CN1324045C - 从水母中分离的具有抗氧化活性的蛋白及其应用 - Google Patents

从水母中分离的具有抗氧化活性的蛋白及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明涉及海洋生物，具体讲是两类具有抗氧化活性的水母蛋白，其分离步骤为，水母绞碎细胞破碎后，加入磷酸缓冲溶液中，2-6℃浸泡0.5-2h；转速10000-20000rpm，离心10-30min，取上清液；磷酸缓冲溶液二次浸取，转速10000-20000rpm，离心10-30min；合并两次离心的上清液；用凝胶过滤层析法，将合并的上清液分离，得到两类水母蛋白；它们能够抑制超氧阴离子自由基(O2-)、羟自由基(OH)的产生，防止红细胞因过氧化氢氧化溶血和肝脂质过氧化；属于天然抗氧化剂，抗氧化活性高，对人、畜无毒害；同时，本发明利用了水母海洋生物资源丰富，为其低值资源获得高值化发展提供了新途径。

Description

从水母中分离的具有抗氧化活性的蛋白及其应用
技术领域
本发明涉及海洋生物，具体讲是两类具有抗氧化活性的水母蛋白，可作为抗衰老药物的药源，同时也为天然食品添加剂的研制提供新途径。
背景技术
活性氧自由基对机体具有巨大的损伤作用，如会引起蛋白质损伤、酶失活、膜质过氧化，导致衰老、肿瘤、动脉粥样硬化等许多疾病的发生。人工合成的二丁基羟基甲苯(BHT)、丁基羟基甲氧基(BHA)、丙二醇(PG)等具有较好的清除活性氧自由基的作用，常用作食品添加剂，但近年研究表明，BHT、BHA、PG具有致癌作用。因此筛选对人体安全、高效的活性氧清除剂有着重要的意义。
水母蛋白结构新颖独特，具有多种生物活性，如：酶活性、影响离子运转等，但对于抗氧化活性还未见报道。我国水母资源丰富，从海南岛、广东、山东，一直到辽宁沿海均有分布，水母大量存在时，它将干扰人们在海上的几乎所有活动，如游泳，养渔业，更重要的是它伤及人的身体，如果被它刺到，能产生多种症状，包括疼痛、皮肤蛰痕、水肿、神经抑制、心跳停止、麻痹、甚至死亡。但对水母资源的利用，现阶段只是经简单加工后，作为食品，附加值不高。所以有必要对水母蛋白进行研究，使水母这种低值生物资源获得高值化利用。
发明内容
本发明的目的是利用丰富的水母资源，从水母中分离出具有抗氧化活性的蛋白及分析水母蛋白的应用，使水母这种低值生物资源获得高值化利用。
为实现上述目的，本发明采用的技术方案为：分离得到了两类具有抗氧化活性的水母蛋白，第一类的分子量大于800K，第二类的分子量小于30K。(根据葡聚糖凝胶的排阻分子量来初步确定水母蛋白的分子量)
这两类水母蛋白的分离工艺步骤为：
1)将称量的水母均匀绞碎后，细胞破碎，加入0.5-5倍的重量/体积比的磷酸缓冲溶液中，放入2-6℃下，浸泡0.5-2h；
2)在4℃下，转速10000-20000rpm(相对离心力9160-25480g)，离心10-30min，取上清液；残渣用0.5-3倍的重量/体积比的磷酸缓冲溶液(5-2.0mM，PH4-8)二次浸取，在4℃下，浸泡0.5-2h；再在4℃下，转速10000-20000rpm(相对离心力9160-25480g)，离心10-30min；合并两次离心的上清液；
3)用考马斯亮蓝法，以牛血清白蛋白为标准，测定合并的上清液中水母蛋白的浓度；
4)用凝胶过滤层析法，将2)中的合并的上清液分离，得到两类水母蛋白；
第一类蛋白的分子量大于800K，等电点PI在3-9，于百分饱和度30-60％的硫酸铵溶液中沉淀；
第二类蛋白的分子量小于30K，等电点PI在4-8，于百分饱和度0-30％的硫酸铵溶液中沉淀；
所获得的两类蛋白的氨基酸质量百分组成如下：
     表1  两类蛋白的氨基酸组成(％)
氨基酸种类 第一类蛋白 第二类蛋白
天门冬氨酸(Asp) 7.61 8.43
苏氨酸(THR) 4.12 3.89
丝氨酸(SER) 2.52 2.62
色氨酸(TRP) 3.23 3.43
谷氨酸(GLU) 13.29 13.15
甘氨酸(GLY) 13.09 12.18
丙氨酸(ALA) 5.35 4.86
