose gel and the test strips of the expected size RT-PCR products as well as the Molecular weight marker scale (100 base pairs) (Promega) were visualized using ethidium bromide staining.
  • composition of the oligonucleotide probes used for the ULIP-2 PCR 5 'AGGAGGAGTGAAGACCATCG 5227) 3'
  • RT-PCR experiments show that TOAD-64 (ULIP-2) and C-22 (ULIP-3) are expressed in some small cell lung tumors (see Figure 8) and absent in others including those in patients who develop paraneoplastic neurological syndromes with better prognosis.
  • RNA is extracted from brain tumors preserved in liquid nitrogen, according to the classical RNAZOL TM technique (Bioprobe, France).
  • the reverse transcription was carried out using oligo (dt) 18 on 1 ⁇ g of total RNA and the PCR was carried out with 1/20 of the volume of the mixture for the reverse transcription (RT-mix).
  • the primers used for ULIP-4 are: 5'CATCTGGCTGTCGCTGCAC3 ', 5'GCCGCCCCTACCAGAGACC3', and for GAPDH: 5'GGAGATTCAGTGTGGTGG3 ', 5'GGCTCTCCAGAACATCATCC3'.
  • the cDNA was denatured at 95 ° C for five minutes. PCR amplification was performed for 30 cycles.
  • Ulip4 95 ° C, 45 sec; 62 ° C, 45 sec; 72 ° C, 45 sec.
  • GAPDH 95 ° C, 45 sec; 55 ° C, 45 sec; 72 ° C, 45 sec. The final extension was carried out at 72 ° C for 5 minutes.
  • the POP-66 / ULIP-4 protein as well as the proteins of the ULIP family could be expressed in peripheral tumors (small cell lung tumor, thymoma, breast and ovarian cancer). Their presence could therefore be correlated with a prognosis.
  • the location of the POP-66 / ULIP-4 gene on the distal portion of chromosome 10 confirms this in the case of brain tumors.
  • ULIP family members in tumors such as small cell lung cancer, while the corresponding ULIP gene is absent in healthy tissue, as well as the modulation of the expression of the members of the ULIP family.
  • Peptides specific for each member of the ULIP family were synthesized synthesized on a multiple peptide synthesizer using F-moc (432A Peptide Synthesizer SYNERGY, Applied Biosystems). Purity was verified by sequence analysis by HPLC and mass spectrometry.
  • the antibodies obtained specifically recognize each protein member of the ULIP family.
  • Drosophila were transformed by human ULIP-4 cDNA.
  • the ULIP-4 cDNA previously cloned in pbluescript SK-phagemid, was excised by double enzymatic digestion Kpn1 and Xba1. After agarose gel electrophoresis, the cDNA fragment was purified and then cloned into pUAST, derived from pCaSpeR3, digested with restriction enzymes Kpn1 and Xba1. Plasmid 10-C results from the directional cloning of ULIP-4 AONc in pUAST associated with the mini-white reporter gene. Plasmid 10-C was injected with a p-delta-2-3 helper plasmid encoding the transposase of the active element P in the germ line.
  • Transformed fruit flies are identified by their red eyes resulting from the expression of the mini-white gene. These lines transformed by ULIP-4 cDNA under the control of UASGAL4 regulatory sequences allow targeted expression of ULIP-4 cDNA.

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Description

  • L'invention concerne l'utilisation des protéines dénommées ULIP/POP dans le diagnostic et la thérapie des cancers et des syndromes neurologiques paranéoplasiques.
  • Les syndromes neurologiques paranéoplasiques (SNP) surviennent à l'occasion d'un cancer, souvent avant sa découverte et ne sont liés ni à la prolifération tumorale elle-même (envahissement direct métastases) ni à la thérapie. Leur fréquence est globalement estimée à environ 1 % des cancers. Plusieurs tableaux cliniques ont été depuis longtemps individualisés (encéphalomyélite, neuropathie sensitive de Denny Brown, atrophie cérébelleuse, encéphalite limbique opsoclonus. ...) correspondant en fait à l'atteinte soit élective soit préférentielle de certains groupes de neurones. La fréquence des cellules inflammatoires au voisinage des lésions avait fait évoquer depuis de nombreuses années la possibilité d'un processus auto-immun ou viral. La mise en évidence, plus récente, d'auto-anticorps dans le sérum et le liquide céphalo-rachidien (LCR) de patients souffrant de SNP, spécifiques du type de tumeur et du type de neurones qui dégénèrent, a relancé l'hypothèse d'une participation de l'auto-immunité dans la génèse de cette pathologie (Graus et al., 1985 ; Greenlee et al., 1983).
  • Outre la présence d'un titre élevé de ces anticorps dans le sang et le LCR des patients, il existe plusieurs arguments suggérant que les SNP relèvent de mécanismes auto-immuns. Ainsi, les antigènes reconnus dans le système nerveux central sont aussi présents dans les tumeurs des patients (Anderson et al., 1987). Au sein du tissu tumoral, on retrouve des anticorps spécifiquement dirigés contre ces antigènes ainsi que des lymphocytes B et T (Hetzel et al., 1990).
  • Ces données suggèrent que le processus auto-immun serait déclenché par l'expression d'antigènes tumoraux. Un processus d'immunité croisée provoquerait les lésions du système nerveux central. D'autres arguments indiquent en outre que les lésions cérébrales résultent de la réponse auto-immune. Ainsi, dans le cerveau des patients, le titre des anticorps spécifiques est supérieur à celui du sérum et du LCR (Dalmau et al., 1991). De plus, dans le cas des encéphalomyélites associées aux anticorps anti-Hu, il existe une réaction lymphocytaire intense, composée de cellules B et T, située à proximité de neurones en voie de destruction (Dalmau et al., 1991 ; Graus et al., 1990).
  • Plusieurs types d'auto-anticorps permettant des regroupements syndromiques précis en fonction de critères immunologiques, neurologiques et carcinologiques ont été décrits.
  • Ainsi, les anticorps anti-Yo sont retrouvés dans le sérum et le LCR de femmes présentant une atrophie cérébelleuse paranéoplasique et un cancer gynécologique (ovaire, sein ou utérus) (Greenlee et al., 1983 ; Jaeckle et al., 1985).
  • Ces anticorps reconnaissent deux protéines cytoplasmiques de 34 et 62 kDa spécifiques des cellules de Purkinje du cervelet.
  • Les anticorps anti-Ri sont retrouvés dans le sérum et le LCR de patients (principalement des femmes) présentant un opso-myoclonus, un syndrome cérébelleux et un cancer du sein. Ces anticorps reconnaissent deux protéines de 50 et 80 kDa spécifiques des neurones du système nerveux central (Luque et al., 1991).
  • Les anticorps anti-Hu sont les plus fréquemment rencontrés au cours des SNP. Ils sont retrouvés dans le sérum et le LCR de patients présentant un syndrome de Denny-Brown ou une encéphalomyélonévrite et un cancer du poumon à petites cellules (Graus et al., 1985 ; Dalmau et al., 1992). Ces auto-anticorps reconnaissent plusieurs protéines de 37 à 45 kDa exprimées spécifiquement par l'ensemble des neurones du système nerveux.
  • Récemment a été identifié chez des patients présentant un SNP un autre type d'auto-anticorps : les anticorps anti-CV2 (Antoine et al., 1993 ; Honnorat et al., 1996). Ces derniers sont atypiques, en ce sens que la cible antigénique reconnue à l'âge adulte est essentiellement non neuronale, alors que l'analyse du cerveau post-mortem de quatre patients permet d'objectiver une perte neuronale, une gliose et un processus inflammatoire caractéristique des SNP.
  • L'originalité de la découverte de ces auto-anticorps réside, d'une part, dans leur mise en évidence. Ces derniers avaient échappé à l'ensemble des investigations habituelles qui consistaient à révéler les antigènes reconnus par immunohistochimie sur du cerveau post-mortem. L'antigène reconnu est en effet soluble et disparaît du cerveau post-mortem dans la plupart des conditions de fixation. Seule une fixation du tissu post-mortem humain par immersion dans le paraformaldéhyde ou in situ par perfusion de paraformaldéhyde chez l'animal, a permis de révéler la présence de ces anticorps dans le LCR ou le sérum des patients atteints de SNP (Antoine et al., 1993 ; Honnorat et al., 1996).
  • Les auto-anticorps anti-CV2 présents dans les sérums de patients atteints de syndrome neurologique paranéoplasique (SNP) ont été définis par leur capacité à reconnaître, par immunohistochimie indirecte, un antigène cytoplasmique exprimé spécifiquement, dans le cerveau de rat adulte, par une sous-population d'oligodendrocytes du tronc cérébral, de la moelle et du cervelet.
  • L'originalité de ces auto-anticorps réside, d'autre part, dans leur intérêt diagnostique. Leur présence dans le sérum ou le LCR de patients a valeur diagnostique puisqu'elle permet de préciser l'origine paranéoplasique d'un syndrome neurologique. La découverte de ces anticorps lorsqu'elle précède celle du cancer, oriente la recherche de celui-ci et permet sa découverte. Tel a été le cas pour six patients sur 19 présentant des anticorps anti-CV2. Les troubles cliniques étaient différents suivant les patients, certains présentaient un tableau d'encéphalite limbique, d'autres une encéphalomyélonévrite et d'autres un syndrome de Lambert-Eaton. Néanmoins, dans plus de 60 % des cas, le syndrome cérébelleux était prédominant. La tumeur la plus fréquemment associée était le cancer du poumon à petites cellules (60 % des cas).
  • Des expériences sur des cerveaux de rats nouveaux-nés ont montré que ces anticorps anti-CV2 réagissaient avec une protéine de 66 kDa (Honnorat et al., 1996).
  • Cet antigène se situe dans le cerveau adulte dans une sous-population d'oligodendrocytes ou dans des cellules qui gardent des capacités de différenciation dans le cerveau adulte (bulbe olfactif, gyrus denté). L'antigène reconnu jouerait un rôle dans la survie neuronale, via des interactions Neurone/Oligodendrocyte, comme le suggère la perte des neurones observée dans le cerveau post-mortem de patients atteints de SNP.
  • Son expression très restreinte à l'âge adulte contraste avec une expression très forte et transitoire dans le système nerveux central et périphérique en développement, suggérant le rôle probable de cet antigène dans le développement du système nerveux.
  • La Demanderesse a caractérisé l'antigène cible des auto-anticorps anti-CV2 qui correspond à une protéine ci-après désignée par «POP-66» pour « paraneoplastic oligodendrocyte protein 66 kDa ».
  • De manière surprenante, il a été découvert que la protéine POP-66 appartient à la famille des protéines dites ULIP (pour Unc-33 like phosphoprotein), impliquée dans le contrôle du développement neuronal et le transport axonal, (T. Byk et al., 1996) et étudiée aussi sous la forme des protéines CRMP (Goshima et al., 1995, Wang et al., 1996), TOAD-64 (Minturn et al., 1995) et DRPs (Hamajima et al., 1996). Plus précisément, POP-66 a été identifiée comme étant en fait la forme humaine de ULIP-4.
  • L'ensemble des données décrit ci-après souligne la complexité de cette famille de protéines, l'existence d'un spectre d'expression très large des membres de cette famille dans le cerveau au cours de l'ontogénèse, mais très restreint chez l'adulte, ainsi que la spécificité des anticorps anti-CV2 pour un membre de cette famille protéique ULIP, qui est en fait POP-66.
