CN118955756A - 一种海参多糖制备方法及过滤装置 - Google Patents

一种海参多糖制备方法及过滤装置 Download PDF

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Abstract

本发明提供了一种海参多糖制备方法及过滤装置，制备方法包括海参性腺剪碎，海参性腺剪碎至0.2‑0.5cm；酶解，复合酶：纤维素酶、水解蛋白酶和木瓜蛋白酶按照2‑4:1:1的重量比混合；海参性腺与复合酶的重量比为0.05‑0.2:100；酶解温度为40‑60℃，酶解时间为3‑6h；分离纯化，采用过滤装置进行。过滤装置包括过滤罐和管式过滤器。该制备方法中，复合酶使得位于细胞间质中的海参多糖能够有效分离，利于后续的分离纯化，提高分离效果和过滤效率，保证海参多糖的生物活性。该过滤装置根据海参性腺的粒径及酶解及碱解过程进行设置，保证膜具有持续的高通量，为海参性腺的综合开发利用提供技术支持。

Description

一种海参多糖制备方法及过滤装置
技术领域
本发明涉及海参多糖提取技术领域，具体涉及一种海参多糖制备方法及过滤装置。
背景技术
海参性腺中富含多种生物活性物质，这些物质具有抗氧化、抗凝血、抗肿瘤等性能。在海参深加工过程中，海参性腺通常作为废弃物丢掉，导致资源浪费和环境污染。随着人们资源利用意识的增强，对海参性腺的研究也有了重要的进展。
海参性腺中，多糖是一类主要的物质，目前对多糖的提取过程主要包括海参性腺粉碎、水浸提和/或超声提取和/或酶提取、过滤和干燥；通过粉碎，能够提高提取率，但是相应的提取液中的杂质含量会提高；在过滤过程中，由于杂质量高，使过滤系统的负担变大，影响过滤效率；另外，目前的手段提取过程中容易破坏有效成分，从而影响海参多糖的抗氧化活性。
可见，提供一种海参性腺多糖的提取方法以保证其抗氧化活性具有重要意义。
发明内容
针对现有技术的上述不足，本发明提供了一种海参多糖制备方法及过滤装置，该制备方法包括海参性腺剪碎、酶解、碱解、分离纯化、干燥；该过滤装置包括过滤罐和与过滤罐连接的管式过滤器。本发明提供的制备方法中，采用的复合酶包括纤维素酶、水解蛋白酶和木瓜蛋白酶，通过复合酶的设置，使得位于细胞间质中的海参多糖能够有效分离，且能够对蛋白质水解，利于后续对多糖的分离纯化，提高分离效果，提高过滤效率，保证海参多糖的生物活性。本发明提供的过滤装置，根据海参性腺的粒径及酶解及碱解过程进行设置，保证膜具有持续的高通量，提高过滤效率和过滤效果，为海参性腺的综合开发利用提供技术支持。
本发明的技术方案如下：
一种海参多糖制备方法，包括海参性腺剪碎、酶解、碱解、分离纯化、干燥；
剪碎，海参性腺剪碎至0.2-0.5cm；
酶解，复合酶：纤维素酶、水解蛋白酶和木瓜蛋白酶按照2-4:1:1的重量比混合；海参性腺与复合酶的重量比为0.05-0.2:100；酶解温度为40-60℃，酶解时间为3-6h；
分离纯化，采用过滤装置进行。
本发明的方法中，将碱解和酶解联用，更有效地提取糖链。
优选的，海参性腺剪碎至0.2-0.5cm，得到碎片；剪切处理，能够尽可能减少细胞破碎，进而减少液体中的杂质；将碎片与水按照3-10:100的重量比混合，得到混悬液。
优选的，酶解过程在振荡混合装置中进行；酶解过程中，碎片与酶解液充分混合，并在控温的条件下进行酶解；振荡混合装置与酶解过程配合，能够实时保证酶解液与碎片结合，提高酶解效率。
优选的，所述振荡混合装置，包括水浴箱和位于水浴箱内的酶解箱，所述酶解箱的内底部安装有曝气器，曝气器向酶解箱内吹入气体，使酶解箱内的酶解液及原料翻转，提高混合效率，进而促进酶解；
在水浴箱的两个相对侧面上分别固定有电动推杆，电动推杆的自由端分别与酶解箱的两个相对侧面固定连接；