胱氨酸(CYS) 11.00 11.18
缬氨酸(VAL) 5.23 4.99
蛋氨酸(MET) 3.85 3.89
异亮氨酸(ILE) 3.06 3.11
亮氨酸(LEU) 3.85 3.82
酪氨酸(TYR) 2.06 2.07
苯丙氨酸(PHE) 4.19 4.12
赖氨酸(LYS)   4.19     4.20
组氨酸(HIS)   0.50     0.65
精氨酸(ARG)   6.02     6.09
脯氨酸(PRO)   5.78     6.09
总氨基酸   98.94     98.77
所述水母为新鲜水母或置于-80～-20℃的低温下保存的新鲜水母；磷酸缓冲溶液的浓度5-20mM，PH4-8。
这两种蛋白能够抑制超氧阴离子自由基(O2 -)、羟自由基(OH)的产生，防止红细胞因过氧化氢氧化溶血和肝脂质过氧化。
本发明具有如下优点：
1)抗氧化活性高。本发明水母蛋白抗氧化活性高，可作为抗衰老药物的药源，同时也为天然食品添加剂的研制提供新途径。
2)无毒害。本发明水母蛋白属于天然抗氧化剂，对人、畜无毒害。
3)生产成本低。本发明水母蛋白利用了水母这种丰富的海洋生物资源，为水母这种低值资源获得高值化发展提供了新的途径。
附图说明
图1A～C为葡聚糖凝胶分离水母蛋白洗脱体积和吸光度关系曲线；其中，图1A：葡聚糖凝胶SephadexG-100分离水母蛋白；图1B：葡聚糖凝胶SephadexG-200分离第一类水母蛋白；图1C：葡聚糖凝胶SephadexG-50分离第二类水母蛋白；
图2A～B为两类蛋白的红外光谱图；图2A：第一类蛋白的红外谱图；图2B：第二类蛋白的红外谱图；
图3水母蛋白的硫酸铵(分级)沉淀曲线；第一类蛋白分布于百分饱和度30％60％的硫酸铵沉淀中；第二类蛋白分布于百分饱和度0-30％的硫酸铵沉淀中。
具体实施方式
本发明的保护范围不仅局限于下列实施例中。
一、水母蛋白分离的实施例：
实施例1
(1)将一定量的水母用超声波破碎仪破碎，加入0.5倍的重量/体积比的5mM，pH4的磷酸缓冲溶液(PB)中，放入2℃下，浸泡0.5h；
(2)在4℃下，转速10000rpm，离心30min，取上清液；残渣用0.5倍的重量/体积比的5mM，pH4的磷酸缓冲溶液(PB)二次浸取，在4℃下，浸泡0.5h；再在4℃下，转速10000rpm，离心30min合并两次离心的上清液；
(3)用考马斯亮兰染色法(该法选自《蛋白质分子基础》，陶慰孙等编，高等教育出版社)，以牛血清白蛋白为标准，测水母蛋白在595nm处的吸光度(A595)，根据朗伯比尔定律，进而算出上清液中水母蛋白的浓度(Cmg/ml)。
(4)用凝胶过滤层析法(该法选自《蛋白质分子基础》，陶慰孙等编，高等教育出版社)，选用凝胶SephadexG-100，将(3)中的合并的上清液分离，得到两类水母蛋白，洗脱液为50mM，PH6的磷酸缓冲溶液。第一类蛋白的分子量大于800K(用SephadexG-200对其分离，洗脱体积与空体积相当，SephadexG-200的排阻分子量为800K)，第二类蛋白的分子量小于30K(用SephadexG-50对其分离，洗脱体积大于空体积，SephadexG-50的排阻分子量为30K)。
实施例2
(1)将一定量的水母用超声波破碎仪破碎，加入2.0倍的重量/体积比的10mM，pH6的磷酸缓冲溶液(PB)中，放入4℃下，浸泡1h；
(2)在4℃下，转速15000rpm，离心20min，取上清液；残渣用1.5倍的重量/体积比的10mM，pH6的磷酸缓冲溶液(PB)二次浸取，在4℃下，浸泡1h；再在4℃下，转速15000rpm，离心20min；合并两次离心的上清液；
(3)用考马斯亮兰染色法(该法选自《蛋白质分子基础》，陶慰孙等编，高等教育出版社)，以牛血清白蛋白为标准，测水母蛋白在595nm处的吸光度(A595)，根据朗伯比尔定律，进而算出上清液中水母蛋白的浓度(Cmg/ml)。