  • Ainsi, la Demanderesse a montré que la protéine reconnue par les anticorps anti-CV2 de patients atteints de SNP est POP-66/ULIP-4 et a établi l'implication des protéines ULIP dans les syndromes neurologiques paranéoplasiques et les cancers associés. Outre leur rôle dans les cancers associés aux SNP, la Demanderesse a également découvert que les protéines de la famille ULIP pourraient jouer un rôle dans toute autre forme de cancer, non associée aux SNP. Plus particulièrement, les protéines ULIP seraient notamment impliquées dans les cancers de tissus ayant une origine embryonnaire commune avec le système nerveux central.
  • La présente invention a donc pour objet un polypeptide purifié ULIP, dérivé ou fragment polypeptidique dudit polypeptide purifié comprenant une séquence d'acides aminés SEQ ID n° 8.
  • De manière préférentielle, la présente invention a pour objet un polypeptide purifié, dérivé, ou fragment polypeptidique biologiquement actif dudit polypeptide purifié, comprenant la séquence d'acides aminés SEQ ID n° 8, ledit polypeptide étant désigné par « POP-66/ULIP-4 ».
  • Un fragment du polypeptide de séquence SEQ ID n° 8 d'intérêt est en particulier le fragment antigénique PARASCPGKIS (acides aminés n° 517 à n° 527).
  • Dans la description de l'invention, on utilise les définitions suivantes :
    • dérivé : tout polypeptide variant du polypeptide de séquence SEQ ID n° 8 ou toute autre molécule résultant d'une modification de nature génétique et/ou chimique de la séquence SEQ ID n° 8, c'est-à-dire obtenue par mutation, délétion, addition, substitution et/ou modification chimique d'un seul ou d'un nombre limité d'acides aminés, ainsi que toute séquence isoforme, c'est-à-dire une séquence identique à la séquence SEQ ID n° 8 à l'un de ses fragments ou séquences modifiées, contenant un ou plusieurs acides aminés sous la forme d'énantiomère D. lesdites séquences variantes modifiées ou isoformes ayant conservé au moins l'une des propriétés les rendant biologiquement actives.
    • Biologiquement actif : présentant des propriétés d'induction et/ou de contrôle du développement neuronal et/ou des propriétés antigéniques.
  • L'invention a également pour objet une séquence d'acides nucléiques isolée SEQ ID n°7 ou une séquence dérivée de la séquence SEQ ID n°7 du fait de la dégénérescence du code génétique, ou du fait de mutation, de délétion ou d'insertion d'au moins un nucléotide, lesdites séquences dérivées ayant une activité biologique pratiquement identique à celle du peptide codé par la séquence SEQ ID n°7.
  • Les différentes séquences nucléotidiques de l'invention peuvent être d'origine artificielle ou non. Il peut s'agir de séquences d'ADN ou d'ARN, obtenues par criblage de banques de séquences au moyen de sondes élaborées sur la base de la séquence SEQ ID n° 8. De telles banques peuvent être préparées par des techniques classiques de biologie moléculaire, connues de l'homme de l'art.
  • Les séquences nucléotidiques selon l'invention peuvent également être préparées par synthèse chimique, ou encore par des méthodes mixtes incluant la modification chimique ou enzymatique de séquences obtenues par criblage des banques.
  • Ces séquences nucléotidiques permettent la réalisation de sondes nucléotidiques, capables de s'hybrider fortement et spécifiquement avec une séquence d'acides nucléiques, d'un ADN génomique ou d'un ARN messager, codant pour un peptide selon l'invention ou un fragment biologiquement actif de celui-ci. Les conditions d'hybridation appropriées correspondent aux conditions de température et de force ionique usuellement utilisées par l'homme du métier (Sambrook et al., 1989), de préférence à des conditions de température comprises entre (Tm moins 5°C) et (Tm moins 30°C) et de préférence encore, à des conditions de température comprises entre (Tm moins 5°C) et (Tm moins 10°C) (forte stringence), Tm étant la température théorique de fusion, définie comme étant la température à laquelle 50 % des brins appariés se séparent. De telles sondes font également partie de l'invention. Elles peuvent être utilisées comme outil de diagnostic in vitro pour la détection, par des expériences d'hybridation, de transcrits spécifiques des polypeptides de l'invention dans des échantillons biologiques ou pour la mise en évidence de synthèses aberrantes ou d'anomalies génétiques résultant d'un polymorphisme, de mutations ou d'un mauvais épissage.
  • Les sondes de l'invention comportent au minimum 10 nucléoüdes, et au maximum comportent la totalité d'une séquence nucléotidique SEQ ID n° 7 ou de son brin complémentaire.
  • Les méthodes de diagnostic in vitro dans lesquelles ces sondes nucléotidiques sont mises en oeuvre pour la détection de synthèses aberrantes ou d'anomalies génétiques, telles que la perte d'hétérozygotie et le réarrangement génétique, au niveau des séquences nucléiques codant pour un polypeptide ULIP selon l'invention ou un fragment biologiquement actif, sont incluses dans la présente invention. Un tel type de méthode comprend :
    • la mise en contact d'une sonde nucléotidique de l'invention avec un échantillon biologique dans des conditions permettant la formation d'un complexe d'hybridation entre ladite sonde et la susdite séquence nucléotidique, éventuellement après une étape préalable d'amplification de la susdite séquence nucléotidique ;
    • la détection du complexe d'hybridation éventuellement formé :
    • éventuellement le séquençage de la séquence nucléotidique formant le complexe d'hybridation avec la sonde de l'invention.
  • Les sondes d'ADNc de l'invention sont en outre avantageusement utilisables pour la détection d'anomalies chromosomiques.
  • Les séquences nucléotidiques selon l'invention sont également utiles pour la réalisation et l'utilisation d'amorces oligonucléotidiques sens et/ou antisens pour des réactions de séquençage ou d'amplification spécifique selon la technique dite de PCR (réaction de polymérisation en chaîne) ou toute autre variante de celle-ci.
  • Les séquences nucléotidiques selon l'invention ont par ailleurs des utilisations dans le domaine thérapeutique, pour la réalisation de séquences antisens, capables de s'hybrider spécifiquement avec une séquence d'acide nucléique, y compris un ARN messager, utilisables en thérapie génique. L'invention a ainsi pour objet des séquences antisens capables d'inhiber, au moins partiellement, la production d'un polypeptide selon l'invention, tel que défini précédemment.
  • Elles sont plus particulièrement utiles dans le traitement des désordres du système nerveux central et périphérique et de la vision, notamment dans le traitement des syndromes neurologiques paranéoplasiques, ainsi que dans le traitement anticancéreux, notamment des tumeurs associées à des syndromes neurologiques paranéoplasiques.
  • Les séquences nucléotidiques selon l'invention peuvent par ailleurs être utilisées pour la production de protéines recombinantes ULIP selon l'invention.
  • Ces protéines peuvent être produites à partir des séquences nucléotidiques définies ci-dessus, selon des techniques de production de produits recombinants connues de l'homme du métier. Dans ce cas, la séquence nucléotidique utilisée est placée sous le contrôle de signaux permettant son expression dans un hôte cellulaire.
  • Un système efficace de production d'une protéine recombinante nécessite de disposer d'un vecteur, par exemple d'origine plasmidique ou virale, et d'une cellule hôte compatible.
  • L'hôte cellulaire peut être choisi parmi des systèmes procaryotes, comme les bactéries, ou eucaryotes, comme par exemple les levures, cellules d'insectes, CHO (cellules d'ovaires de hamster chinois) ou tout autre système avantageusement disponible. Un hôte cellulaire préféré pour l'expression des protéines de l'invention est constitué par la bactérie E. coli.
  • Le vecteur doit comporter un promoteur, des signaux d'initiation et de terminaison de la traduction, ainsi que les régions appropriées de régulation de la transcription. Il doit pouvoir être maintenu de façon stable dans la cellule et peut éventuellement posséder des signaux particuliers spécifiant la sécrétion de la protéine traduite.
  • Ces différents signaux de contrôle sont choisis en fonction de l'hôte cellulaire utilisé. A cet effet, les séquences nucléotidiques selon l'invention peuvent être insérées dans des vecteurs à réplication autonome au sein de l'hôte choisi, ou des vecteurs intégratifs de l'hôte choisi. De tels vecteurs seront préparés selon les méthodes couramment utilisées par l'homme du métier, et les clones en résultant peuvent être introduits dans un hôte approprié par des méthodes standard, telles que par exemple l'électroporation.
  • L'invention vise en outre les cellules hôtes transfectées par ces vecteurs précédents. Ces cellules peuvent être obtenues par l'introduction dans des cellules hôtes d'une séquence nucléotidique insérée dans un vecteur tel que défini ci-dessus, puis la mise en culture desdites cellules dans des conditions permettant la réplication et/ou l'expression de la séquence nucléotidique transfectée.
  • Ces cellules sont utilisables dans une méthode de production d'un polypeptide recombinant selon l'invention ou tout fragment ou dérivé biologiquement actif de celui-ci.
  • La méthode de production d'un polypeptide de l'invention sous forme recombinante est elle-même comprise dans la présente invention, et se caractérise en ce que l'on cultive les cellules transfectées dans des conditions permettant l'expression d'un polypeptide recombinant selon l'invention ou de tout fragment ou dérivé biologiquement actif de celui-ci, et que l'on récupère ledit polypeptide recombinant.
  • Les procédés de purification utilisés sont connus de l'homme du métier. Le polypeptide recombinant peut être purifié à partir de lysats et extraits cellulaires, du surnageant du milieu de culture, par des méthodes utilisées séparément ou en combinaison, telles que le fractionnement, les méthodes de chromatographie, les techniques d'immunoaffinité à l'aide d'anticorps mono ou polyclonaux spécifiques, etc.
  • Une variante consiste à produire un polypeptide recombinant fusionné à une protéine "porteuse" (protéine chimère). L'avantage de ce système est qu'il permet une stabilisation et une diminution de la protéolyse du produit recombinant, une augmentation de la solubilité au cours de la renaturation in vitro et/ou une simplification de la purification lorsque le partenaire de fusion possède une affinité pour un ligand spécifique.
  • L'exploitation des protéines ULIP, et en particulier POP-66/ULIP-4, ainsi que des anticorps dirigés contre ces protéines, est prometteuse dans divers domaines.
  • Ainsi, la détection de l'auto-anticorps anti-CV2 par immunofluorescence sur cerveau animal fixé est utilisée actuellement comme test diagnostic.
  • La production de protéine recombinante POP-66/ULIP-4 selon l'invention permet la fabrication d'un test (de type Elisa ou Western Blot) rapide et fiable, pour détecter les anticorps anti-CV2.
  • De tels tests existent déjà pour les anticorps anti-Hu, anti-Yo et anti-Ri. Le test pour détecter les anti-CV2 dans le sérum des patients pourrait être prescrit en cas de suspicion de syndrome neurologique paranéoplasique et inclurait par conséquent les anticorps anti-CV2 au même titre que les autres anticorps identifiés dans les SNP tels que précédemment cités.
