CN117598987A - 一种立他司特滴眼液及其制备方法 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了一种立他司特滴眼液及其制备工艺,该立他司特滴眼液包括如下质量百分比的组分:立他司特5%、聚乙烯醇1.5%、维生素A 0.03~0.06%、维生素B6 0.05~0.07%、叶黄素1~3%、海藻糖0.01~0.02%,余量为磷酸盐缓冲液。本发明的立他司特滴眼液通过复配特定比例的立他司特、聚乙烯醇及海藻糖,能够有效改善兔眼泪液分泌量,增强泪膜稳定性并减轻角膜损伤,并调节兔眼炎症因子水平,减轻炎症,有效治疗兔实验性干眼症;添加的维生素及叶黄素使其具有良好的使用感,不会造成点滴处刺痛,副作用轻微,能够提升患者顺应性。

Description

一种立他司特滴眼液及其制备方法
技术领域
本发明涉及药学领域,特别涉及一种立他司特滴眼液,该滴眼液用于治疗干眼症。
背景技术
干眼症是由于长期缺乏维生素A、代谢性疾病、慢性炎症等多种原因造成泪液质或量发生改变,造成眼部一系列不适及眼表组织发生病理改变。干眼症在症状上主要表现为眼睛疲倦干涩、发痒有异物感、怕光、灼伤感等,若不及时控制会导致角质层受损,损害患者视功能。泪膜不稳定、眼表炎症反应、泪液渗透压升高、眼表损伤等均为干眼症发病机制。目前,临床上治疗干眼症的方法有补充泪液、调节泪液渗透压、抑制眼表炎症反应等,均有一定疗效。
药物治疗中,人工泪液、维生素A棕榈酸酯眼用凝胶、普拉洛芬滴眼液等是常用药物。这些药物主要用于改善泪膜功能、减轻炎症反应、改善眼表环境等。立他司特(lifitegrast)是一种新型小分子整合素抑制剂,通过抑制淋巴细胞功能相关抗原1(LFA-1)与细胞间粘附分子1(ICAM-1)的结合,从而减少由T淋巴细胞介导的炎症水平。2016年,FDA批准其用于干眼症的治疗。然而,在临床试验中,5~25%的患者报告其会导致点滴部位刺痛、味觉障碍及视力下降;另有1~5%患者报告了视力模糊,结膜充血,眼刺激,头痛,流泪增加,眼排泄物,眼不适,眼瘙痒和窦炎等其他不良反应。
然而,现有技术中,尚没有能够减少这些不良反应发生的立他司特滴眼液。因此,开发一种治疗效果好、不良反应低、安全性高的立他司特滴眼液是本领域亟待解决的技术问题。
发明内容
有鉴于此,本发明提供一种立他司特滴眼液及其制备方法。
本发明技术方案如下:
一种立他司特滴眼液,包括如下质量百分比的组分:立他司特5%、聚乙烯醇1.5%、维生素A 0.03~0.06%、维生素B6 0.05~0.07%、叶黄素1~3%、海藻糖0.01~0.02%,余量为磷酸盐缓冲液。
进一步的,上述的滴眼液,包括如下质量百分比的组分:立他司特5%、聚乙烯醇1.5%、维生素A 0.05%、维生素B6 0.06%、叶黄素2%、海藻糖0.015%,余量为磷酸盐缓冲液。
进一步的,上述的滴眼液,其中,磷酸盐缓冲液由纯化水、磷酸二氢钠、磷酸氢二钠、氯化钠组成。
本发明还提供一种上述任一项的立他司特滴眼液制备方法,包括以下步骤:
S1.将立他司特、聚乙烯醇和海藻糖混合分散至纯化水中,搅拌混合液,同时调节混合液pH、渗透压,至形成均质的粘溶液;
S2.向S1所得粘溶液中加入维生素A、维生素B6、叶黄素,搅拌均匀;
S3.对S2所得粘溶液高温灭菌,无菌条件下将灭菌后的粘溶液灌封至预先灭菌的0.2mL LDPE管中,制得所述立他司特滴眼液。
进一步的,上述的制备方法,其中,步骤S1中,调节pH、渗透压后所得粘溶液pH为6.5~7.5,渗透压为295~309mOsm/L。
进一步的,上述的制备方法,其中,步骤S1中,调节pH步骤如下:
测量混合液pH;