电动推杆的设置，能够带动酶解箱在水浴箱内做往复运动，使位于其内部的液体进行往复运动，伴随曝气器的作用，使酶解箱内的液体呈多方位运动，提高混合效果，进而提高酶解效率；另外，水浴箱能够保证水浴温度，从而提高酶解效果。
优选的，碱解，使用浓度为1-2%的氢氧化钠溶液边搅拌边碱解；碱解后，使用浓度为2%的盐酸调节pH至8.0。
优选的，海参性腺与氢氧化钠溶液的重量比为1:100-150，反应温度为30-50℃，反应时间为3h。
优选的，将冷冻干燥至恒重后的多糖粉碎，过80目筛，即得到高品质的海参性腺多糖。
一种过滤装置，包括过滤罐和与过滤罐连接的管式过滤器；
所述过滤罐，包括罐体，在罐体的内部安装有过滤板；
所述罐体内安装有布液管，布液管与进料口连接；所述布液管位于过滤板的上方；
在罐体内安装有漏斗形导液板，导液板的上开口直径大于下开口直径；所述导液板位于布液管和过滤板之间，导液板上开设有通孔A；
在罐体的顶部安装有电机，电机连接有搅拌杆；所述搅拌杆依次穿过导液板的上开口和下开口，且其底端连接有排液板；
所述排液板为下开口的喇叭形，在排液板上设有通孔B；
碱解液中，海参多糖和海参性腺均以颗粒状存在，其中，海参性腺的粒径在0.2-0.5cm之间，海参多糖的粒径小于0.3mm；将碱解液自布液管排出后，碱解液中的液体及海参多糖在沿导液板移动时，海参多糖和液体会直接穿过通孔A、通孔B及过滤板，进入过滤板的下方；而大粒径的海参性腺会向导液板的下开口移动，并顺着下开口落到排液板上，在电机的作用下，海参性腺沿排液板汇聚到过滤板的边缘处，位于排液板下方的过滤板持续处于高流通量的状态，提高过滤效率；
在罐体上设有出料口，出料口与管式过滤器进口连接；
经过过滤罐处理，能够避免大粒径海参性腺进入管式过滤器中，进而减少管式过滤器堵塞，进一步提高过滤效率和过滤效果。
优选的，为进一步避免过滤板堵塞，使过滤板保持高通量，在排液板的下方安装有疏散耙，所述疏散耙的底端与过滤板的顶面贴合；通过电机作用，使疏散耙对过滤板顶面持续梳理，减少过滤板堵塞，保持过滤板的通量。
优选的，所述罐体内安装有排液管，排液管与泵A连接，泵A与进料口连接；所述排液管位于过滤板的下方，且靠近过滤板；经过滤板过滤后，海参多糖和液体位于过滤板的下方，静置后，海参多糖沉淀；当导液板、排液板及过滤板有一定的堵塞时，使用泵A将位于过滤板下方的液体吸入布液管中，在不增加液体量的情况下，能够对导液板、排液板和过滤板清洗，提高过滤效率。
相对于现有技术，本发明的有益效果在于：
1、本发明提供的制备方法，控制海参性腺剪切后的粒径在0.2-0.5cm之间，既能够有效避免细胞破碎，减少杂质进入后续处理中，又能够避免后续过滤处理负荷过重，提高过滤效率，使得制备方法更加简单、易控。
2、本发明提供的制备方法中，采用的复合酶包括纤维素酶、水解蛋白酶和木瓜蛋白酶，通过复合酶的设置，使得位于细胞间质中的海参多糖能够有效分离，且能够对蛋白质水解，利于后续对多糖的分离纯化，提高分离效果，提高过滤效率，保证海参多糖的生物活性。
3、本发明提供的过滤装置，根据海参性腺的粒径及酶解及碱解过程进行设置，保证膜具有持续的高通量，提高过滤效率和过滤效果，为海参性腺的综合开发利用提供技术支持。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案，下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍，显而易见地，对于本领域普通技术人员而言，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1为过滤装置结构示意图。
图2为振荡混合装置的结构示意图。
图3为实施例3不同浓度海参性腺多糖的抗氧化活性结果。