(4)用凝胶过滤层析法(该法选自《蛋白质分子基础》，陶慰孙等编，高等教育出版社)，选用凝胶SephadexG-100，将(3)中的合并的上清液分离，得到两类水母蛋白，洗脱液为50mM，PH6的磷酸缓冲溶液。第一类蛋白的分子量大于800K(用SephadexG-200对其分离，洗脱体积与空体积相当，SephadexG-200的排阻分子量为800K)，第二类蛋白的分子量小于30K(用SephadexG-50对其分离，洗脱体积大于空体积，SephadexG-50的排阻分子量为30K)。
实施例3
(1)将一定量的水母用超声波破碎仪破碎，加入5.0倍的重量/体积比的20mM，pH8的磷酸缓冲溶液(PB)中，放入4℃下，浸泡2h；
(2)在4℃下，转速20000rpm，离心10min，取上清液；残渣用1.5倍的重量/体积比的20mM，pH8的磷酸缓冲溶液(PB)二次浸取，在4℃下，浸泡1h；再在4℃下，转速20000rpm，离心10min；合并两次离心的上清液；
(3)用考马斯亮兰染色法(该法选自《蛋白质分子基础》，陶慰孙等编，高等教育出版社)，以牛血清白蛋白为标准，测水母蛋白在595nm处的吸光度(A595)，根据朗伯比尔定律，进而算出上清液中水母蛋白的浓度(Cmg/ml)。
(4)用凝胶过滤层析法(该法选自《蛋白质分子基础》，陶慰孙等编，高等教育出版社)，选用凝胶SephadexG-100，将(3)中的合并的上清液分离，得到两类水母蛋白，洗脱液为50mM，PH6的磷酸缓冲溶液。第一类蛋白的分子量大于800K(用SephadexG-200对其分离，洗脱体积与空体积相当，SephadexG-200的排阻分子量为800K)，第二类蛋白的分子量小于30K(用SephadexG-50对其分离，洗脱体积大于空体积，SephadexG-50的排阻分子量为30K)。
表2：葡聚糖凝胶SephadexG-100分离水母蛋白
 柱直径(mm)  有效柱长(mm)  空体积Vo(ml)  进样量(ml)  流速(ml/h)  洗脱体积Ve1(ml)  洗脱体积Ve2(ml)  分辨率ρ*
 16  170  14  2  9  13.2  35.8  1.56
 16  170  14  2  19  12.4  35.4  1.53
 16  170  14  2  30  13.4  37.8  1
 16  370  28  2  22  35.0  73.2  0.71
 16  370  28  2  28  37.1  71  0.61
 16  370  28  2  31  44.2  89.6  0.81
 10  370  14  1  10  14.6  35.2  1.6
 10  370  14  1  14  16.7  35.5  1.2
  10   370   14   1   21   16.8   35.8   1.16
  10   750   29   1   9   第一峰消失   66.2   -
  10   750   29   1   15   28.2   64.4   1.80
  10   750   29   1   20   29.3   64.2   1.04
如图1A～C所示，葡聚糖凝胶分离水母蛋白洗脱体积和吸光度关系曲线。其中，图1A为葡聚糖凝胶SephadexG-100分离水母蛋白；图1B为葡聚糖凝胶SephadexG-200分离第一类水母蛋白；图1C为葡聚糖凝胶SephadexG-50分离第二类水母蛋白。
二、水母蛋白抗氧化活性的实施例：
1.水母蛋白对超氧阴离子自由基的清除作用
采用吩嗪硫酸甲酯-NADH体系产生自由基。反应体系为3.0ml的Triss-HCl缓冲液(16mmol/L，pH8.0)，其中含有78μmol/L还原型辅酶I(NADH)，50μmol/L硝基四氮唑蓝(NBT)，10μmol/L吩嗪硫酸甲酯(PMS)，以及不同浓度的水母蛋白溶液。超氧阴离子自由基和NBT的显色反应采用分光光度法在560nm波长下测定反应液的吸光度。在空白对照实验中，用Tris-HCl缓冲液替换NADH。
实验结果以清除率表示：清除率％＝(A-A1)/(A-A0)×100％；
实验结果参照表3所示，其中，A：空白对照值，A1：加入样品后的吸光值，A0：参比；