  • L'invention vise donc également une méthode pour le diagnostic des syndromes neurologiques paranéoplasiques et/ou pour le diagnostic précoce de la formation de tumeurs d'origine cancéreuse, caractérisée en ce que l'on met en évidence dans un échantillon de sang prélevé chez un individu des auto-anticorps dirigés contre une protéine POP-66/ULIP-4 par
    • la mise en contact un échantillon de sang prélevé chez un individu avec un polypeptide purifié (POP-66), dérivé ou fragment polypeptidique biologiquement actif de POP-66/ULIP-4 éventuellement fixé sur un support dans des conditions permettant la formation de complexes immunologiques spécifiques entre ledit polypeptide et les auto-anticorps éventuellement présent dans l'échantillon de sérum, et
    • la détection des complexes immunologiques spécifiques éventuellement formés.
  • L'invention a également pour objet un kit pour le diagnostic des syndromes neurologiques paranéoplasiques et pour le diagnostic précoce de la formation des tumeurs à partir d'un prélèvement biologique comprenant :
    • au moins un polypeptide purifié POP-66/ULIP-4. dérivé ou fragment polypeptidique biologiquement actif de POP-66/ULIP-4, éventuellement fixé sur un support,
    • des moyens de révélation de la formation de complexes antigène/anticorps spécifiques entre un auto-anticorps anti-POP-66 et ledit polypeptide purifié POP-66, dérivé ou fragment polypeptidique et/ou des moyens de quantification de ces complexes.
  • L'invention a également pour objet les anticorps mono-clonaux ou leurs fragments, Fab ou F(ab')2, ou immunoconjugués, dirigés contre un polypeptide purifié ULIP comprenant une séquence d'acides aminés SEQ ID n° 8, dérivé ou fragment polypeptidique biologiquement actif de ULIP et leur utilisation, pour la purification ou la détection d'une protéine ULIP dans un échantillon biologique.
  • Des anticorps polyclonaux peuvent être obtenus à partir du sérum d'un animal immunisé contre la protéine, produite par exemple par recombinaison génétique suivant la méthode décrite ci-dessus, selon les modes opératoires usuels.
  • Les anticorps monoclonaux peuvent être obtenus selon la méthode classique de culture d'hybridomes décrite par Kôhler et Milstein.
  • Les anticorps peuvent être des anticorps humanisés, des fragments Fab et F(ab')2. Ils peuvent également se présenter sous forme d'immunoconjugués ou d'anticorps marqués.
  • Ainsi, les anticorps dirigés contre une protéine de la famille ULIP sont utiles pour détecter une expression anormale de protéine ULIP chez des patients présentant des syndromes neurologiques, chez qui aucun cancer n'a été diagnostiqué par les méthodes classiques. Cette expression anormale de protéine ULIP pourra être corrélée à l'existence d'un cancer qui n'avait pas été repéré. Ainsi, les anticorps dirigés contre une protéine ULIP, notamment contre POP-66/ULIP-4, sont utiles pour le diagnostic précoce d'un cancer.
  • Une méthode de détermination d'une variabilité allélique, d'une mutation, d'une délétion, d'une insertion, d'une perte d'hétérozygotie ou d'une anomalie génétique du gène POP-66/ULIP-4, situé sur le chromosome 10 dans la région 26q pouvant être impliquées dans des pathologies, met en oeuvre au moins une séquence nuclèotidique SEQ ID n° 7. Parmi les méthodes de détermination d'une variabilité allélique, d'une mutation, d'une délétion, d'une insertion, d'une perte d'hétérozygotie ou d'une anomalie génétique du gène POP-66/ULIP-4, on préfère une méthode comprenant au moins une étape d'amplification par PCR de la séquence nucléique de POP-66/ULIP-4 susceptible de présenter un polymorphisme, une mutation, une délétion ou une insertion, à l'aide de couple d'amorces de séquences nucléotidiques, une étape au cours de laquelle on procède au traitement des produits amplifiés à l'aide d'enzymes de restriction appropriées et une étape au cours de laquelle on procède à la détection ou au dosage d'au moins l'un des produits de la réaction enzymatique.
  • De manière avantageuse, on peut rechercher les mutations associées audit chromosome 10 en relation avec le cancer, notamment les tumeurs cancéreuses périphériques et les tumeurs cérébrales primitives d'origine gliale par exemple.
  • L'invention a également pour objet une composition pharmaceutique comprenant au moins une protéine purifiée POP-66, fragment polypeptidique ou dérivé biologiquement actif de celle-ci, une séquence ou fragment de séquence nucléotidique codant pour ladite protéine, une séquence anti-sens capable de s'hybrider spécifiquement avec une séquence nucléotidique codant pour ladite protéine, ou un anticorps dirigé contre ladite protéine, associée à un véhicule pharmaceutiquement acceptable.
  • L'invention comprend de manière préférentielle des compositions pharmaceutiques comprenant comme principe actif un polypeptide POP-66 purifié, dérivé ou fragment polypeptidique de POP-66, préférentiellement sous forme soluble, associé à un véhicule pharmaceutiquement acceptable.
  • De telles compositions offrent une nouvelle approche pour traiter les désordres du système nerveux central et périphérique et de la vision, et notamment les syndromes neurologiques paranéoplasiques. Par ailleurs, elles sont utiles pour traiter les désordres neurologiques liés à une perte neuronale et/ou une sous-expression des protéines ULIP dans le système nerveux.
  • Ainsi, POP-66/ULIP-4 révèle aussi un intérêt dans des pathologies neurodégénératives telles que les atrophies multisystémiques qui sont des affections similaires à celles des SNP et pour lesquelles une anomalie d'une sous-population oligodendrocytaire a été détectée (Papp et al., 1992).
  • Les compositions selon l'invention sont par ailleurs utiles en thérapie anticancéreuse.
  • Les anticorps dirigés contre une ou plusieurs protéines ULIP peuvent être associés à des agents antinéoplasiques, permettant ainsi le ciblage des médicaments vers les cellules tumorales.
  • Ils peuvent en outre être associés à un groupe chimique hydrophile choisi de manière à passer ou non la barrière hémato-encéphalique, selon le type de tumeur.
  • Les protéines ULIP et en particulier POP-66 ainsi que les séquences nucléotidiques codant pour lesdites protéines et les séquences ou oligonucléotides anti-sens, peuvent être utiles dans la thérapie de tout type de cancer dans lequel un gène codant pour une protéine ULIP est impliqué. Parmi des exemples de cancers, on peut citer les tumeurs périphériques, telles que le cancer du poumon à petites cellules, le thymome, le cancer du sein et de l'ovaire, ainsi que les tumeurs cérébrales, de préférence les tumeurs cérébrales primitives d'origine gliale. L'expression de POP-66 dans les cellules non prolifératives du cerveau normal, son absence dans des tissus normaux tels que poumon ou thymus par exemple, sa réexpression différentielle lors de la tumorigénèse de ces tissus et la modulation de son expression dans une lignée tumorale au cours de la différenciation suggèrent à cet égard que POP-66 pourrait être un gène suppresseur de tumeur.
  • Préférentiellement, les compositions pharmaceutiques selon l'invention peuvent être administrées par voie systémique, de préférence par voie intraveineuse, par voie intramusculaire, intradermique ou par voie orale.
  • Leurs modes d'administration, posologies et formes galéniques optimaux peuvent être déterminés selon les critères généralement pris en compte dans l'établissement d'un traitement thérapeutique adapté à un patient comme par exemple l'âge ou le poids corporel du patient, la gravité de son état général, la tolérance au traitement et les effets secondaires constatés, etc.
  • Une protéine purifiée de la famille ULIP, fragment polypeptidique ou dérivé biologiquement actif de celle-ci, une séquence ou fragment de séquence nucléotidique codant pour ladite protéine, une séquence anti-sens capable de s'hybrider spécifiquement avec une séquence nucléotidique codant pour ladite protéine, ou un anticorps dirigé contre ladite protéine associée à un véhicule pharmaceutiquement acceptable, peuvent être utilisées pour la fabrication d'un médicament destiné à traiter les maladies neurodégénératives et les néoplasmes.
  • Une méthode de traitement des maladies neurodégénératives et des néoplasmes met en oeuvre l'administration à un sujet nécessitant un tel traitement d'une quantité thérapeutiquement efficace d'une protéine purifiée de la famille ULIP, fragment polypeptidique ou dérivé biologiquement actif de celle-ci, une séquence ou fragment de séquence nucléotidique codant pour ladite protéine, une séquence anti-sens capable de s'hybrider spécifiquement avec une séquence nucléotidique codant pour ladite protéine, ou un anticorps dirigé contre ladite protéine, associée à un véhicule pharmaceutiquement acceptable.
  • Les exemples et les figures dont les légendes sont présentées ci-après sont donnés à titre illustratif.
    • LEGENDE DES FIGURES
    • La figure 1 représente un profil d'électrophorèse à deux dimensions obtenu à partir d'extraits protéiques de cerveaux de rats nouveaux-nés enrichis en POP-66.
      • A : coloration à l'argent de l'ensemble des protéines.
      • B : immunoempreinte avec le sérum anti-CV2 de patients.

      Les flèches indiquent les taches correspondant à POP-66, révélées avec les anticorps anti-CV2.
    • La figure 2 représente un profil d'électrophorèse à deux dimensions obtenue à partir d'extraits protéiques de cerveaux de rats nouveaux-nés.
      Immunoempreinte avec A- l'anticorps antipeptide 3 et B-l'anticorps anti-CV2.
    • La figure 3 représente une électrophorèse à une dimension obtenue à partir d'extraits protéiques de cerveaux de rats nouveaux-nés.
      Immunoempreinte avec a : sérum préimmun pour peptide 3
      Immunoempreinte avec b : sérum anti-peptide 3
      Immunoempreinte avec c : sérum anti-peptide 4
      Immunoempreinte avec d : sérum préimmun pour peptide 4.
    • La figure 4 représente un marquage immunohistochimique de coupes de cerveaux de rats adultes avec
      • A : sérum anti-CV2 de patient atteint de SNP
      • B : sérum de lapin avec des anticorps anti-peptide 3
      • C : sérum de lapin avec des anticorps anti-peptide 4.
    • La figure 5 représente un marquage histologique de coupes de cervelet de raton à 8 jours post-natal.
      • A : coloration au bleu de toluidine ; ge = couche granulaire externe : m = couche moléculaire (x400).
      • B : Immunomarquage après incorporation de BrdU (bromodéoxyuridine). Les cellules ayant incorporé le BrdU sont pratiquement toutes situées dans la zone la plus externe de la couche granulaire externe (ge). Quelques cellules positives sont situées dans la couche granulaire interne (x400).
      • C : Immunoperoxydase indirecte avec un sérum de patient contenant un anticorps anti-CV2 (x400). L'immunoréactivité est concentrée dans la partie interne de la couche granulaire externe (future couche moléculaire (m)). Quelques cellules sont immunoréactives dans la couche granulaire interne. Les cellules de Purkinje (p) sont négatives ainsi que les cellules de la partie externe de la couche granulaire externe (ge).
      • D : Immunoperoxydase indirecte avec un sérum de patient contenant un anticorps anti-CV2 (x1000). L'immunomarquage est surtout concentré dans la partie interne de la couche granulaire externe (future couche moléculaire (m)). On note une cellule réactive dans la couche granulaire interne (gi) (flêche).
    • La figure 6 représente un marquage immunohistochimique de coupes d'hippocampe humain post-mortem (coloration HPS).
      • A : cerveau de patient témoin,
      • B : cerveau de patient présentant une encéphalite limbique, et anticorps circulant anti-CV2. On peut noter la disparition des cellules granulaires.