图中，1-过滤罐，101-罐体，102-过滤板，103-布液管，104-进料口，105-导液板，106-出料口，2-管式过滤器，3-通孔A，4-电机，5-搅拌杆，6-排液板，7-通孔B，8-疏散耙，9-排液管，10-泵A，11-水浴箱，12-酶解箱，13-曝气器，14-电动推杆。
具体实施方式
为了使本技术领域的人员更好地理解本发明中的技术方案，下面将结合本发明的实施例，对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都应当属于本发明保护的范围。
实施例1
本实施例提供了一种过滤装置，如图1所示，该过滤装置包括过滤罐1和与过滤罐1连接的管式过滤器2；
过滤罐1，包括罐体101，在罐体101的内部安装有过滤板102；
罐体101内安装有布液管103，布液管103与进料口104连接；布液管103位于过滤板102的上方；
在罐体101内安装有漏斗形导液板105，导液板105的上开口直径大于下开口直径；导液板105位于布液管103和过滤板102之间，导液板105上开设有通孔A3；
在罐体101的顶部安装有电机4，电机4连接有搅拌杆5；搅拌杆5依次穿过导液板105的上开口和下开口，且其底端连接有排液板6；
排液板6为下开口的喇叭形，在排液板6上设有通孔B7；
碱解液中，海参多糖和海参性腺均以颗粒状存在，其中，海参性腺的粒径在0.2-0.5cm之间，海参多糖的粒径小于0.3mm；将碱解液自布液管103排出后，碱解液中的液体及海参多糖在沿导液板105移动时，海参多糖和液体会直接穿过通孔A3、通孔B7及过滤板102，进入过滤板102的下方；而大粒径的海参性腺会向导液板105的下开口移动，并顺着下开口落到排液板6上，在电机4的作用下，海参性腺沿排液板6汇聚到过滤板102的边缘处，位于排液板6下方的过滤板102持续处于高流通量的状态，提高过滤效率；
在罐体101上设有出料口106，出料口106与管式过滤器2进口连接；
经过过滤罐1处理，能够避免大粒径海参性腺进入管式过滤器2中，进而减少管式过滤器2堵塞，进一步提高过滤效率和过滤效果；
为进一步避免过滤板102堵塞，使过滤板102保持高通量，在排液板6的下方安装有疏散耙8，疏散耙8的底端与过滤板102的顶面贴合；通过电机4作用，使疏散耙8对过滤板102顶面持续梳理，减少过滤板102堵塞，保持过滤板102的通量；
在罐体101内安装有排液管9，排液管9与泵A10连接，泵A10与进料口104连接；排液管9位于过滤板102的下方，且靠近过滤板102；经过滤板102过滤后，海参多糖和液体位于过滤板102的下方，静置后，海参多糖沉淀；当导液板105、排液板6及过滤板102有一定的堵塞时，使用泵A10将位于过滤板102下方的液体吸入布液管103中，在不增加液体量的情况下，能够对导液板105、排液板6和过滤板102清洗，提高过滤效率。
实施例2
本实施例提供了一种振荡混合装置，如图2所示，该振荡混合装置，包括水浴箱11和位于水浴箱11内的酶解箱12，酶解箱12的内底部安装有曝气器13，曝气器13向酶解箱12内吹入气体，使酶解箱12内的酶解液及原料翻转，提高混合效率，进而促进酶解；
在水浴箱11的两个相对侧面上分别固定有电动推杆14，电动推杆14的自由端分别与酶解箱12的两个相对侧面固定连接；
电动推杆14的设置，能够带动酶解箱12在水浴箱11内做往复运动，使位于其内部的液体进行往复运动，伴随曝气器13的作用，使酶解箱12内的液体呈多方位运动，提高混合效果，进而提高酶解效率；另外，水浴箱11能够保证水浴温度，从而提高酶解效果。
实施例3
一种海参多糖制备方法，具体过程如下：
（1）剪碎：
海参性腺剪碎至0.4cm，得到碎片；剪切处理，能够尽可能减少细胞破碎，进而减少液体中的杂质；将碎片与水按照7:100的重量比混合，得到混悬液；