表3：水母蛋白对超氧自由基的清除作用
第一类蛋白  第二类蛋白
浓度(μg/mL) 吸光度A560 清除率％  浓度(μg/mL) 吸光度A560 清除率％
3.13  0.748±0.004  27.86±0.41  0.47  0.564±0.016  36.22±1.80
6.27  0.616±0.031  40.60±3.00  1.87  0.347±0.008  65.50±0.77
9.40  0.234±0.019  72.97±2.21  2.81  0.113±0.003  86.92±0.33
12.54  0.214±0.025  79.41±2.39  3.75  0.079±0.001  92.22±0.07
18.81  0.105±0.003  89.87±0.27  7.49  0.019±0.001  98.17±0.07
25.07  0.054±0.014  94.79±1.36  14.99  0.012±0.001  98.86±0.07
31.34  0.040±0.023  96.19±2.25  18.73  0.012±0.002  98.86±0.14
空白对照：1.037(第一类蛋白)，1.009(第二类蛋白)
结果分析：两类蛋白对超氧阴离子具有很强的清除作用，清除作用对浓度具有依赖性，即随着浓度的提高，清除作用增强，EC50分别为6.12μg/ml，0.88μg/ml，远低于BHA，BHT，维生素E，它们的EC50分别为31μg/ml，61μg/ml，88μg/ml(MünirOktay，
Figure C20041005048100091
Gülin and .
Figure C20041005048100092
Determination of in vitro antioxidantactivity of fennel(Foeniculum vulgare)seed extracts，Lebensmittel-Wissenschaftund-Technologie，Volume 36，Issue 2，March 2003，Pages 263-271)。
2.水母蛋白对羟自由基的清除作用
·OH是由EDTANa2-Fe(II)-H2O2体系产生，由于·OH可特异地使番红花红色褪色，根据褪色程度用比色法来衡量·OH的含量。反应体系中含有pH7.4的磷酸缓冲液1.5ml，番红花(260μg/ml)0.2ml，3％的H2O2 0.8ml，EDTANa2-Fe(II)0.7ml，一定量不同浓度的水母蛋白溶液，混合均匀后于37℃水浴保温30min，然后于520nm处测吸光度A值。空白组以蒸镏水代替样品液，对照组以蒸馏水代替样品液和EDTANa2-Fe(II)，反应总体积为4.0ml。
实验结果以清除率表示：清除率％＝(A样品-A空白)/(A对照-A空白)×100％：实验结果参照表4所示；
表4：水母蛋白对羟自由基的清除作用
 第一类蛋白  第二类蛋白
 浓度(μg/mL) 吸光度A560 清除率％  浓度(μg/mL) 吸光度A560 清除率％
 1.12  0.022±0.001  3.46±0.17  0.62  0.109±0.014  17.17±2.23
 2.25  0.106±0.004  16.69±0.67  1.25  0.294±0.011  46.22±1.67
 4.49  0.130±0.006  20.55±1.00  2.50  0.469±0.011  73.78±1.67
 9.98  0.166±0.001  26.14±0.17  4.99  0.564±0.004  88.74±0.56
 17.96  0.230±0.006  36.14±1.00  6.24  0.575±0.001  90.47±0.11
 22.46  0.289±0.004  45.51±0.67  9.99  0.600±0.003  94.49±0.44
 44.91  0.436±0.004  68.58±0.56