如pH<6.5,向混合液中加入pH=7.2的磷酸二氢钠-磷酸氢二钠混合溶液,至混合液pH≥6.5;
如pH>7.5,向混合液中加入pH=6.8的磷酸二氢钠-磷酸氢二钠混合溶液,至混合液pH≤7.5。
进一步的,上述的制备方法,其中,步骤S1中,调节渗透压步骤如下:
测量混合液渗透压;
如渗透压<295mOsm/L,向混合液中加入氯化钠,至混合液渗透压≥295mOsm/L;
如渗透压>309mOsm/L,向混合液中加入纯化水,至混合液渗透压≤309mOsm/L。
进一步的,上述的制备方法,其中,步骤S1中,调节混合液pH先于调节混合液渗透压进行。
进一步的,上述的制备方法,其中,步骤S2中,搅拌转速80rpm,搅拌时长30分钟。
进一步的,上述的制备方法,其中,步骤S3中,高温灭菌温度121℃,时间30分钟。
本发明的有益效果如下:本发明制得的立他司特滴眼液通过复配特定比例的立他司特、聚乙烯醇及海藻糖,能够有效改善兔眼泪液分泌量,增强泪膜稳定性并减轻角膜损伤,并调节兔眼炎症因子水平,减轻炎症,有效治疗兔实验性干眼症;添加的维生素及叶黄素使其具有良好的使用感,不会造成点滴处刺痛,副作用轻微,能够提升患者顺应性。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法;下述实施例中所用的试剂、材料等,如无特殊说明,以下实施例中使用的原料和试剂均为市售商品,或者可以通过已知方法制备。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件如Sambrook等人,分子克隆:实验室手册(New York:Cold SpringHarbor Laboratory Press,1989)中所述的条件,或按照制造厂商所建议的条件。
实施例1
取立他司特5g、聚乙烯醇1.5g和海藻糖0.015g混合分散到纯化水中至总重量为100g,搅拌溶解,同时测量混合液pH=5.4、渗透压为287mOsm/L,加入pH=7.2的磷酸二氢钠-磷酸氢二钠混合溶液调节混合液pH至6.8,随后加入氯化钠调节混合液渗透压为302mOsm/L,充分溶解均匀至得到澄清的均质粘溶液后,向粘溶液中加入维生素A 0.05g、维生素B6 0.06g、叶黄素2g,转速80rpm,搅拌30分钟,至再次得到澄清的均质粘溶液后,将粘溶液在121℃下加热30分钟,冷却至室温,在负压和无菌条件下将杀菌后的粘溶液灌装至预先灭菌的0.2mL LDPE管中,制得立他司特滴眼液。
实施例2
取立他司特5g、聚乙烯醇1.5g和海藻糖0.01g混合分散到纯化水中至总重量为100g,搅拌溶解,同时测量混合液pH=7.7、渗透压为315mOsm/L,加入pH=6.8的磷酸二氢钠-磷酸氢二钠混合溶液调节混合液pH至7.2,随后加入纯化水调节混合液渗透压为299mOsm/L,充分溶解均匀至得到澄清的均质粘溶液后,向粘溶液中加入维生素A 0.03g、维生素B6 0.05g、叶黄素1g,转速80rpm,搅拌30分钟,至再次得到澄清的均质粘溶液后,将粘溶液在121℃下加热30分钟,冷却至室温,在负压和无菌条件下将杀菌后的粘溶液灌装至预先灭菌的0.2mL LDPE管中,制得立他司特滴眼液。
实施例3
取立他司特5g、聚乙烯醇1.5g和海藻糖0.02g混合分散到纯化水中至总重量为100g,搅拌溶解,同时测量混合液pH=6.2、渗透压为285mOsm/L,加入pH=7.2的磷酸二氢钠-磷酸氢二钠混合溶液调节混合液pH至7.0,随后加入氯化钠调节混合液渗透压为303mOsm/L,充分溶解均匀至得到澄清的均质粘溶液后,向粘溶液中加入维生素A 0.06g、维生素B6 0.07g、叶黄素3g,转速80rpm,搅拌30分钟,至再次得到澄清的均质粘溶液后,将粘溶液在121℃下加热30分钟,冷却至室温,在负压和无菌条件下将杀菌后的粘溶液灌装至预先灭菌的0.2mL LDPE管中,制得立他司特滴眼液。