    • La figure 7 représente un profil d'électrophorèse à deux dimensions avec la protéine ULIP-2 (A) contrôle et la protéine ULIP-4 (B).
      La figure 7C représente le modèle de profil de migration des protéines ULIP-1, 2, 3 et 4 comme référence.
      Les protéines sont révélées :
      • a) par autoradiographie pour localiser les protéines traduites in vitro (traduction) ;
      • b) par immunoempreinte avec le sérum anti-CV2.
    • La figure 8 représente un profil de migration de l'ARNm de C-22/ULIP-3 (8A) et TOAD-64/ULIP-2 (8B) amplifié par RT-PCR exprimé dans différents types cellulaires :
      • pistes 1-3 : tumeur à petites cellules du poumon
      • piste 2 : tumeur à petites cellules du poumon avec du sérum anti-CV2
      • piste 4 : cDNA contrôle.
      • piste 5 : médulloblastome traité par infection HTLV1
      • pistes 6-7 : médulloblastome
      • piste 8 : lignée C6 de cellules gliales chez la souris
      • piste 9 : contrôle
      • piste 10 : néant
      • piste 11 : échelle kb.

      Les flèches noires correspondent à POP-66, les flèches blanches correspondent au standard de poids moléculaire.
    • La figure 9 représente la séquence nucléotidique d'ULlP-2 chez la souris (SEQ ID N° 1), ainsi que la séquence en acides aminés déduite (SEQ ID N° 2).
    • La figure 10 représente la séquence nucléotidique d'ULIP-3 chez la souris (SEQ 10 N° 3), ainsi que la séquence en acides aminés déduite (SEQ ID N° 4).
    • La figure 11 représente la séquence nucléotidique d'ULIP-4 chez la souris (SEQ ID N° 5), ainsi que la séquence en acides aminés déduite (SEQ ID N° 6).
    • La figure 12 représente la séquence nucléotidique d'ULIP-4 chez l'homme (SEQ 10 N° 7), ainsi que la séquence en acides aminés déduite (SEQ ID N° 8).
  • Un codon stop erroné dans la séquence ULIP-4 homme (astérisque) provient d'une faute de la transcriptase inverse dans la production de la banque. En comparant avec ULIP-4 de rat et de souris, il est presque certain que la séquence TAG codant pour un stop soit en fait un codon AAG, codant pour une lysine comme chez le rat et la souris. De plus, la région autour de cet acide aminé est entièrement conservée dans les trois espèces.
  • La séquence d'acides aminés a été complétée sur la SEQ ID n° 8 par 15 acides aminés en C-terminal (n° 554 à n° 568). Cette région C-terminale manquante sur la figure 12 est très bien conservée entre ULIP-4 rat et souris ainsi qu'entre les différentes ULIP.
    • EXEMPLE 1 : Purification de POP-66 et séquençage
  • La purification de POP-66 est réalisée selon le matériel et les méthodes décrits dans l'article de Honnorat et al., 1996, à partir de sérum de patients atteints de SNP.
  • Pour identifier la protéine POP-66, on a choisi une stratégie de purification qui permette d'obtenir un séquençage partiel. Le criblage d'une banque d'expression d'ADNc de cerveau ou la purification de la protéine par immunoaffinité étaient exclus en raison des quantités limitées de sérums liées au décès des patients. Une méthode de purification biochimique a pu être développée à partir de cerveaux de rats nouveaux-nés grâce aux sérums humains anti-CV2 qui ont permis de suivre chaque étape de purification.
  • Les tissus, conservés à -70° C avant utilisation, ont été traités par une solution contenant DTT (dithiothreitol) (Sigma) 0,2 M. Ampholine 3-10 (Pharmacia) 2 %, Triton X-100 (Merck) 2 % et placés à 2-4° C. Immédiatement avant l'utilisation, de l'urée solide (Pharmacia) a été ajoutée pour obtenir une solution 8M.
  • La protéine POP-66 est soluble, au moins en partie, et précipite entièrement à une concentration de 40 % de sulfate d'ammonium.
  • Une centrifugation à 100 000 (fois) g et une précipitation au sulfate d'ammonium (éliminant les protéines précipitant en-dessous de 20 % et au-dessus de 40 % de sulfate d'ammonium) permettent d'obtenir des extraits protéiques enrichis en POP-66. Les protéines de cet extrait sont alors séparées, après dialyse, par isofocalisation sur gel d'agarose (Peltre et al., 1982).
  • Après transfert sur membrane, les anticorps anti-CV2 reconnaissent plusieurs bandes de points isoélectriques compris entre 5,85 et 6,55. L'ensemble de ces bandes correspond à la protéine POP-66 reconnue par les anticorps anti-CV2. Ce spectre suggère la possibilité de modifications transcriptionnelles (phosphorylations et/ou glycosylations) de la protéine.
  • A partir du gel d'agarose, la zone des protéines comprise entre 5,85 et 6,55, de pl, est utilisée pour une nouvelle migration électrophorétique en milieu dénaturant sur gel de polyacrylamide préalablement équilibré avec une solution d'équilibration (0,05 mol/l Tris/HCl, pH 6,8, urée 6M, glycérol 30 %, SDS 1 % poids/volume pendant 2 x 10 minutes) à laquelle on ajoute du DTT (0,25 % poids /volume) et du bleu de bromophénol.
  • Deux modes de détection sont utilisés :
    • la coloration à l'argent. Immédiatement après la fin de la migration, le gel est immergé dans une solution fixatrice (40 % d'éthanol, 10 % d'acide acétique) pendant 30 minutes ; il est ensuite placé dans une solution d'incubation (30 % d'éthanol, 7 % poids/volume d'acétate de sodium, 0,1 % de glutaraldéhyde, 0,2 % poids/volume de thiosulfate de sodium) pendant 30 minutes ou une nuit. Après lavage, le gel est placé dans une solution d'argent (0,1 % poids/volume de nitrate d'argent + formaldéhyde) et développé (2,5 % poids/volume de carbonate de sodium + formaldéhyde). La réaction est arrêtée avec l'EDTA-Na2 (1,5 % poids/volume). Les gels sont conservés dans une solution de glycérol.
    • transfert sur membrane de PVDF (Immobilon-P®, Millipore). Les protéines séparées sont transférées sur une membrane de PVDF en utilisant un tampon CAPS (Sigma) 100 mM pH 11. Les transferts sont incubés pendant une heure dans du tampon TBS (Tris buffer saline) avec 5 % de caséine (lait) et 18 heures dans du tampon TBS (+ 1 % de caséine) contenant de l'anticorps (sérum anti-CV2 1/500). Après lavage avec TBS-caséine (15 minutes), la révélation est effectuée en incubant les transferts pendant 1 heure et demie avec les anticorps anti-IgG biotinylés (1/1000) et pendant 1 heure et demie avec le complexe streptavidine-peroxydase (1/2000). Les transferts sont ensuite révélés avec du DAB (diaminobenzidine 0,06 % poids /volume dans Tris 0,05 M) et avec H2O2 (0,02 µg/ml).
  • Une seule bande correspondant à une protéine de 66 kDa est visible. Celle-ci est spécifiquement marquée par les anticorps anti-CV2 (figure 1). On a effectué alors un séquençage N-terminal de cette protéine, après digestion trypsique.
  • Sept peptides, présentant les séquences suivantes, ont été obtenus :
    • 1 - X-Met-Tyr-Asp-Gly-Pro
    • 2 - X-Phe-Asn-Leu-Tyr-Pro-Arg
    • 3 - X-Val-Leu-Glu-Asp-Gly-Thr-Leu-His-Val-Thr-Glu-Gly
    • 4- X-Ile-Gly-X-X-Ala-Gln-Val-(His ?)-Ala-Glu-Asn-Gly-X-Ile-Ile-Ala-Glu-Glu-Gln
    • 5 - X-X-Glu-Asn-Gln-Phe-Val-Ala-Val-Thr
    • 6 - X-Val-Asn-Asp-(Asp ?)-Gln-Ser-Phe-Tyr-Ala-Asp-Ile-Tyr-Met-Glu-(Asp ?)-(Gly ?)-Leu-Ile
    • 7 - X-X-X-Phe-Val-Thr-X-Pro-X-Leu-X-Pro
    • X : correspond à un acide aminé non déterminé,
    • (?) : correspond à un acide aminé probable mais non certain.
  • D'après l'analyse des banques de données disponibles en 1994, aucune protéine connue ne correspondait à ces séquences.
    • EXEMPLE 2 : Clonage de l'ADNc de POP-66 ou des protéines apparentées
  • Le clonage de l'ADNc de la protéine POP-66 ou des protéines apparentées a été entrepris en utilisant des sondes oligonucléotidiques dégénérées obtenues à partir de fragments de deux peptides :
    • Ile-Ile-Ala-Glu-Glu-Gln
    • Tyr-Ala-Asp-IIe-Tyr-Met-Glu-(Asp ?)
  • Quatre jeux d'amorces oligonucléotidiques dégénérées (sens/anti-sens) sont donc déterminés
    (AT(C/T)ATTGC(T/A)GA(A/G)CA;TG(C/T)TC(T/C)AC(T/A)GCAT(A/G)AT; TATGC(A/T)GA(CIT)AT(CIT)ATGGA ;TCCAT(G/A)TA(G/A)CT(T/A)GCAT A) et utilisés pour une amplification PCR.
  • La matrice est préparée sous forme d'ADNc double-brin (Promega kit) à partir d'ARNpoly(A+) extrait du cerveau de rats âgés de 10 jours (Zivic-Miller, USA) en utilisant le kit d'isolement de l'ARNm Fast Track (Invitrogen).
  • Les conditions d'amplification par PCR sont les suivantes : 35 cycles à 94°C, 1 minute pour la dénaturation, 55°C, 1 minute pour l'hybridation et 72°C, deux minutes pour l'extension.
  • Les produits de PCR sont analysés en électrophorèse sur gel d'agarose à 1 %, électroélués, clonés dans un vecteur de clonage TA (Invitrogen) et séquencés en utilisant les sites des amorces des promoteurs T7 et SP6.
  • La séquence d'acides aminés déduite du clone MFB-17 concorde avec les séquences des deux peptides originaux de POP-66 déterminés par l'analyse de la séquence d'acides aminés.
  • Une analyse comparée des séquences d'acides nucléiques utilisant les bases de données Genbank et EMBL révèle que MFB-17 est un ADNc partiel avec une séquence nucléotidique identique à celle d'un segment de TOAD-64, une protéine neuronale de rat (Minturn et al., 1995).
  • La séquence d'acides aminés déduite à l'ADNc de TOAD-64 concorde avec les séquences des sept peptides déterminés par l'analyse des séquence partielles de la protéine reconnue par les anticorps anti-CV2 après purification par électrophorèse.
  • Le poids moléculaire, le point isoélectrique, le profil immunohistochimique et la régulation de TOAD-64 sont similaires à ceux de l'antigène POP-66.
  • Le clone MFB-17 ne présentant pas la région codante complète, il a été nécessaire de produire une protéine recombinante intacte pour poursuivre les recherches concernant la protéine CV2.
  • Pour obtenir une protéine complète TOAD-64, on a amplifié la matrice ADNc-ds de cerveaux de rats avec deux jeux d'amorces situées aux extrémités 5' et 3' des régions codantes
    (sens : GGCATATGTCTTATCAGGGGAAG ;
    anti-sens GCGAATTCTTAGCCCAGGCTGATG).
