CN111454898A - 一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法,包括以下步骤:(1)1号培养基的制备;(2)氯化锂母液的制备;(3)2号培养基的制备;(4)间充质干细胞的分离与培养;(5)间充质干细胞条件培养基的制备:取第四次传代的细胞,将细胞以1x105/ml的密度分别接种于1号培养基和2号培养基中,弃去培养上清,加入适量1X HBSS溶液清洗细胞两次,彻底吸干残留的HBSS溶液,加入无血清的高糖DMEM培养基,去除细胞碎片,向每个上清中加入适量20%无菌蔗糖溶液,将上述液体分装成10ml/瓶,转入真空冷冻干燥瓶中,在真空冷冻干燥机中冻干后保存于‑80℃冰箱中备用。本发明与现有技术相比的优点在于:使用效果好、利用率高、成本低。

Description

一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法
技术领域
本发明涉及间充质干细胞技术领域,具体是指一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法。
背景技术
间充质干细胞(MSC)是一类各种组织中普遍存在的、与相应的组织损伤的修复有着密切关系的一类异质性细胞,是修复组织器官的主要原料来源之一;MSCs在体内生长过程中,会通过分泌一些细胞因子抑制炎症的发展,并调节形成新生血管,促进血管形成、促进创伤组织的细胞生长,参与创面的损伤修复,最终促进创面上皮化和肉芽组织形成,实现加速创面愈合的进程;体外培养的MSC所分泌的这些具有组织损伤修复功能的生物活性分子,会释放到培养上清中,这种培养上清收集后被称为MSC条件培养基。
MSC的条件培养基(Mesenchymal Stem Cell Conditional Medium,MSC-CM)是指间充质干细胞(MSC) 在体外培养一段时间以后收集的细胞培养上清,其中含有MSC在生长过程中所分泌的具有生物活性的蛋白质分子,如具有调节细胞生长和血管组织生成的细胞因子,核酸分子,如具有细胞生长调节功能的小 RNA(MicroRNA)等生物活性分子。众多的文献报道MSC-CM的成分相对比较复杂,其生物学功能主要为调节细胞生长和分化由于MSC-CM在皮肤损伤的修复与皮肤的抗衰老方面具有较强的功能,MSC-CM 有望应用于皮肤损伤的修复(如烧伤、糖尿病足等)和皮肤抗衰老为目的的化妆品中,吸引了众多的研究者开发新的方法与技术,提高MSC-CM的产量,增强其生物学功能,降低产品制备的成本。
研究表明锂离子是一种双向调节的化合物,实验动物的研究表明适量的锂元素有助于骨质的形成,同时适量的锂元素对于神经细胞也具有保护作用,培养基中低浓度的锂离子可以促进MSC的增殖,而高浓度的锂离子则会抑制MSC的增殖与分化。普遍认为,锂离子有助于骨质形成与神经保护作用是由于锂离子促进了MSC的增殖和分化,而对于是否锂离子的使用使MSC所分泌的活性因子有所增加,改善了细胞生长的微环境,目前未见报道。在我们的研究中发现在培养基中添加低浓度的氯化锂将有助于提高 MSC-CM中活性物质的产量。
现有技术中的间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法在使用时,不仅使用效果不好,间充质干细胞条件培养基中含有活细胞,在使用细胞时具有免疫排斥、潜在的致瘤性、不易保存与运输等缺点,而且间充质干细胞的利用率低,提高了间充质干细胞条件培养基的制备成本。
发明内容
本发明要解决的技术问题是克服以上技术缺陷,提供一种使用效果好、利用率高、成本低的一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法。
为解决上述技术问题,本发明提供的技术方案为:一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法,包括以下步骤:
(1)1号培养基的制备:取420ml的高糖MEM倒入容器中,向其中分别加入5ml 100X青/链霉素混合液、5ml 100X丙酮酸钠、5ml 100X非必须氨基酸、5ml 100X谷氨酰钠和50ml胎牛血清,混匀后,过滤除菌,备用;
(2)氯化锂母液的制备:称取100mg氯化锂固体,溶于8ml高糖MEM中,充分溶解后定容至10ml,此溶液浓度为10mg/ml;