对比例1
取立他司特5g和海藻糖0.015g混合分散到纯化水中至总重量为100g,搅拌溶解,同时测量混合液pH=5.4、渗透压为287mOsm/L,加入pH=7.2的磷酸二氢钠-磷酸氢二钠混合溶液调节混合液pH至6.8,随后加入氯化钠调节混合液渗透压为302mOsm/L,充分溶解均匀至得到澄清的均质粘溶液后,向粘溶液中加入维生素A 0.05g、维生素B6 0.06g、叶黄素2g,转速80rpm,搅拌30分钟,至再次得到澄清的均质粘溶液后,将粘溶液在121℃下加热30分钟,冷却至室温,在负压和无菌条件下将杀菌后的粘溶液灌装至预先灭菌的0.2mL LDPE管中,制得立他司特滴眼液。本法制得的立他司特滴眼液不含聚乙烯醇。
对比例2
取立他司特5g、聚乙烯醇1.5g和海藻糖0.015g混合分散到纯化水中至总重量为100g,搅拌溶解,同时测量混合液pH=5.4、渗透压为287mOsm/L,加入pH=7.2的磷酸二氢钠-磷酸氢二钠混合溶液调节混合液pH至6.8,随后加入氯化钠调节混合液渗透压为302mOsm/L,充分溶解均匀至得到澄清的均质粘溶液后,向粘溶液中加入维生素A 0.05g、维生素B6 0.06g、叶黄素2g,转速80rpm,搅拌30分钟,至再次得到澄清的均质粘溶液后,将粘溶液在121℃下加热30分钟,冷却至室温,在负压和无菌条件下将杀菌后的粘溶液灌装至预先灭菌的0.2mL LDPE管中,制得立他司特滴眼液。本法制得的立他司特滴眼液不含维生素和叶黄素。
对比例3
取立他司特5g和聚乙烯醇1.5g混合分散到纯化水中至总重量为100g,搅拌溶解,同时测量混合液pH=5.4、渗透压为287mOsm/L,加入pH=7.2的磷酸二氢钠-磷酸氢二钠混合溶液调节混合液pH至6.8,随后加入氯化钠调节混合液渗透压为302mOsm/L,充分溶解均匀至得到澄清的均质粘溶液后,向粘溶液中加入维生素A 0.05g、维生素B6 0.06g、叶黄素2g,转速80rpm,搅拌30分钟,至再次得到澄清的均质粘溶液后,将粘溶液在121℃下加热30分钟,冷却至室温,在负压和无菌条件下将杀菌后的粘溶液灌装至预先灭菌的0.2mL LDPE管中,制得立他司特滴眼液。本法制得的立他司特滴眼液不含海藻糖。
性能测试
(1)外观
室温下肉眼观察实施例1-3及对比例1-3制得的立他司特滴眼液,并拆开LDPE管试滴。
表1各样品制备工艺
如上表所示,各实施例及对比例所制得的立他司特滴眼液均为无色澄明液体,但其粘稠度与聚乙烯醇含量相关,不含聚乙烯醇的立他司特滴眼液粘度较低。
(2)动物实验
选取清洁级成年新西兰白兔(2.5~3kg)进行实验,雌雄各半,根据体重随机分组,每组4只。在实验前用裂隙灯显微镜检查实验动物无眼部异常。分组给药方案如下表。
表2分组给药方案
测试项目:
1)Schirmer试纸测定兔眼泪液分泌量
实验第0、7、14、21、28天时,使用Schirmer试纸测量兔眼泪液分泌量。具体方法为:将Schirmer纸条插入兔眼的下眼睑中、外三分之一交界处附近的结膜囊位置,5min后读取湿纸条的长度(mm)。为保证实验结果的客观性和准确性,每次每只兔子双眼均由同一人完成。
2)荧光素钠试纸测定兔眼泪膜的稳定性及兔眼角膜染色评分
分别于实验第0、7、14、21、28天进行兔眼泪膜破裂时间测定。手持荧光素钠试纸底端,在试纸表面滴加2滴生理盐水稀释,将试纸头部置于兔眼的下结膜囊内5s后取出,手动闭合眼睑数次,使荧光素钠均匀分布在眼表,在裂隙灯的钴蓝光下用宽裂隙带观察,最后一次瞬目后睁眼至角膜出现第1个黑斑的时间为泪膜破裂时间,连续测量3次取平均值。