  • Cette approche a permis de produire deux clones différents, l'un correspondant à la séquence TOAD-64 et l'autre à un clone désigné par C-22.
    • EXEMPLE 3 : Comparaison de la séquence d'acides aminés déduite de C-22 avec les protéines ULIP
  • La séquence d'acides aminés déduite à partir du cadre de lecture ouverte, indique que ce clone C-22 appartient à la super-famille de gènes ULIP représentée par plusieurs gènes des séquences EST.
  • La séquence d'acides aminés déduite de C-22 présente une homologie de 30 % avec la séquence d'acides aminés de la protéine unc-33 de Caenorhabditis elegans.
  • Récemment, quatre gènes différents homologues à la protéine unc-33 ont été décrits chez les mammifères et le poulet.
  • Une analyse des séquences par les bases de données Genbank et banques de protéines a permis de proposer une classification des protéines unc-33 like (ULIP) en quatre différents sous-groupes (Byk et al. 1996).
  • Pourtant, comme les fonctions réelles de ces protéines ne sont pas clairement connues, la classification proposée est basée simplement sur le pourcentage d'identité d'acides aminés. ULIP-1 est représentée par une phospho-protéine « unc-33 like » de souris qui présente une homologie de 76 % avec TOAD-64, Crmp-62, et Munc, une séquence de souris récemment disponible sur Genbank.
  • ULlP-2 est composée de TOAD-64, Crmp-62 et Munc qui présentent entre eux une identité de 97 % d'acides aminés.
  • Les séquences partielles humaines EST, c'est-à-dire hcrmp-1, qui présentent une identité de 75 % avec ULIP-1 ou ULIP-2 ont été trouvées. Elles appartiennent à un troisième groupe appelé ULIP-3. Le dernier groupe identifié appelé ULIP-4, comprend r-CRMP-3 chez le rat et les formes ULIP-4 chez la souris et POP-66/ULIP-4 chez l'homme.
  • La comparaison de la séquence d'acides aminés des trois gènes ULIP, à savoir TOAD-64 chez le rat, Crmp-62 chez le poulet, et ULIP-1 chez la souris, avec la séquence d'acides aminés déduite du cadre de lecture ouvert du présent clone C-22, en utilisant le logiciel d'alignement Clustal V, révèle que C-22 présente une identité de 74% avec ULIP-1, 77 % avec Crmp-62 et 76 % avec TOAD-64.
  • La séquence nucléotidique C-22 a une identité de 97 % avec la séquence partielle EST, hCrmp-1, et définit ainsi le troisième membre du groupe ULIP-3. Les gènes TOAD-64, Crmp-62 et C-22 codent chacun pour une protéine de 572 acides aminés de longueur, tandis que la séquence d'acides aminés déduite à partir d'ULIP-1 donne une protéine de 570 acides aminés.
  • L'analyse de la séquence d'acides aminés de C-22 ne montre aucune séquence de signal ou de domaine transmembranaire suggérant que le ou les produits du gène C-22 pourraient être localisés dans le cytoplasme des cellules.
  • Plusieurs sites consensus de phosphorylation par la protéine kinase C (S/T X R/K) apparaissent le long du produit du gène C-22. Ces observations suggèrent que C-22 est une phospho- protéine et que de légères différences dans la phosphorylation pourraient dicter l'activité ou le rôle des différents membres de cette famille de protéines tout au long du cycle cellulaire. Tableau I : Récapitulation des protéines présentant une homologie avec les ULIP.
    Famille Espèces N° EMBL
    Unc-33 nematode Nematode Z14146
    Dihydropyrimidinase Hu DHPase humain D78011
    Ra DHPase rat D63704
    groupe ULIP-1 Ulip souris X87817
    Hu DRP3 humain D78014
    r-CRMP-1 rat U52102
    Hu-Ulip humain Y07818
    groupe ULIP-2 ULIP-2 souris SEQ ID n° 2
    Toad-64 rat Z46882
    CRMP-62 poulet U17277
    Munc souris X87242
    HCRMP-2 humain U17279
    Hu DRP-2 humain D78013
    r-CRMP-4 rat U52104
    groupe ULIP-3 ULIP-3 souris SEQ ID n° 4
    HCRMP-1 humain U17278
    rCRMP-1 rat U52102
    C-22 rat . U52095
    Hu DRP-1 humain D78012
    groupe ULIP-4 ULIP-4 souris SEO ID n° 6
    POP-66/ULIP-4 homme SEQ ID n° 8
    r-CRMP-3 rat U52103
    • EXEMPLE 4 : Régulation de l'expression du gène C-22 :
  • L'évaluation des altérations dans l'expression du gène C-22 pourrait avoir une importance considérable pour la connaissance des aspects fonctionnels de la protéine C-22.
  • Par conséquent, la Demanderesse a étudié la possible régulation de l'expression du gène C-22 au cours du développement. L'ARN total est extrait et séparé par l'électrophorèse sur gel d'agarose à 1 % et transféré sur membrane Nytran (Duchemin et al. 1987). Les transferts sont hybridés avec une séquence codante C-22 marquée au 32-P; un tampon phosphate 0,5 mM et 5 % de SDS à 65°C pendant 16 heures.
  • A la fin de l'hybridation, les transferts sont lavés successivement trois fois avec 2xSSC, 0,1 % SDS à température ambiante, puis 1xSSC, 0,1 % SDS à 65°C pendant 60 minutes, et exposés aux rayons X.
  • Dans les conditions utilisées, on a détecté une seule bande à 3,8 kb représentant l'ARNm C-22 qui est aussi le plus petit transcrit de la famille de gènes unc-33 des vertébrés. La taille du transcrit reste la même durant les périodes pré et post-natales.
  • La cinétique du gène C-22 dans le cerveau de rats au cours du développement montre que le messager est détectable au cours de la période embryonnaire au jour E17. La quantité de transcrits C-22 augmente jusqu'au jour 7 post-natal puis décroît rapidement à partir de la seconde semaine après la naissance jusqu'à un niveau pratiquement indétectable chez l'adulte.
  • Aux environs de la naissance, un signal de régulation encore inconnu est probablement reçu, ce qui augmente l'expression du gène C-22, ce signal étant lié temporairement à la différenciation neuronale et au développement axonal.
  • L'ARNm de C-22 n'a pas pu être détecté par analyse Northern Blot dans plusieurs régions du cerveau telles que le cortex frontal , le cerveau moyen et le thalamus chez l'adulte et le rat âgé de plus de deux ans.
  • De plus, on n'a pas pu détecter l'ARNm de C-22 dans des tissus non neuronaux, tels que le coeur, le poumon, le foie, le rein chez des rats d'une semaine et des rats adultes.
  • Les données sur le profil de l'expression l'ARNm de C-22 suggèrent un rôle prépondérant de la protéine C-22 dans le développement du cerveau.
    • EXEMPLE 5 : Immunoempreinte de POP-66 : A - Matériels et méthodes • Transfection des ULIP dans E. coli
  • Les ADNc de pleine longueur d'ULIP-2 et ULIP-3 de rat et ULIP-1 et ULIP-4 de souris ont été sous-clonées de manière directionnelle dans le vecteur d'expression pET-21a(+) E. Coli après introduction d'un site 5'Nde I et d'un site 3' EcoRI par PCR, et les quatre constructions ont été reséquencées. L'expression de gène cible induit par IPTG a été réalisée selon le protocole du fabricant (Novagen).
    • • Production d'anticorps anti-ULIP
  • Des anticorps de lapin (anti-Pep3) sont dirigés contre le peptide ITGPEGHVLSRPEEVE (acides aminés 217-232 de la séquence SEQ ID n° 8), synthétisé sur un appareil de synthèse peptidique multiple utilisant le F-moc (432A Peptide Synthesizer SYNERGY, Applied Biosystems). La pureté a été vérifiée par analyse de la séquence par HPLC et spectrométrie de masse. 1 mg du peptide synthétique conjugué à de l'hémocyanine de patelle, dans de l'adjuvant complet de Freund, a été utilisé pour immuniser des lapins avec une dose « booster » de 0,5 mg de peptide lié dans de l'adjuvant complet de Freund après 4 semaines. Les anticorps anti-Pep3 ont reconnu les quatre protéines ULIP recombinantes exprimées dans E. Coli.
  • Le marquage avec les anticorps anti-Pep3 a été éliminé après préincubation avec le peptide 3. Des contrôles avec des sérums de lapin pré-immuns étaient négatifs.
  • Des anticorps anti-peptide 4 dirigés contre le peptide LEDGTLHVTEGS ont été produits selon le même protocole.
    • B - Résultats
  • Des anticorps contre quatre des peptides séquencés ont été produits. Deux des sérums se sont avérés particulièrement intéressants.
  • L'un contient des anticorps (Ac anti-pep3) qui reconnaissent plusieurs membres de la famille ULIP en électrophorèse à deux dimensions d'extraits protéiques de cerveau de rat nouveau né (figure 2) et sur électrophorèse à une dimension (figure 3). Un autre anticorps (Ac anti-pep4) reconnaît en Western Blot une seule bande de 66 kDa susceptible de correspondre à un seul membre de la famille (figure 3). à savoir ULIP-2.
    • EXEMPLE 6 : Immunohistochimie
  • Les préparations de tissus pour l'immunohistochimie sont obtenues à partir de cerveaux de rats nouveaux-nés et de cerveaux humains post-mortem, fixés à 4° C dans du paraformaldéhyde à 4 % et 0,2 % d'acide picrique dilués dans du tampon phosphate (0,1 M, pH =7,4), puis cryoprotégés.
  • L'immunocytochimie peut être réalisée par la technique d'immunofluorescence indirecte. Des coupes de 12 µm d'épaisseur sont réalisées au cryostat puis montées sur lame recouverte de gélatine, traitées pendant 2 heures dans du tampon PBS et 1 % de sérumalbumine bovine (BSA) avec 0,1 % de Triton X100 et incubées 12 h avec le sérum de patients anti-CV2 dans du PBS-1% BSA à température ambiante (dilution du sérum 1/100). Après plusieurs lavages avec PBS-1 % BSA, les coupes sont incubées pendant 2 h avec un anti-sérum anti-humain de lapin conjugué à la fluorescéine diluée à 1 % (Dakopatts) dans du PBS-1 % BSA. Après lavage dans le PBS les lames sont examinées au microscope. Les coupes contrôle sont incubées avec soit l'antisérum IgG anti-humain conjugué à la fluorescéine seule, soit le PBS-1 % BSA seul, soit le sérum de patient seul, soit enfin le sérum contrôle (patients non atteint de SNP) et anticorps conjugué à la fluorescéine à la même dilution.
  • Pour confirmer l'immunofluorescence on peut utiliser le marquage indirect par immunoperoxydase. Les coupes de tissus congelés fixés au paraformaldéhyde sont incubées avec 0,3 % d'H2O2 (pour détruire l'activité peroxydase intrinsèque) et 10 % de sérum normal de lapin (pour éviter la liaison non spécifique des IgG de lapin) ou 1 % BSA. Après incubation 12 h avec des sérums de patients dilués à 111000 et lavage, les coupes sont incubées 2 h avec de l'antisérum IgG anti-humain de lapin biotinylé dilué à 1/1000 dans PBS-1% BSA. Les IgG humains liés sont visualisés par incubation avec un complexe avidine-biotine-peroxydase (Vectastain ABC complex, Vector) et développés avec 0,05 % DAB (Sigma). Les coupes contrôle sont obtenues avec des sérums de 15 patients sans SNP selon le même protocole.