水为符合饮用水卫生标准的饮用水；海参性腺为熟化后的海参性腺；
（2）酶解：
复合酶：纤维素酶、水解蛋白酶和木瓜蛋白酶按照3:1:1的重量比混合；海参性腺与复合酶的重量比为0.13:100；酶解温度为50℃，酶解时间为4.5h；
酶解过程在实施例2的振荡混合装置中进行；酶解过程中，碎片与酶解液充分混合，并在控温的条件下进行酶解；振荡混合装置与酶解过程配合，能够实时保证酶解液与碎片结合，提高酶解效率；
酶解后，在90℃条件下灭酶，冷却降温；
（3）碱解：
使用浓度为1.5%的氢氧化钠溶液边搅拌边碱解，海参性腺与氢氧化钠溶液的重量比为1:130，反应温度为40℃，反应时间为3h；
碱解后，使用浓度为2%的盐酸调节pH至8.0，得到碱解液；
（4）分离纯化：
采用实施例1的过滤装置对碱解液进行分离纯化；
其中，管式过滤器中安装有超滤膜，通过超滤膜过滤，得到海参性腺多糖；在常温下利用超滤膜的选择透过性对海参性腺多糖进行有效的过滤，以膜两侧的压力为动力实现一定分子量的原液和海参多糖的分离纯化，已达到除杂的效果；
（5）干燥：
将冷冻干燥至恒重后的多糖粉碎，过80目筛，即得到高品质的海参性腺多糖。
海参性腺也有很高的营养价值，尤其以海参性腺多糖为主，然而在加工海参过程中，海参性腺未被充分利用。本发明的突出特点是使海参性腺得到有效利用，提取出海参性腺多糖，并对其抗氧化性进行研究，以为海参性腺的综合开发利用提供技术支持。加工工程中的工艺设置合理、简单、成本低，产品绿色、无污染。
实施例4
一种海参多糖制备方法，具体过程如下：
（1）剪碎：
海参性腺剪碎至0.3cm，得到碎片；剪切处理，能够尽可能减少细胞破碎，进而减少液体中的杂质；将碎片与水按照3:100的重量比混合，得到混悬液；
水为符合饮用水卫生标准的饮用水；海参性腺为熟化后的海参性腺；
（2）酶解：
复合酶：纤维素酶、水解蛋白酶和木瓜蛋白酶按照2:1:1的重量比混合；海参性腺与复合酶的重量比为0.05:100；酶解温度为40℃，酶解时间为3h；
酶解过程在实施例2的振荡混合装置中进行；酶解过程中，碎片与酶解液充分混合，并在控温的条件下进行酶解；振荡混合装置与酶解过程配合，能够实时保证酶解液与碎片结合，提高酶解效率；
酶解后，在100℃条件下灭酶，冷却降温；
（3）碱解：
使用浓度为1%的氢氧化钠溶液边搅拌边碱解，海参性腺与氢氧化钠溶液的重量比为1:100，反应温度为30℃，反应时间为3h；
碱解后，使用浓度为2%的盐酸调节pH至8.0，得到碱解液；
（4）分离纯化：
采用实施例1的过滤装置对碱解液进行分离纯化；
其中，管式过滤器中安装有超滤膜，通过超滤膜过滤，得到海参性腺多糖；在常温下利用超滤膜的选择透过性对海参性腺多糖进行有效的过滤，以膜两侧的压力为动力实现一定分子量的原液和海参多糖的分离纯化，已达到除杂的效果；
（5）干燥：
将冷冻干燥至恒重后的多糖粉碎，过80目筛，即得到高品质的海参性腺多糖。
实施例5
一种海参多糖制备方法，具体过程如下：
（1）剪碎：
海参性腺剪碎至0.3cm，得到碎片；剪切处理，能够尽可能减少细胞破碎，进而减少液体中的杂质；将碎片与水按照10:100的重量比混合，得到混悬液；
水为符合饮用水卫生标准的饮用水；海参性腺为熟化后的海参性腺；
（2）酶解：
复合酶：纤维素酶、水解蛋白酶和木瓜蛋白酶按照4:1:1的重量比混合；海参性腺与复合酶的重量比为0.2:100；酶解温度为60℃，酶解时间为6h；
酶解过程在实施例2的振荡混合装置中进行；酶解过程中，碎片与酶解液充分混合，并在控温的条件下进行酶解；振荡混合装置与酶解过程配合，能够实时保证酶解液与碎片结合，提高酶解效率；
酶解后，在90℃条件下灭酶，冷却降温；
（3）碱解：
使用浓度为2%的氢氧化钠溶液边搅拌边碱解，海参性腺与氢氧化钠溶液的重量比为1:150，反应温度为50℃，反应时间为3h；