(3)2号培养基的制备:取416ml的高糖MEM倒入容器中,向其中分别加入5ml 100X青/链霉素混合液、5ml 100X丙酮酸钠、5ml 100X非必须氨基酸、5ml 100X谷氨酰钠和50ml胎牛血清,同时添加氯化锂母液4ml,混匀后,过滤除菌,备用;
(4)间充质干细胞(MSC)的分离与培养:将脐带组织沿脐带纵向切开,剥离其中的血管;用剪刀分离脐带组织内侧的沃顿胶,将分离的沃顿胶切成1mm3的小块,然后将其接种于细胞培养皿中,加入适量的1号培养液,将培养皿放置于温度为37℃、二氧化碳浓度为5%的培养箱中培养10-14天,期间于第二天适当加液后,每隔三天换1号培养液一次;细胞培养至80%融合度,用0.5%胰酶-EDTA溶液消化已经贴壁的间充质干细胞,并按照1:3的比例进行传代培养,传代后的细胞取其中一部分进行间充质干细胞条件培养基的制备,其余细胞以2x106/ml的密度进行冻存;
(5)间充质干细胞条件培养基(MSC-CM)的制备:取第四次传代的细胞,将细胞以1x105/ml的密度分别接种于1号培养基和2号培养基中,待细胞在两种培养基中生长至90%融合度,小心弃去培养上清,加入适量1X HBSS溶液(对于10cm细胞培养皿,可加入10ml-15ml HBSS溶液)清洗细胞两次,彻底吸干残留的HBSS溶液,加入无血清的高糖DMEM培养基,于温度为37℃、二氧化碳浓度为5%的培养箱中继续培养72h后,将2种细胞培养上清分别收集于50ml离心管中,1000g离心10分钟,去除细胞碎片,测量上清体积,向每个上清中加入适量20%无菌蔗糖溶液,使蔗糖的终浓度达到1%(W/V),将上述液体分装成10ml/瓶(青霉素瓶),转入真空冷冻干燥瓶中,-80℃预冷冻后,在真空冷冻干燥机中冻干后保存于-80℃冰箱中备用。两种条件培养基分别标记为MSC-CM 1:在1号培养基中培养的MSC所制备的条件培养基;MSC-CM2:2号培养基(含氯化锂的培养基)中培养的MSC所制备的条件培养基。
本发明与现有技术相比的优点在于:本发明利用在MSC体外培养的无血清培养基中添加GSK3 (Glycogen Synthase Kinase 3)小分子抑制剂:锂离子,用以降低MSC在体外培养过程中发生的细胞分化,提高其所分泌的生物活性分子的分泌能力,提高MSC-CM中有效成分的产量,在最佳的使用条件下, MSC-CM促进人真皮成纤维细胞生长的滴度提高了5-10倍,不仅间充质干细胞条件培养基中不含有活细胞,在使用细胞时没有免疫排斥、潜在的致瘤性、不易保存与运输等缺点,提高了使用效果,而且提高了间充质干细胞的利用,降低了间充质干细胞条件培养基的制备成本;利用含有本药物的化妆品可用于皮肤损伤及老化的修复,所指的皮肤损伤包括但不限于外伤造成的皮肤损伤、慢性疾病造成的皮肤损伤(如糖尿病足等)以及年龄增长所造成的皮肤老化等现象进行修复,提高了使用效果。
作为改进,所述(1)中青/链霉素混合液的终浓度为100ug/ml。
作为改进,所述(5)中的高糖DMEM含青霉素(100u/ml)/链霉素(100ug/ml),并添加以下相应成分:丙酮酸钠(1mM)、非必须氨基酸(10uM)、L-谷氨酰胺(2mM)、巯基乙醇(55uM)、上表皮生长因素(10ng/ml)和氯化锂母液(80ug/ml)。
作为改进,所述1号培养基和2号培养基的容积为500ml。
作为改进,一种间充质干细胞条件培养基,其通过权利要求1-4中任一项所述的方法制备。
附图说明
图1是本发明一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法的脐带间充质干细胞(MSC)表面标志物的流式鉴定结果图。
图2是本发明一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法的SDF-1α标准曲线的测定图。
图3是本发明一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法的MTT检测不同方式制备的条件培养基对细胞生长的作用结果图。
具体实施方式
下面通过具体实施例对本发明作进一步详述,以下实施例只是描述性的,不是限定性的,不能一次限定本发明的保护范围。
实施例1间充质干细胞(MSC)的表面标志物鉴定