将生理盐水稀释后的试纸,轻抚于兔眼表面,使荧光素钠分布均匀,2min后,在裂隙灯的钴蓝光下用宽裂隙带观察并进行评分。本次实验采用NEI角膜荧光染色评分分级法,NEI干眼症临床试验研讨会推荐的分级系统将角膜分为5个区:中央区、上区、颞区、鼻区和下区。对于每个区域,角膜荧光素染色的数量在0到3的范围内分级:0级正常或阴性裂隙灯发现;1级轻度或浅层点画;2级中度或点状染色,包括角膜表面磨损;3级严重磨损或角膜侵蚀、角膜深层磨损或复发性侵蚀。最大分数为15分。
3)ELISA法测定兔眼泪腺、房水中TNF-α和IL-6表达水平
最后一次给药后4h,空气栓塞法处死实验兔,取兔眼泪腺、房水,经匀浆机匀浆后,取上清液,严格按照各试剂盒说明书测定TNF-α和IL-6的含量。
测试结果如下表3-1至3-4所示。
表3-1兔眼泪液分泌量检测结果
表3-2兔眼泪膜稳定性检测结果
表3-3兔眼角膜染色评分结果
表3-4兔眼TNF-α和IL-6表达水平测试结果
说明:采用GraphPad Prism 8软件进行统计学分析。P<0.05,表示差异具有显著性。
如上表3-1所示,实验全过程中(0-28d),空白组兔的泪液分泌量测得结果约为20mm;造模过程中(0-14d),模型组及各实验组、阳性对照组兔泪液分泌量随造模推进而下降,14d时,与空白组兔有显著差异(p<0.05),证明造模成功;治疗过程中(15-28d),模型组兔泪液分泌量有小幅度回升,反应了兔眼的自我修复作用;实验组1-3的兔于21d时泪液分泌量即恢复正常(与空白组相比,p>0.05);实验组5的兔在28d时泪液分泌量回升至正常水平(与空白组相比,p>0.05);实验组4、6及阳性对照组1-2的兔在治疗过程中泪液分泌量有不同程度的回升,但未能恢复正常(与空白组相比,p<0.05);
如上表3-2所示,实验全过程中(0-28d),空白组兔的泪膜破裂时间约为6.1s;造模过程中(0-14d),模型组及各实验组、阳性对照组兔的泪膜破裂时间随造模推进而下降,14d时,与空白组兔有显著差异(p<0.05),证明造模成功;治疗过程中(15-28d),模型组兔的泪膜破裂时间有小幅度回升,反应了兔眼的自我修复作用;实验组1-3的兔于21d时泪膜破裂时间即恢复正常(与空白组相比,p>0.05);实验组5的兔在28d时泪膜破裂时间回升至正常水平(与空白组相比,p>0.05);实验组4、6及阳性对照组1-2的兔在治疗过程中泪膜破裂时间有不同程度的回升,但未能恢复正常(与空白组相比,p<0.05)。
如上表3-3所示,实验全过程中(0-28d),空白组兔的眼角膜染色评分约为0.2;造模过程中(0-14d),模型组及各实验组、阳性对照组兔的眼角膜染色评分随造模推进而上升,14d时,与空白组兔有显著差异(p<0.05),证明造模成功;治疗过程中(15-28d),模型组兔的眼角膜染色评分有小幅度下降,反应了兔眼的自我修复作用;实验组1-3的兔于21d时眼角膜染色评分下降至约5.5,于28d时眼角膜染色评分下降至约4.7;实验组4-6及阳性对照组1-2的兔在治疗过程中的眼角膜染色评分有不同程度的下降,但下降幅度低于实验组1-3。
如上表3-4所示,实验结束后(28d),与空白组兔相比,模型组兔房水、泪腺中的炎症因子水平明显升高(p<0.05);与模型组兔相比,各实验组及阳性对照组1兔的房水、泪腺中的炎症因子水平均明显下降(p<0.05),阳性对照组1兔的房水、泪腺中的炎症因子水平没有改善(p>0.05);在泪腺TNF-α水平上,各实验组及阳性对照组1采用的药物起到的作用效果相仿,均下降至接近正常水平(与空白组相比,p>0.05);在其他炎症因子水平中,实验组1-3、5的下降幅度显著优于其他实验组及阳性对照组1(p<0.05)。