碱解后，使用浓度为2%的盐酸调节pH至8.0，得到碱解液；
（4）分离纯化：
采用实施例1的过滤装置对碱解液进行分离纯化；
其中，管式过滤器中安装有超滤膜，通过超滤膜过滤，得到海参性腺多糖；在常温下利用超滤膜的选择透过性对海参性腺多糖进行有效的过滤，以膜两侧的压力为动力实现一定分子量的原液和海参多糖的分离纯化，已达到除杂的效果；
（5）干燥：
将冷冻干燥至恒重后的多糖粉碎，过80目筛，即得到高品质的海参性腺多糖。
试验：
抗氧化活性的测定主要是通过羟基自由基的清除、超氧阴离子自由基的清除和DPPH自由基的清除等方法进行评测，对自由基清除能力越强，则表明抗氧化能力越强。
本试验中，通过对羟基自由基、超氧阴离子自由基和DPPH自由基清除率研究海参性腺多糖的抗氧化活性。
试验过程如下：
①对DPPH自由基的清除试验
精密称取12.5mg DPPH标准品，用无水乙醇溶解并定容至250ml，得到DPPH溶液；
取海参性腺多糖，分别配制成浓度为0、20、40、60、80、100µg/mL的海参性腺多糖溶液；
样品溶液：取0µg/mL的海参性腺多糖溶液0ml、20µg/mL的海参性腺多糖溶液0.2ml、40µg/mL的海参性腺多糖溶液0.4ml、60µg/mL的海参性腺多糖溶液0.6ml、80µg/mL的海参性腺多糖溶液0.8ml、100µg/mL的海参性腺多糖溶液1ml，同时加去氧水补足至1.00ml，分别加入5.00mL DPPH溶液，如下表1，充分混合，静置30min，于517nm处测吸光度值A；
5.00mL DPPH溶液与1.0mL无水乙醇混合后测得的吸光度A0，5.00mL无水乙醇与1.00mL样品溶液混合后测得的吸光度A1；每个样品平行测定3次，按下式计算清除率。
清除率(%)=[A0-A1]/A0×100%
式中：AO：对照组（只有DPPH溶液）的吸光度；
A1：实验组（加入样品溶液）的吸光度。
表1样品溶液设置
②对超氧阴离子自由基(O2 -)的清除试验
采用苯三酚自氧化法。具体操作如表2：取4.50mL 0.lmol/L的Tris-HCl缓冲液(pH8.2)于具塞试管中，于25℃恒温20min；加入0µg/mL的海参性腺多糖溶液0ml、20µg/mL的海参性腺多糖溶液0.2ml、40µg/mL的海参性腺多糖溶液0.4ml、60µg/mL的海参性腺多糖溶液0.6ml、80µg/mL的海参性腺多糖溶液0.8ml、100µg/mL的海参性腺多糖溶液1ml，见表2，去氧水补足，再加入0.40mL 50.0mmol/L邻苯三酚，混匀后于25℃恒温反应4min，立即加入0.10mL 8.0mol/LHCl终止反应。
以蒸馏水做参比，在320nm处测定吸光度值。每个样品平均测定3次，按下式计算清除率。
清除率(%)=[1-(A样品-A样品空白)/A空白]×100%
式中，A空白—加邻苯三酚但不加样品的吸光度；
A样品—加邻苯三酚和样品的吸光度；
A样品空白—不加邻苯三酚只加样品的吸光度。
表2对超氧阴离子自由基清除试验操作样品设置
③对羟基自由基(OH)的清除试验
利用H2O2与Fe2+反应产生OH，在体系内加入水杨酸捕捉并产生有色物质，该物质在510nm处有最大吸收。具体操作如表3：在250mL具塞锥形瓶中依次移入25.00mL 7.5mmol/LFeS04溶液和25.00mL 4%H2O2溶液，混合均匀后加入25.00mL 6mmol/L水杨酸溶液，于36-37℃恒温水浴中反应15min后于510nm处测其吸光度，此值记为A0，以A0作为对照；将A0值的测定体系分成6份，放入25mL具塞管中，每份5.00mL，依次加入0µg/mL的海参性腺多糖溶液0ml、20µg/mL的海参性腺多糖溶液0.5ml、40µg/mL的海参性腺多糖溶液1.0ml、60µg/mL的海参性腺多糖溶液1.5ml、80µg/mL的海参性腺多糖溶液2.0ml、100µg/mL的海参性腺多糖溶液2.5ml，然后加入去氧水，见表3，于36-37℃恒温水浴中反应15min，于510nm处测其吸光度，此值记为Ax。每个样品平行测定3次,计算清除率。