    • A - Localisation des protéines de la famille ULIP à l'aide d'anticorps antipeptides :
  • Un marquage immunohistochimique a été réalisé sur coupe de cerveaux de rats nouveaux-nés et adultes. L'anticorps antipeptide-3 reconnaît un (des) antigènes présent(s) dans plusieurs types cellulaires sur coupe de cerveaux de rats nouveau-nés et adultes (fig. 4). Comme le sérum anti-CV2 de patient, les anticorps anti-peptide-4 ne permettent la mise en évidence d'aucun antigène sur coupe de cerveau de rat nouveau né alors qu'ils marquent spécifiquement une sous-population d'oligodendrocytes dans le cerveau de rat adulte (fig. 4).
    • B - Expression de POP-66 au cours du développement normal du cerveau :
  • La figure 5 montre que les cellules nerveuses prolifératives des zones progénitrices du système nerveux mises en évidence par l'accumulation de bromodéoxyuridine (BrdU) n'expriment pas POP-66 alors que les cellules non prolifératives qui correspondent aux cellules nerveuses en différenciation ou en migration l'expriment.
    • EXEMPLE 7 : Rôle de POP-66 dans la survie neuronale
  • La figure 6 permet de comparer des coupes de cerveaux humains de patients sains et de patients atteints de SNP. Chez les patients atteints d'un SNP et présentant des anticorps circulant anti-CV2, on observe une disparition des neurones du gyrus dentatus et des neurones pyramidaux (bande de cellules centrale), ainsi qu'une réaction astrocytaire intense.
    • EXEMPLE 8 : Caractérisation de la protéine POP-66 - Identification avec ULIP-4 : Matériels et méthodes a) Purification partielle d'ULIP-1
  • ULIP-1 partiellement purifiée a été obtenue à partir de cerveaux de souris nouveaux-nés par trois étapes de purification. Ces cerveaux ont été homogénéisés dans 4 volumes de tampon d'homogénéisation (25 mM phosphate de sodium, pH 7,8, 1 mM EGTA, 10 µg/ml de leupeptine, 25 µg/ml d'aprotinine, et 10 µg/ml de pepstaine. Les homogénats ont été centrifugés pendant 10 minutes à 400 x g. Les culots ont été resuspendus dans 2 volumes de tampon d'homogénéisation, homogénéisés, et de nouveau centrifugés. Les surnageants issus des deux centrifugations ont été rassemblés, soniqués et centrifugés pendant 1 heure à 100.000 x g. Le surnageant (S2) a été chargé sur une colonne CL-6B de DEAE-Sepharose (1,75 cm2 x 26 cm) équilibré avec 100 ml de tampon A (25 mM de phosphate de sodium, pH 7,8, 1 mM d'EGTA) à une flux de 30 ml par heure. Les protéines ont été éluées dans 300 ml d'un gradient linéaire de chlorure de sodium 0-250 mM dans du tampon A et des échantillons de 5 ml ont été recueillis. Les fractions contenant ULIP ont été collectées et du sulfate d'ammonium solide a été ajouté jusqu'à 20 % de saturation. Ce « pool » a été chargé sur une colonne CL-48 de phényl-Sepharose (1,75 cm2 x 22 cm) qui a été préalablement équilibré avec 100 ml de tampon B (10 mM de phosphate de sodium, pH 7,8, 1 mM d'EGTA) contenant 20 % de sulfate d'ammonium saturé. Les protéines ont été éluées dans un gradient linéaire décroissant de 20 à 0 % de sulfate d'ammonium saturé dans du tampon B. Les fractions contenant ULIP ont été recueillies, dialysées deux fois contre 20 volumes de tampon A. Les protéines ont été concentrées sur une petite (10 ml) colonne C1-6B de DEAE-Sepharose et éluées avec 400 mM de chlorure de sodium dans du tampon A. L'éluat a été dessalé sur une colonne Sephadex G-25 (NAP-10) et concentré dans un volume final de 0,5 ml par évaporation. Dans la dernière étape de purification, la fraction concentrée a été chromatographiée en trois étapes successives, sur deux colonnes de FPLC (Fast Protein Liquid Chromotagraphy) Superose 12 montées en série, dans du tampon C (50 mM de phosphate de sodium, pH 7,2, 150 mM de chlorure de sodium) à un débit de 0,3 ml/minute. Les fractions (0,6 ml) ont été recueillies et les fractions enrichies en ULIP ont été analysées. La présence d'ULIP dans les étapes successives de purification a été testée par un Western Blot à une dimension en utilisant un anticorps anti-stathmine capable de réactivité croisée. Les protéines ont été quantifiées selon la méthode de Bradford.
    • b) Migration sur net d'électrophorèse :
  • Une électrophorèse à une dimension a été effectuée sur des gels de polyacrylamide 13 % selon la méthode de Laemmli. Les électrophorèses PAGE à deux dimensions ont été effectuées tel que décrit précédemment. Les gels d'isoélectrofocalisation contenaient 2 % d'ampholines total, pH 6-8 et 3-10 selon un rapport de 4 :1. La seconde dimension avait été menée sur des gels d'acrylamide à 10 %. Les protéines ont été soit soumises à une immuno-empreinte soit colorées par l'argent.
    • c) Analyse Western Blot :
  • Les protéines ont été transférées à partir des gels sur de la nitrocellulose dans du tampon contenant Tris 48 mM, glycine 39 mM et 5% de méthanol. La membrane a été saturée avec de la caséine (2,5 %) dans la solution d'immuno-empreinte (12 mM de Tris-HCl, pH 7,4, 160 mM de Na Cl, 0,1 % de Triton X-100) et testée avec un antisérum dirigé contre le peptide I de la stathmine de rat (dilution 1/10.000) ou un antisérum dirigé contre la protéine ULIP recombinante (dilution 1/20.000) dilué dans une solution d'immuno-empreinte contenant 1 % de caséine. Les anticorps liés ont été détectés soit avec une protéine A marquée à |'125| et autoradiographiés soit avec des anticorps anti-lapin liés à la peroxydase en utilisant le kit ECL (Amersham).
    • d) Analyse de la séquence protéique :
  • Les fractions enrichies en ULIP ont été séparées sur les gels de polyacrylamide à deux dimensions. Les gels sont fixés pendant 30 minutes dans 25 % d'éthanol et 10 % d'acide acétique et colorés pendant 3 minutes dans 0,1 % de noir amido dans 1 % d'acide acétique et 40 % de méthanol. Les gels ont été décolorés dans 1 % d'acide acétique et les taches correspondant à la forme principale de ULIP ont été découpées dans ces trois gels, recueillies et digérées avec 2 mg/ml d'endoprotéase Lys C. Les peptides élués du gel ont été ensuite séparées par HPLC sur colonne DEAE-C18 avec un gradient de 0-55 % d'acétonitrile dans 0,1 % d'acide trifluoroacétique. Les peptides ont ensuite été séquencés selon la dégradation automatique d'Edman.
    • e) Expression in vitro chez un mammifère
  • 1 µg du plasmide Bluescript contenant l'AONc entier codant pour ULIP-1, ULIP-2, ULIP-3 ou ULIP-4 a été utilisé pour réaliser la transcription et la traduction in vitro avec le système « Reticulocyte lysate » (Promega) selon le protocole décrit par le fabricant. 5 µg du mélange de 25 µl total de transcription/traduction ont été analysés sur gel d'électrophorèse à deux dimensions.
    • Résultats
  • Ni la protéine recombinante ULIP-1, ni les protéines recombinantes TOAD-64 (ULIP-2) et C-22 (ULIP-3) ne sont reconnues par les sérums anti-CV2. De plus, le profil de distribution des taches correspondant à POP-66 reconnues par les anticorps anti-CV2 en électrophorèse à deux dimensions ne correspond pas aux taches reconnues par les anticorps anti-UL1P-1. Or, POP-66 est un membre de la famille ULIP puisque les trois taches POP-66 sont reconnues par l'Ac anti-pep3. POP-66 correspond donc à un membre de la famille de pHi plus basique.
  • Après traduction in vitro des quatre protéines(ULIP-1, 2, 3, 4), on a montré que ULIP-4 a le même profil électrophorétique 2D que POP-66 et est reconnue par les anticorps anti-CV2 (figure 7).
  • Pour cela, la protéine ULIP-4 et, comme contrôle, la protéine ULIP-2 ont été traduites in vitro en présence de méthionine 35S à partir de clones d'ADNc codants pour les protéines entières. Les protéines ont été séparées par électrophorèse à deux dimensions (en présence d'un extrait de cerveau fournissant les repères essentiels), transférées sur nitrocellulose et révélées :
    • par autoradiographie pour localiser les protéines traduites in vitro (traduction) ;
    • par immunoempreinte avec le sérum CV2.
  • La figure 7 montre que les trois taches de la traduction in vitro d'ULIP-4 correspondent aux taches reconnues par CV2. Ces taches ne sont pas reconnues dans la traduction d'ULIP-2.
  • Le sérum CV2 reconnaît donc spécifiquement ULIP-4.
  • Ceci a permis d'identifier POP-66 comme ULIP-4.
    • EXEMPLE 9 : Localisation chromosomique de la protéine POP-66/ULIP-4
  • L'ADNc d'ULIP-4 humain étant cloné, il est alors possible de déterminer la localisation chromosomique du gène POP-66/ULIP-4 par cartographie génique par hybridation in situ isotopique (Levy et Mattei et al., 1995) .
  • L'hybridation in situ est menée sur des préparations de chromosomes obtenues à partir de lymphocytes humains stimulés par la phytohémagglutinine mis en culture pendant 72 heures. De la 5-bromodéoxyuridine a été ajoutée pendant les 7 dernières heures de la culture (60 µg/ml de milieu), pour assurer une image de bandes chromosomiques post-hybridation de bonne qualité. Le clone contenant un insert de 1300 paires de bases codant pour ULIP-4 dans le vecteur Bluescript est marqué au tritium par translation de coupure (« nick translation ») avec une activité spécifique de 1x108 dpm. µg-1. La sonde radiomarquée a été hybridée au stade métaphase à une concentration finale de 200 ng par ml de solution d'hybridation. Après recouvrement par une émulsion Kodak NTB2 les lames ont été exposées pendant 20 jours à +4°C puis développées. Pour éviter le décalage des grains d'argent pendant le processus, les étalements de chromosomes ont été préalablement marqués avec une solution tampon de Giemsa et les métaphases ont été photographiées. La révélation des bandes a été effectuée par la méthode « fluorochrome-photolyse Giemsa » (FPG) et les métaphases ont été rephotographiées avant analyse. Sur les 100 cellules en métaphase examinées après hybridation in situ, on a dénombré 246 grains d'argent associés aux chromosomes et 54 parmi ceux-ci (21.9 %) étaient localisés sur le chromosome 10. La distribution des grains sur ce chromosome n'était pas aléatoire : 39 sur 54 (72,2 % de ceux-ci) étaient localisés sur la région q25.2-q26 du bras long du chromosome 10.