此外,在治疗过程中,实验组4-6及阳性对照组1的兔出现抓挠用药眼的行为,其中阳性对照组1的兔抓挠行为最严重,实验组5与之相仿,实验组4、6抓挠行为相对较少。
上述测试结果说明,本发明制得的立他司特滴眼液能够有效改善兔眼泪液分泌量,增强泪膜稳定性并减轻角膜损伤,并调节兔眼炎症因子水平,减轻炎症,有效治疗兔实验性干眼症,且其使用感佳,不会造成点滴处刺痛,副作用轻微,能够提升患者顺应性。通过与对比例制得的立他司特滴眼液及市售立他司特滴眼液、聚乙烯醇滴眼液比较可知,通过将立他司特与特定比例的聚乙烯醇和海藻糖复配,能够显著提高对干眼症的治疗效果;通过加入一定量维生素、叶黄素,能够减轻家兔由于使用立他司特滴眼液的疼痛感,在有聚乙烯醇存在时,能够进一步减轻疼痛。
尽管上面已经示出和描述了本申请的实施例,理解的是,上述实施例是示例性的,不能理解为对本申请的限制,本领域的普通技术人员在本申请的范围内对上述实施例进行变化、修改、替换和变型。

Claims (10)

1.一种立他司特滴眼液,其特征在于,包括如下质量百分比的组分:立他司特5%、聚乙烯醇1.5%、维生素A 0.03~0.06%、维生素B6 0.05~0.07%、叶黄素1~3%、海藻糖0.01~0.02%,余量为磷酸盐缓冲液。
2.根据权利要求1所述的滴眼液,其特征在于,包括如下质量百分比的组分:立他司特5%、聚乙烯醇1.5%、维生素A 0.05%、维生素B6 0.06%、叶黄素2%、海藻糖0.015%,余量为磷酸盐缓冲液。
3.根据权利要求1或2所述的滴眼液,其特征在于,所述磷酸盐缓冲液由纯化水、磷酸二氢钠、磷酸氢二钠、氯化钠组成。
4.一种权利要求1-3任一项所述的立他司特滴眼液制备方法,包括以下步骤:
S1.将立他司特、聚乙烯醇和海藻糖混合分散至纯化水中,搅拌混合液,同时调节混合液pH、渗透压,至形成均质的粘溶液;
S2.向S1所得粘溶液中加入维生素A、维生素B6、叶黄素,搅拌均匀;
S3.对S2所得粘溶液高温灭菌,无菌条件下将灭菌后的粘溶液灌封至预先灭菌的0.2mLLDPE管中,制得所述立他司特滴眼液。
5.根据权利要求4所述的制备方法,其特征在于,步骤S1中,调节pH、渗透压后所得粘溶液pH为6.5~7.5,渗透压为295~309mOsm/L。
6.根据权利要求4或5所述的制备方法,其特征在于,步骤S1中,调节pH步骤如下:
测量混合液pH;
如pH<6.5,向混合液中加入pH=7.2的磷酸二氢钠-磷酸氢二钠混合溶液,至混合液pH≥6.5;
如pH>7.5,向混合液中加入pH=6.8的磷酸二氢钠-磷酸氢二钠混合溶液,至混合液pH≤7.5。
7.根据权利要求4或5所述的制备方法,其特征在于,步骤S1中,调节渗透压步骤如下:
测量混合液渗透压;
如渗透压<295mOsm/L,向混合液中加入氯化钠,至混合液渗透压≥295mOsm/L;如渗透压>309mOsm/L,向混合液中加入纯化水,至混合液渗透压≤309mOsm/L。
8.根据权利要求4或5所述的制备方法,其特征在于,步骤S1中,调节混合液pH先于调节混合液渗透压进行。
9.根据权利要求4所述的制备方法,其特征在于,步骤S2中,搅拌转速80rpm,搅拌时长30分钟。
10.根据权利要求4所述的制备方法,其特征在于,步骤S3中,高温灭菌温度121℃,时间30分钟。
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