清除率(%)=(A0-Ax)/A0×100%
表3对羟基自由基清除试验操作样品设置
采用试验①-③的方法对实施例3得到的海参性腺多糖的抗氧化性能检测，结果见图3；结合图3可知，海参性腺多糖的浓度变化时，其对自由基的清除率会产生影响，当浓度达到100μg/mL时，对DPPH自由基的清除率达到60%，对超氧阴离子自由基的清除率达到75%，对羟基自由基的清除率达到82%；可见，本发明的海参性腺多糖，具有优异的抗氧化性能。
尽管通过参考优选实施例的方式对本发明进行了详细描述，但本发明并不限于此。在不脱离本发明的精神和实质的前提下，本领域普通技术人员可以对本发明的实施例进行各种等效的修改或替换，而这些修改或替换都应在本发明的涵盖范围内/任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内，可轻易想到变化或替换，都应涵盖在本发明的保护范围之内。因此，本发明的保护范围应以所述权利要求的保护范围为准。

Claims (10)

1.一种海参多糖制备方法，其特征在于，包括海参性腺剪碎、酶解、碱解、分离纯化、干燥；
剪碎，海参性腺剪碎至0.2-0.5cm；
酶解，复合酶：纤维素酶、水解蛋白酶和木瓜蛋白酶按照2-4:1:1的重量比混合；海参性腺与复合酶的重量比为0.05-0.2:100；酶解温度为40-60℃，酶解时间为3-6h；
分离纯化，采用过滤装置进行。
2.如权利要求1所述的海参多糖制备方法，其特征在于，海参性腺剪碎至0.2-0.5cm，得到碎片；将碎片与水按照3-10:100的重量比混合，得到混悬液。
3.如权利要求1所述的海参多糖制备方法，其特征在于，酶解过程在振荡混合装置中进行。
4.如权利要求3所述的海参多糖制备方法，其特征在于，所述振荡混合装置，包括水浴箱和位于水浴箱内的酶解箱，所述酶解箱的内底部安装有曝气器；
在水浴箱的两个相对侧面上分别固定有电动推杆，电动推杆的自由端分别与酶解箱的两个相对侧面固定连接。
5.如权利要求1所述的海参多糖制备方法，其特征在于，碱解，使用浓度为1-2%的氢氧化钠溶液边搅拌边碱解；碱解后，使用浓度为2%的盐酸调节pH至8.0。
6.如权利要求5所述的海参多糖制备方法，其特征在于，海参性腺与氢氧化钠溶液的重量比为1:100-150，反应温度为30-50℃，反应时间为3h。
7.如权利要求1所述的海参多糖制备方法，其特征在于，将冷冻干燥至恒重后的多糖粉碎，过80目筛，即得到高品质的海参性腺多糖。
8.一种过滤装置，其特征在于，包括过滤罐和与过滤罐连接的管式过滤器；
所述过滤罐，包括罐体，在罐体的内部安装有过滤板；
所述罐体内安装有布液管，布液管与进料口连接；所述布液管位于过滤板的上方；
在罐体内安装有漏斗形导液板，导液板的上开口直径大于下开口直径；所述导液板位于布液管和过滤板之间，导液板上开设有通孔A；
在罐体的顶部安装有电机，电机连接有搅拌杆；所述搅拌杆依次穿过导液板的上开口和下开口，且其底端连接有排液板；
所述排液板为下开口的喇叭形，在排液板上设有通孔B；
在罐体上设有出料口，出料口与管式过滤器进口连接。
9.如权利要求8所述的过滤装置，其特征在于，在排液板的下方安装有疏散耙，所述疏散耙的底端与过滤板的顶面贴合。
10.如权利要求8所述的过滤装置，其特征在于，所述罐体内安装有排液管，排液管与泵A连接，泵A与进料口连接；所述排液管位于过滤板的下方，且靠近过滤板。
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