  • Le gène POP-66/ULIP-4 se trouve donc situé sur le chromosome 10 dans la région q25.2-q26. Dans cette région chromosomique, les locus de maladies neurodégénératives et de gènes suppresseurs de tumeurs impliqués dans différents types de cancers ont été localisés. Le locus d'une maladie cérébelleuse à début précoce (« infantil onset spinocerebellar ataxia ») a été identifié dans la région 10q24-26 (Varilo et al., 1996 ; Nikati et al., 1995). Les symptômes de cette maladie dégénérative hériditaire récessive caractérisée par une ataxie, une neuropathie et une atrophie optique sont similaires à ceux observés chez les patients atteints de syndromes neurologiques paranéoplasiques avec des auto-anticorps anti-CV2 circulants (Honnorat et al., 1996). D'un autre côté, 80 % des glioblastomes présentent des mutations dans cette région chromosomique et plusieurs locus suppressifs impliqués dans différents types de tumeurs (prostate, rein, cancer du poumon à petites cellules et carcinomes de l'endomètre) sont localisés dans cette région chromosomique. Ces données renforcent la possibilité que PO66/ULIP-4 joue un rôle crucial dans la neurodégénération et la tumorigénèse.
  • A cet égard, il est notable que l'expression de ULIP-1 est régulée à la hausse dans des cellules de neuroblastomes différenciés par l'acide rétinoïque et que ULIP-1 et ULIP-3 sont régulés à la hausse mais ULIP-4 est régulé à la baisse dans des cellules PC12 différenciées en présence de NGF, suggérant que l'arrêt de la croissance cellulaire peut être lié à des niveaux d'expression des protéines ULIP.
    • EXEMPLE 10 : Expression des protéines ULIP dans les cellules HeLa transfectées A - Matériels et méthodes
  • Une séquence « flag » (EcoRl-ATGGACTACAAGGACGACGATGACAAGG-BamHI) (Kodak) a été clonée dans le site EcoRI de pSG5 suivi par ULIP-1 (EMBEL X87817, paires de bases: 309-2023), Ulip2 (Y10339, paire de bases : 23-1741), Ulip3 (Y09080, paires de bases : 269-1991) ou Ulip 4 (Y09079, paires de bases : 102-1820), respectivement. Les cellules HeLa ont été cultivées dans des milieux DMEM (Gibco) additionnées de 10 % de sérum de veau foetal (v/v). Les transfections ont été réalisées par précipitation au phosphate de calcium (Maniatis et al., 1978). Les cellules HeLa ont été mélangées avec 5 µg de plasmides pSG5flag-ULIP-1, 2, 3, 4 et 10 µg de pUC18. Vingt quatre heures après la transfection, les cellules HeLa ont été fixées avec 4 % de paraformadehyde et immunomarquées avec différents sérums humains (dilution 1/300), révélées par des anticorps anti-IgG humains conjugués à la FITC (Biosys), ou des anticorps anti-fiag (M2. Kodak) (dilution 1/1000), révélés par des anticorps anti-lapin conjugués au rouge Texas (Vector).
  • Un double immuno-marquage a été réalisé sur les cellules HeLa transfectées par des ULIP en utilisant des anticorps anti-flag et anti-Pep3. Dans les cellules transfectées par un quelconque ADNc, 10 à 20 % d'entre elles présentaient un immuno-marquage avec les anticorps anti-flag révélés par les anticorps anti-souris conjugués au rouge Texas.
  • Toutes les cellules transfectées ont été marquées en double par des anticorps dirigés contre Pep3, un peptide commun aux quatre ULIP est révélé par des anticorps anti-IgG de lapin conjugué à la fluoresceine.
  • Un double immuno-marquage a également été réalisé sur les cellules HeLa transfectées par des ULIP en utilisant des anticorps anti-flag et anti-CV2. Les sérums humains de patients atteints de SNP avec des auto-anticorps circulant anti-CV2 ont marqué les cellules transfectées par ULIP-4, et un sérum anti-CV2 a également marqué les cellules transfectées par ULIP-3. Aucun marquage des cellules transfectées par ULIP-4 n'a été détecté dans les sérums contrôles de patients sans cancer ou maladie neurologique.
    • B ) Résultats
  • Après transfection des cellules HeLa avec des ADNc marqués par les flag des 4 ULIP, 10 à 20 % des cellules étaient fortement réactives avec des anticorps anti-flag et des anticorps anti-Pep3 qui reconnaissent les 4 ULIP de mammifères. Les cellules transfectées n'ont pas été immuno-marquées avec du sérum contrôle de 10 patients neurologiques sans SNP ni avec du sérum pré-immun de lapin. En revanche, les cellules transfectées avec de l'ADNc d'ULIP-4 ont montré une immuno-réactivité intense avec tous les 7 sérums testés de patients avec des auto-anticorps anti-CV2 circulants. Ces sérums sont négatifs sur des cellules transfectées avec des ADNc d'autres ULIP, à l'exception d'un sérum qui a également reconnu les cellules transfectées par ULIP-3 et un sérum qui a également reconnu les cellules transfectées par ULIP-1, 3 et 4. Aucun marquage n'a été observé sur des cellules HeLA non transfectées, avec un sérum anti-CV2.
  • Le tableau I ci-après présente les résultats d'immunofluorescence indirecte avec différents sérums sur les cellules HeLa par des ADNc marqués de membres de la famille de ULIP. Table 1 :
    N° sérum Symptomes neurologiques Type de tumeur Ulip- 1 Ulip-2 Ulip-3 Ulip-4
    Anti-Pep3 - - + + + +
    pre-immun - - - - - -
    Pep3
    90-002 PCD, uvéite UC - - + +
    93-484 LE Thymome - - - +
    94-590 LE SCLC - - - +
    95-700 PEM SCLC + - + +
    95-701 PCD sarcome utérin - - - +
    95-706 LE, neuropathie SCLC - - - +
    97-040 PCD SCLC - - - +
    97-103 PCD SCLC - - - +
    • PCD : dégénération paranéoplasique du cervelet ;
    • LE : encéphalite lymbique ;
    • PEM : encéphalomyélite paranéoplasique ;
    • UC : carcinome indifférencié ;
    • SCLC : carcinome de poumons à petites cellules.
    EXEMPLE 11 : Expression de POP-66/ULIP-4 et des membres de la famille ULIP dans les cancers A - Expression de ULIP-2 et ULIP-3 dans les cancers : 1) Matériels et méthodes : expériences de RT-PCR :
  • L'ARN total a été extrait en utilisant 1 ml de RNAZOL™B (Bioprobe) selon la méthode de Chomczynski et Sacchi. La quantité d'ARN a été déterminée par densité optique mesurée à 260 nm et sa pureté a été déterminée à partir du rapport des absorbances mesurées à 260 et 280 nm (rapports 1,8-2,0). L'intégrité des préparations d'ARN a été en outre vérifiée par électrophorèse sur gel d'agarose à 1 % dans du TBE (0,45 M de Tris-borate, 10 mM d'EDTA, pH 8): La spécificité des amorces a été analysée en comparant leurs séquences avec les diverses banques de données de gènes (EMBL et FASTA). Pour une quantification relative, le gène codant pour la G3PDH (glycéraldéhyde-3-phosphate déshydrogénase, Clontech), gène ubiquitaire exprimé dans de nombreux tissus incluant le cerveau, a été co-amplifié avec l'ARNm testé en tant que standard interne pour vérifier l'égalité des quantités d'ARN des échantillons et pour tester l'efficacité de l'étape de transcription inverse pour les différents échantillons d'ARN. Les amorces 5', 3' et les oligonucléotides des sondes internes de G3PDH ont été synthétisées et purifiées par Eurogentec. L'ARNm total (1 µg) a été dénaturé (15 minutes à 65° C) et transcrit en ADNc simple brin (1 heure et demie, 42° C) dans un volume final de 20 µl de tampon (50 mM de Tris-HCl, 75 mM de KCI, pH 8,3, Gibco BRL) contenant 5 ng par µl d'amorce oligo-dT 12-18 (Pharmacia Biotech), 40 unités de reverse transcriptase du virus de la leucémie murine Moloney (Mu-LV) (Gibco BRL), 40 unités de RNAsine (Promega), 10 mM DTT (Gibco BRL) et 0,5 mM de chacun des déoxynucléotides triphosphate (Promega). Les échantillons d'ADNc ont été dilués au 1 /10 dans de l'eau distillée et les réaction de PCR ont été menées en utilisant 1 µl, 4 µl ou 2 µl de l'échantillon d'ADNc pour l'ARN messager d'ULIP-2 et ULIP-3, dans un tampon (50 mM de KCl, 10 mM de Tris-HCl, 0,1 % de Triton X100, 0,4 % de glycérol et 800 µM de NaCl, Ph 9), dans lequel a été ajouté 40 µM de DTT, 3 mM de MgCl2, 0,2 mM de chaque dNTP, 0,4 µM de chaque amorce sélectionnée et 2 unités de l'AmpliTaq ADN polymérase (Promega) dans un volume final de 50 µl. Les échantillons ont ensuite été placés dans un thermocycleur (Biomed-Hybaid), dénaturés à 95°C pendant 5 minutes et amplifiés pendant 35 cycles (un cycle = dénaturation 95° C pendant 65 secondes, hybridation des amorces 60° C pendant 45 secondes extension 72° C pendant 4 minutes et allongement finale 15 minutes à 72° C. Les produits ont été séparés par électrophorèse sur gel d'agarose-Seakem à 1 % et les bandes tests des produits de RT-PCR de taille attendue ainsi que l'échelle de marqueur de poids moléculaire (100 paires de base) (Promega) ont été visualisés en utilisant la coloration au bromure d'éthidium.
    • Composition des sondes oligonucléotidiques utilisées pour la PCR ULIP-3 5' ATAGAGGAGCGGATGACG (899) 3'
  • GCTGTTATGGTCTTCAACTTGTCGG (1092)
  • GGCCTGTTATGGTCTTCAACTTGTCG (1093)
    • Composition des sondes oligonucléotidiques utilisées pour la PCR ULIP-2 5' AGGAGGAGTGAAGACCATCG 5227) 3'
  • CTTATGCCACTCGCTGATGTCC (509).
    • 2) Résultats
  • Les expériences de RT-PCR montrent que TOAD-64 (ULIP-2) et C-22 (ULIP-3) sont exprimés dans certaines tumeurs du poumon à petites cellules (cf. figure 8) et absents dans d'autres notamment dans celles des patients qui développent des syndromes neurologiques paranéoplasiques de meilleur pronostic.
    • B - Expression de ULIP-4 dans les cancers 1) Matériels et méthodes • Préparation de l'ARN et RT-PCR
  • Les ARN totaux sont extraits de tumeurs cérébrales conservées dans l'azote liquide, selon la technique classique au RNAZOL™(Bioprobe, France). La transcription inverse a été effectuée en utilisant des oligo(dt)18 sur 1 µg d'ARN total et la PCR a été réalisée avec 1/20 du volume du mélange pour la transcription inverse (RT-mix). Les amorces utilisées pour ULIP-4 sont :
    5'CATCTGGCTGTCGCTGCAC3', 5'GCCGCCCCTACCAGAGACC3', et pour GAPDH : 5'GGAGATTCAGTGTGGTGG3', 5'GGCTCTCCAGAACATCATCC3'. L'ADNc a été dénaturé à 95°C pendant cinq minutes. L'amplification par PCR a été réalisée pendant 30 cycles. Ulip4 : 95°C, 45 sec ; 62°C, 45 sec ; 72°C, 45 sec. GAPDH : 95°C, 45 sec ; 55°C, 45 sec ; 72°C, 45 sec. L'extension finale a été réalisée à 72°C pendant 5 minutes.