 空白对照：0.635
结果分析：两类蛋白对羟自由基具有清除作用，第二类蛋白的清除作用很强，浓度为9.99μg/ml时，清除率达到94.49％。清除作用对浓度具有依赖性，即随着浓度的提高，清除作用增强。两类蛋白对羟自由基的EC50分别为45.42μg/ml，1.52μg/ml，远低于甘露醇和维生素E，它们的EC50分别为4536μg/ml，1907μg/ml。
3.水母蛋白对H2O2诱导的红细胞氧化溶血实验
健康Wistar大鼠眼眶取血，制成抗凝血，1000×g离心10min，移弃血浆和白细胞，向沉淀的红细胞中加入等渗的生理盐水，混匀，1000×g离心10min，弃上清液，如此反复2次洗涤红细胞，将红细胞制成0.5％的悬浮液。取红细胞悬浮液1ml，加不同浓度的水母蛋白溶液，最后加100mmol/l的H2O2，混匀，37℃温浴60min，用生理盐水稀释5倍，1000×g离心10min，上清液于415nm处测定吸光度值。实验结果参照表5所示；
表5：水母蛋白对H2O2诱导的红细胞氧化溶血作用
第一类蛋白  第二类蛋白
浓度(μg/mL) 吸光度A560 抑制率％  浓度(μg/mL) 吸光度A560 抑制率％
1.68  0.337±0.002  68.88±0.17  0.47  0.170±0.017  84.35±1.63
3.37  0.242±0.004  77.65±0.68  0.94  0.158±0.016  85.36±1.50
6.74  0.204±0.004  81.21±0.68  1.87  0.153±0.008  85.92±0.72
13.47  0.177±0.001  83.66±0.09  2.81  0.147±0.007  86.43±0.65
33.68  0.169±0.004  84.40±0.68  3.75  0.134±0.003  87.62±0.26
67.37  0.159±0.004  85.36±0.68  5.62  0.133±0.001  87.77±0.07
结果分析：两类蛋白对H2O2诱导的红细胞氧化溶血具有很强的抑制作用，第一类蛋白的浓度为6.74μg/ml时，抑制率达到81.21％，第二类蛋白的浓度为0.47μg/ml时，抑制率达到84.35％，抑制率对浓度的依赖性不是很强，随着浓度的提高，抑制率变化不是很明显。
4.水母蛋白对大鼠肝匀浆脂质过氧化的作用
健康Wistar大鼠，颈椎脱臼致死，迅速分离肝组织，用冰冷的Tris-HCl缓冲液(20mmol/l)制成20％的匀浆，9810×g离心20min，沉淀再洗一次并离心，合并上清液。在0.2mol/l Tris-HCl缓冲液中(pH7.4)加含肝匀浆液0.2ml，FeSO410μmol/l，抗坏血酸0.12mmol/l及不同浓度的水母蛋白溶液，在37℃温浴60min，保温结束后加入20％三氯乙酸(TCA)1.0ml终止反应。混匀，再加入0.67％硫代巴比妥酸(TBA)1.5ml，沸水浴加热15min。离心去除蛋白质沉淀后，于532nm测定吸光度值。实验结果参照表6所示。
表6：水母蛋白对大鼠肝匀浆脂质过氧化作用
第一类蛋白  第二类蛋白
浓度(μg/mL) 吸光度A560 清除率％  浓度(μg/ml) 吸光度A560 清除率％
6.74  0.288±0.001  21.88±0.19  1.87  0.270±0.003  26.63±0.77
13.47  0.212±0.002  42.53±0.58  3.75  0.194±0.002  47.42±0.58
26.95  0.134±0.003  63.59±0.77  7.50  0.164±0.001  55.43±0.38
40.42  0.109±0.002  70.52±0.58  11.24  0.143±0.004  61.28±0.96
53.89  0.097±0.001  73.78±0.19  14.98  0.130±0.003  64.7±0.76