第四次传代(P4)的体外培养的MSC冻存前取3x106个细胞,DPBS清洗后,800g离心5分钟,重悬于300ul的含1%牛血清白蛋白(BSA)的DPBS中,平均分成三份,其中1份加入流式检测的同型对照抗体,另外2份分别加入两组流式检测抗体:1个样品中加入FITC-HLA-DR、APC-CD90、PE-CD105和 Percp-CD34,另外1个样品中加入PE-CD73和Percp-CD45RA,4℃染色30min后,用含1%BSA的DPBS 清洗1遍,800g离心5分钟,上机检测,流式仪的型号为BD-FacsCalibur。流式细胞仪检测结果用Flowjo 软件进行分析,在FSCvsSSC图中选取细胞部分,使用Histogram检测MSC表面标志物的表达情况。结果表明检测的MSC中CD105、CD90和CD73均为阳性表达,阳性细胞的比例均超过90%,而HLA-DR、 CD45RA的表达均为阴性,结果见附图1。
实施例2MSC-CM中重要生物活性物质的检测(ELISA)
以MSC培养中最为常见的因子SDF-1α为对象,用定量ELISA方法测定MSC-CM中SDF-1α因子的测定含量,ELISA试剂盒使用R&D System公司,(目录号:DSA00),检测过程严格按照试剂盒生产厂家所提供的说明书进行,主要步骤简述如下:
①检测样品的准备:2种方法制备的冻干MSC-CM各取一支,分别用0.5ml无菌、无热源的去离子水溶解,取100ul溶解后的MSC-CM,加入900ul试剂盒提供的样品稀释液,将样品稀释10倍,然后取200ul 10倍稀释后的样品,用试剂盒提供的样品稀释液继续稀释2倍,备用;
②SDF-1α标准品的制备:按照说明书要求将试剂盒提供的SDF-1α的标准品(100ug/ml)用样品稀释液稀释后得到浓度分别为10000pg/ml、5000pg/ml、2500pg/ml、1250pg/ml、625pg/ml、313pg/ml 和156pg/ml的系列标准品;
③向试剂盒中提供的ELISA板中加入100ul/孔的样品稀释液,然后加入100ul/孔上述制备的20倍、 40倍和80倍稀释的MSC-CM和SDF-1α标准品,置水平摇床500rpm,室温孵育2小时;检测样品和标准品均设置平行孔。
④孵育结束后,吸去孵育液,加入试剂盒提供的洗液400ul/孔,洗涤3次,吸干洗液后,加入200ul/ 孔SDF-1α结合物,500rpm水平摇床室温孵育2小时;
⑤重复步骤③中的洗涤步骤,彻底吸干残留洗液;
⑥加入200ul/孔底物显色液,室温、避光反应30分钟后,每孔加入50ul终止液,于450nm波长(使用570nm作为校正波长)读取结果。
⑦根据所测OD值,结合标准品的标准曲线(表1),确定样品中的SDF-1α的含量(表2)。
⑧检测结果:见附图2。
Figure RE-GDA0002520802980000041
表1 SDF-1alpha测定标准曲线的测定
两个样品MSC-CM1和MSC-CM2测定的OD值及根据标准曲线线性回归公式所计算的SDF-1α在相应样品中的含量见下表:
Figure RE-GDA0002520802980000042
表2 SDF-1α在相应样品中的含量
实施例3 MSC-CM对上皮细胞生长的影响的检测
MSC-CM中生物活性分子的功能通过检测MSC-CM对人真皮成纤维细胞生长的影响来进行测定,人真皮成纤维细胞采用HDF(Human dermal fiborblast,人真皮成纤维细胞,购自美国Cell Applications(Cat#: 106K-05a),为16周岁人包皮细胞分离而来)。MTT试剂盒购自碧云天生物技术有限公司,产品目录号:C0009。
①测试样品培养基的制备:首先配制500ml含10%胎牛血清的DMEM/F12培养基,备用(此培养基也是HDF细胞生长培养基),取2种不同方式制备的MSC-CM冻干品,每支冻干品中加入1ml上述培养基使其充分溶解,(此培养基为MSC-CM培养基原液),然后用上述配制的10%FCS的DMEM/F12培养基稀释MSC-CM1 和MSC-CM2,制备5倍和10倍的MSC-CM1和MSC-CM2的稀释培养基。
②培养的HDF细胞达到80~90%融合后,0.5%胰酶-EDTA消化,消化后的细胞用10%FCS DMEM/F12 培养基以5×104/ml重悬细胞,并将其接种于96孔培养板中,每孔100μl,37℃5%CO2细胞培养箱内培养24小时;