    • 2) Résultats
  • Sur les 8 extraits de glioblastomes étudiés, 4 (50 %) exprimaient l'ARN messager de ULIP-4. A l'inverse, sur les 10 extraits d'oligodendrogliomes testés, aucun n'exprimait l'ARN messager de ULIP-4. Cette expression différentielle, en fonction du type de tumeur cérébrale primitive, est en faveur d'un rôle potentiel de ULIP-4 dans la prolifération cellulaire de ces tumeurs.
  • La protéine POP-66/ULIP-4 ainsi que les protéines de la famille ULIP pourraient être exprimées dans les tumeurs périphériques (tumeur du poumon à petites cellules, thymome, cancer du sein et de l'ovaire). Leur présence pourrait donc être corrélée à un pronostic. La localisation du gène de POP-66/ULIP-4 sur la partie distale du chromosome 10 le confirme dans le cas des tumeurs cérébrales.
  • Ainsi, l'expression différentielle des membres de la famille ULIP dans des tumeurs telles que le cancer à petites cellules du poumon, alors que le gène ULIP correspondant est absent dans un tissu sain, ainsi que la modulation de l'expression des membres de la famille ULIP obtenus lors de la différenciation par le rétrovirus humain HTLV1 d'une lignée de médulloblastome, suggèrent l'implication des ULIP dans les tumeurs cancéreuses.
    • EXEMPLE 12 : Production d'anticorps spécifiques de chacune des protéines ULIP humaines
  • Des peptides spécifiques de chaque membre de la famille ULIP ont été synthétisés synthétisé sur un appareil de synthèse peptidique multiple utilisant le F-moc (432A Peptide Synthesizer SYNERGY, Applied Biosystems). La pureté a été vérifiée par analyse de la séquence par HPLC et spectrométrie de masse.
  • Ces peptides sont :
    • Peptide spécifique de ULIP-1 G S A R G S P T R P N (11 acides aminés)
    • Peptide spécifique de ULIP-2 : S S A K T S P A K Q Q A (12 acides aminés)
    • Peptide spécifique de ULIP-3 : P S A K S S P S K H Q (11 acides aminés)
    • Peptide spécifique de ULIP-4 : P A R A S C P G K I S (11 acides aminés).
  • 1 mg du peptide synthétique conjugué à de l'hémocyanine de patelle, dans de l'adjuvant complet de Freund, a été utilisé pour immuniser des lapins avec une dose « booster » de 0,5 mg de peptide lié dans de l'adjuvant complet de Freund après 4 semaines.
  • Les anticorps obtenus reconnaissent spécifiquement chaque protéine membre de la famille ULIP.
    • EXEMPLE 13 : Production d'animaux transgéniques exprimant ULIP-4
  • Des drosophiles ont été transformées par l'ADNc d'ULIP-4 humain.
  • L'ADNc de ULIP-4, précédemment cloné dans pbluescript SK-phagemid, a été excisé par double digestion enzymatique Kpn1 et Xba1. Après électrophorèse sur gel d'agarose, le fragment d'ADNc a été purifié puis cloné dans pUAST, dérivant de pCaSpeR3, digéré par les enzymes de restriction Kpn1 et Xba1. Le plasmide 10-C résulte du clonage directionnel de l'AONc de ULIP-4 dans pUAST associé au gène rapporteur mini-white. Le plasmid 10-C a été injecté avec un plasmide helper p-delta-2-3 codant pour la transposase de l'élément P active dans la lignée germinale.
  • Les drosophiles transformées sont identifiées par leurs yeux rouges résultant de l'expression du gène mini-white. Ces lignées transformées par l'ADNc de ULIP-4 sous le contrôle de séquences régulatrices UASGAL4 permettent une expression ciblée de l'ADNc de ULIP-4.
  • Cette production de drosophiles transformées permet d'étudier spécifiquement le rôle de ULIP-4 dans différentes cellules et comprendre son implication dans les pathologies humaines.
    • BIBLIOGRAPHIE
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    • Wang L-H et al., J. Neurosci., 1996, vol. 16(9), pp 6197-6207
    LISTE DE SEQUENCES
    • (1) INFORMATION GENERALE:
      • (i) DEPOSANT:
        • (A) NOM: Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale
        • (B) RUE: 101, rue de Tolbiac
        • (C) VILLE: Paris
        • (E) PAYS: FRANCE
        • (F) CODE POSTAL: 75013
        • (G) TELEPHONE: 0144236000
        • (H) TELECOPIE: 0145856856
      • (ii) TITRE DE L'INVENTION: Utilisation des Ulip dans les SNP et les cancers associés
      • (iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 8
      • (iv) FORME LISIBLE PAR ORDINATEUR:
        • (A) TYPE DE SUPPORT: Floppy disk
        • (B) ORDINATEUR: IBM PC compatible
        • (C) SYSTEME D' EXPLOITATION: PC-DOS/MS-DOS
        • (D) LOGICIEL: Patent In Release #1.0, Version #1.25 (OEB)
    • (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 1:
      • (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
        • (A) LONGUEUR: 1817 paires de bases
        • (B) TYPE: acide nucléique
        • (C) NOMBRE DE BRINS: simple
        • (D) CONFIGURATION: linéaire
      • (ii) TYPE DE MOLECULE: ADNc
      • (vi) ORIGINE:
        • (A) ORGANISME: Mus musculus
      • (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1:
        Figure imgb0001
        Figure imgb0002
    • (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 2:
      • (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
        • (A) LONGUEUR: 572 acides aminés
        • (B) TYPE: acide aminé
        • (C) NOMBRE DE BRINS: simple
        • (D) CONFIGURATION: linéaire
      • (ii) TYPE DE MOLECULE: peptide
      • (vi) ORIGINE:
        • (A) ORGANISME: Mus musculus
      • (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 2:
        Figure imgb0003
        Figure imgb0004
        Figure imgb0005
    • (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 3:
      • (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
        • (A) LONGUEUR: 2297 paires de bases
        • (B) TYPE: acide nucléique
        • (C) NOMBRE DE BRINS: simple
        • (D) CONFIGURATION: linéaire
      • (ii) TYPE DE MOLECULE: ADNc
      • (vi) ORIGINE:
        • (A) ORGANISME: Mus musculus
      • (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 3:
        Figure imgb0006
        Figure imgb0007
        Figure imgb0008
    • (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 4:
      • (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
        • (A) LONGUEUR: 572 acides aminés
        • (B) TYPE: acide aminé
        • (C) NOMBRE DE BRINS: simple
        • (D) CONFIGURATION: linéaire
      • (ii) TYPE DE MOLECULE: peptide
      • (vi) ORIGINE:
        • (A) ORGANISME: Mus musculus
      • (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 4:
        Figure imgb0009
        Figure imgb0010
        Figure imgb0011
    • (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 5:
      • (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
        • (A) LONGUEUR: 1920 paires de bases
        • (B) TYPE: acide nucléique
        • (C) NOMBRE DE BRINS: simple
        • (D) CONFIGURATION: linéaire
      • (ii) TYPE DE MOLECULE: ADNc
      • (vi) ORIGINE:
        • (A) ORGANISME: Mus musculus
      • (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 5:
        Figure imgb0012
        Figure imgb0013
    • (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO 6:
      • (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
        • (A) LONGUEUR: 572 acides aminés
        • (B) TYPE: acide aminé
        • (C) NOMBRE DE BRINS: simple
        • (D) CONFIGURATION: linéaire
      • (ii) TYPE DE MOLECULE: peptide
      • (vi) ORIGINE:
        • (A) ORGANISME: Mus musculus
      • (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO 6:
        Figure imgb0014
        Figure imgb0015
        Figure imgb0016
    • (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO 7 :
      • (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
        • (A) LONGUEUR: 1690 paires de bases
        • (B) TYPE: acide nucléique
        • (C) NOMBRE DE BRINS: simple
        • (D) CONFIGURATION: linéaire
      • (ii) TYPE DE MOLECULE: ADNc
      • (vi) ORIGINE:
        • (A) ORGANISME: Homo sapiens
      • (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO 7:
        Figure imgb0017
        Figure imgb0018
    • (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO 8 :
      • (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
        • (A) LONGUEUR: 572 acides aminés
        • (B) TYPE: acide aminé
        • (C) NOMBRE DE BRINS: simple
        • (D) CONFIGURATION: linéaire
      • (ii) TYPE DE MOLECULE: peptide
      • (vi) ORIGINE:
        • (A) ORGANISME: Homo sapiens
      • (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO 8 :
        Figure imgb0019
        Figure imgb0020

Claims (11)

  1. Polypeptide purifié comprenant la séquence d'acides aminés SEQ ID n° 8, ledit polypeptide étant désigné par « POP-66 ».
  2. Acide nucléotidique isolé comprenant une séquence codant pour un polypeptide de séquence d'acides aminés SEQ ID n° 8.
  3. Acide nucléique selon la revendication 2, comprenant une séquence SEQ ID n° 7.
  4. Vecteur de clonage et/ou d'expression contenant une séquence d'acides nucléiques selon l'une des revendications 2 ou 3.
  5. Cellule hôte transfectée par un vecteur selon la revendication 4.
  6. Anticorps monoclonal dirigé contre un polypeptide POP-66 selon la revendication 1, ainsi que les fragments Fab ou F(ab')2, ou les immunoconjugués dudit anticorps monoclonal.
  7. Utilisation d'un polypeptide purifié POP-66 selon la revendication 1, pour détecter la présence d'anticorps anti-CV2 dans un échantillon biologique.
  8. Utilisation d'un anticorps monoclonal ou ses fragments Fab ou F(ab')2, ou immunoconjugués selon la revendication 6, pour la purification ou la détection d'une protéine POP-66 dans un échantillon biologique.
  9. Méthode in vitro pour le diagnostic des syndromes neurologiques paranéoplasiques et/ou pour le diagnostic précoce de la formation des tumeurs cancéreuses, caractérisée en ce que l'on met en évidence dans un échantillon de sang prélevé chez un individu des auto-anticorps dirigés contre une protéine POP-66 par
    - la mise en contact un échantillon de sang d'un individu avec un polypeptide purifié (POP-66) selon la revendication 1, éventuellement fixé sur un support dans des conditions permettant la formation de complexes immunologiques spécifiques entre ledit polypeptide et les auto-anticorps éventuellement présents dans l'échantillon de sang, et
    - la détection des complexes immunologiques spécifiques éventuellement formés.
  10. Kit pour le diagnostic des syndromes neurologiques paranéoplasiques et pour le diagnostic précoce de la formation des tumeurs à partir d'un prélèvement biologique comprenant :
    - au moins un polypeptide purifié POP-66, selon la revendication 1, éventuellement fixé sur un support,
    - des moyens de révélation de la formation de complexes antigène/anticorps spécifiques entre un auto-anticorps anti-POP-66 et ledit polypeptide purifié POP-66, et/ou des moyens de quantification de ces complexes.
  11. Composition pharmaceutique, comprenant au moins un polypeptide purifié POP-66 selon la revendication 1, un acide nucléique codant pour ledit polypeptide, une séquence anti-sens capable de s'hybrider spécifiquement avec une séquence nucléotidique codant pour ledit polypeptide, ou un anticorps dirigé contre ledit polypeptide, associé à un véhicule pharmaceutiquement acceptable.
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