67.37  0.070±0.002  81.11±0.58  18.73  0.104±0.001  71.88±0.19
结果分析：两类蛋白对肝匀浆脂质过氧化具有明显的抑制作用，EC50分别为18.74μg/ml，5.74μg/ml，两类蛋白对抑制脂质过氧化均表现出浓度依赖性。

Claims (5)

1.从水母中分离的具有抗氧化活性的蛋白，其特征在于：
其分离步骤为，
1)将称量的水母均匀绞碎后，细胞破碎，加入0.5-5倍的重量/体积比的磷酸缓冲溶液中，放入2-6℃下，浸泡0.5-2h；
2)在4℃下，转速10000-20000rpm，离心10-30min，取上清液；残渣用0.5-3倍的重量/体积比的磷酸缓冲溶液二次浸取，在4℃下，浸泡0.5-2h；再在4℃下，转速10000-20000rpm，离心10-30min；合并两次离心的上清液；
3)用凝胶过滤层析法，用SephadexG-50分离2)中的合并的上清液，得到水母蛋白；
蛋白的分子量小于30K，等电点PI在4-8，于百分饱和度0-30％的硫酸铵溶液中沉淀；蛋白质量百分组成：天门冬氨酸  8.43％，苏氨酸  3.89％，丝氨酸  2.62％，色氨酸  3.43％，谷氨酸  13.15％，甘氨酸  12.18％，丙氨酸4.86％，胱氨酸  11.18％，缬氨酸  4.99％，蛋氨酸  3.89％，异亮氨酸  3.11％，亮氨酸  3.82％，酪氨酸  2.07％，苯丙氨酸  4.12％，赖氨酸  4.20％，组氨酸0.65％，精氨酸  6.09％，脯氨酸  6.09％，总氨基酸  98.77％。
2.按照权利要求1所述的从水母中分离的具有抗氧化活性的蛋白，其特征在于：所述水母为新鲜水母或置于-80～-20℃的低温下保存的新鲜水母。
3.按照权利要求1所述的从水母中分离的具有抗氧化活性的蛋白，其特征在于：磷酸缓冲溶液的浓度为5-20mM，PH为4-8。
4.一种权利要求1所述的蛋白的应用，其特征在于：所述蛋白在制备抑制超氧阴离子自由基O2 -.或羟自由基OH的产生的药物中的应用。
5.一种权利要求1所述的蛋白的应用，其特征在于：所述蛋白在防止红细胞因过氧化氢氧化溶血或肝脂质过氧化的药物中的应用。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101130572B (zh) * 2007-08-08 2010-11-24 中国科学院海洋研究所 一种从海蜇触手中提取毒素的方法
US8796213B2 (en) * 2008-03-11 2014-08-05 Qunicy Bioscience, LLC Apoaequorin-containing compositions and methods of using same
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Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2003321497A (ja) * 2002-04-24 2003-11-11 Ryoyo Sangyo Kk クラゲコラーゲン
JP2004099513A (ja) * 2002-09-09 2004-04-02 Toshiba Corp クラゲのコラーゲン回収方法及びクラゲのコラーゲン回収システム

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2003321497A (ja) * 2002-04-24 2003-11-11 Ryoyo Sangyo Kk クラゲコラーゲン
JP2004099513A (ja) * 2002-09-09 2004-04-02 Toshiba Corp クラゲのコラーゲン回収方法及びクラゲのコラーゲン回収システム

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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