③24h后弃原培养液,各组分别加入100ul步骤①配制的MSC-CM1和MSC-CM2原液、5X和10X培养基,每个MSC-CM设3个平行孔,同时设空白培养基和普通培养基孔为实验对照。放入37℃5%CO2培养箱中分别培养24h、48h、72h。
④各观察期终止时,按照试剂盒说明书加入10μL/孔MTT液,继续培养4h,吸去原液,加入100 μL/孔产物溶解液。37度孵育4小时,取出震荡10min,在酶标仪上以570nm波长测定吸光度。由于MTT 可以被活细胞内的线粒体中的一些脱氢酶还原生成结晶状的深紫色产物formazan。在特定溶剂(洗涤剂或 DMSO)存在的情况下,可以被完全溶解。然后通过酶标仪可以测定570nm波长附近的吸光度。细胞增殖越多越快,则吸光度越高;本实验重复3次。
⑤检测结果:本实验检测了不同稀释度的条件培养基样品对人真皮成纤维细胞(HDF)生长情况的影响,以此来说明条件培养基中的生物活性分子具有促进人皮肤细胞的生长的潜能,为其未来的应用指明方向。实验结果表明,在添加有MSC-CM原液的细胞培养板中,经过3天的测试,细胞生长的速度明显高于对照培养基(P<0.001);随着两种MSC-CM稀释度的提高,其促进细胞增殖的功能逐步减弱,其中CM1 的促进作用在5倍稀释后基本与对照培养基的生长速度相当,而CM2在10倍稀释后所配制的培养基中仍具有促进细胞生长的能力,结果见附图3。

Claims (5)

1.一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)1号培养基的制备:取420ml的高糖MEM倒入容器中,向其中分别加入5ml 100X青/链霉素混合液、5ml 100X丙酮酸钠、5ml 100X非必须氨基酸、5ml 100X谷氨酰钠和50ml胎牛血清,混匀后,过滤除菌,备用;
(2)氯化锂母液的制备:称取100mg氯化锂固体,溶于8ml高糖MEM中,充分溶解后定容至10ml,此溶液浓度为10mg/ml;
(3)2号培养基的制备:取416ml的高糖MEM倒入容器中,向其中分别加入5ml 100X青/链霉素混合液、5ml 100X丙酮酸钠、5ml 100X非必须氨基酸、5ml 100X谷氨酰钠和50ml胎牛血清,同时添加氯化锂母液4ml,混匀后,过滤除菌,备用;
(4)间充质干细胞(MSC)的分离与培养:将脐带组织沿脐带纵向切开,剥离其中的血管;用剪刀分离脐带组织内侧的沃顿胶,将分离的沃顿胶切成1mm3的小块,然后将其接种于细胞培养皿中,加入适量的1号培养液,将培养皿放置于温度为37℃、二氧化碳浓度为5%的培养箱中培养10-14天,期间于第二天适当加液后,每隔三天换1号培养液一次;细胞培养至80%融合度,用0.5%胰酶-EDTA溶液消化已经贴壁的间充质干细胞,并按照1:3的比例进行传代培养,传代后的细胞取其中一部分进行间充质干细胞条件培养基的制备,其余细胞以2x106/ml的密度进行冻存;
(5)间充质干细胞条件培养基(MSC-CM)的制备:取第四次传代的细胞,将细胞以1x105/ml的密度分别接种于1号培养基和2号培养基中,待细胞在两种培养基中生长至90%融合度,小心弃去培养上清,加入适量1X HBSS溶液(对于10cm细胞培养皿,可加入10ml-15mlHBSS溶液)清洗细胞两次,彻底吸干残留的HBSS溶液,加入无血清的高糖DMEM培养基,于温度为37℃、二氧化碳浓度为5%的培养箱中继续培养72h后,将2种细胞培养上清分别收集于50ml离心管中,1000g离心10分钟,去除细胞碎片,测量上清体积,向每个上清中加入适量20%无菌蔗糖溶液,使蔗糖的终浓度达到1%(W/V),将上述液体分装成10ml/瓶(青霉素瓶),转入真空冷冻干燥瓶中,-80℃预冷冻后,在真空冷冻干燥机中冻干后保存于-80℃冰箱中备用。两种条件培养基分别标记为MSC-CM 1:在1号培养基中培养的MSC所制备的条件培养基;MSC-CM2:2号培养基(含氯化锂的培养基)中培养的MSC所制备的条件培养基。
2.根据权利要求1所述的一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法,其特征在于:所述(1)中青/链霉素混合液的终浓度为100ug/ml。
3.根据权利要求1所述的一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法,其特征在于:所述(5)中的高糖DMEM含青霉素(100u/ml)/链霉素(100ug/ml),并添加以下相应成分:丙酮酸钠(1mM)、非必须氨基酸(10uM)、L-谷氨酰胺(2mM)、巯基乙醇(55uM)、上表皮生长因素(10ng/ml)和氯化锂母液(80ug/ml)。
4.根据权利要求1所述的一种间充质干细胞培养基用于化妆品的制备方法,其特征在于:所述1号培养基和2号培养基的容积为500ml。
5.一种间充质干细胞条件培养基,其通过权利要求1-4中任一项所述的方法制备。
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Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20100189696A1 (en) * 2006-11-01 2010-07-29 Dongming Sun Lithium stimulation of cord blood stem cell proliferation and growth factor production
US20100279412A1 (en) * 2006-01-13 2010-11-04 Japan Science And Technology Agency Culture medium additive for use in serum-free culturing of animal cell, kit and use thereof
CN104997708A (zh) * 2015-07-07 2015-10-28 河南中科干细胞基因工程有限公司 干细胞条件培养基的获取及在防皮肤老化方面的应用
CN106318904A (zh) * 2015-06-15 2017-01-11 上海朗斯生物工程有限公司 间充质干细胞条件培养基用于美容品领域的用途
CN107779430A (zh) * 2016-08-30 2018-03-09 天津市康婷生物工程有限公司 脐带间充质干细胞上清液的收集方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20100279412A1 (en) * 2006-01-13 2010-11-04 Japan Science And Technology Agency Culture medium additive for use in serum-free culturing of animal cell, kit and use thereof
US20100189696A1 (en) * 2006-11-01 2010-07-29 Dongming Sun Lithium stimulation of cord blood stem cell proliferation and growth factor production
CN106318904A (zh) * 2015-06-15 2017-01-11 上海朗斯生物工程有限公司 间充质干细胞条件培养基用于美容品领域的用途
CN104997708A (zh) * 2015-07-07 2015-10-28 河南中科干细胞基因工程有限公司 干细胞条件培养基的获取及在防皮肤老化方面的应用
CN107779430A (zh) * 2016-08-30 2018-03-09 天津市康婷生物工程有限公司 脐带间充质干细胞上清液的收集方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
YOON-JIN KIM等: "Exosomes derived from human umbilical cord blood mesenchymal stem cells stimulates rejuvenation of human skin", 《BIOCHEMICAL AND BIOPHYSICAL RESEARCH COMMUNICATIONS》 *

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