CN109655558B - 一种黑骨藤有效部位群的检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种黑骨藤有效部位群的检测方法。本发明对绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2的含量进行检测,所述检测方法准确,灵敏度高,重复性好,结果可靠,为黑骨藤药材质量控制和评价提供依据,并为药材最佳产地的确定奠定基础。有助于在生产上确定药材适宜生长区,指导药材采收。
Description
技术领域
本发明涉及一种黑骨藤有效部位群的检测方法,属于药品技术的领域。
背景技术
黑骨藤(Periploca forrestii Schltr.) 属于萝摩科(Asclepiadaceae)杠柳属Periploca )植物,收载于2003版《贵州省中药材、民族药材质量标准》,具有祛风除湿、活血通络、消痹止痛的功能,可舒筋活络、祛风除湿;主治风湿性关节 炎、跌打损伤、胃痛、消化不良、闭经、痢疾等。
黑骨藤是常用苗药之一,是黑骨藤追风活络胶囊、黑骨藤伸筋透骨液、黑骨藤伸筋透骨喷雾剂的重要组成药味。目前,黑骨藤仍执行的是2003 版《贵州省中药材、民族药材质量标准》,此标准中只有来源、性状、显微鉴别和理化鉴别等项目,没有对其药效成分进行定性和定量检测,难以控制药材及其成方制剂的质量,无法保证临床用药的安全性和有效性。然而,近几年对黑骨藤的研究多集中在化学成分、总皂苷、总黄酮的含量测定和药理作用等方面,未见关于绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2含量测定方法的研究报道。限制了对苗药黑骨藤的进一步开发利用。
发明内容
本发明的目的在于,提供一种黑骨藤有效部位群的检测方法。本发明对绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2的含量进行检测,所述检测方法准确,灵敏度高,重复性好,结果可靠,为黑骨藤药材质量控制和评价提供依据,并为药材最佳产地的确定奠定基础。有助于在生产上确定药材适宜生长区,指导药材采收。
为解决上述技术问题,本发明采用如下技术方案实现:一种黑骨藤有效部位群的检测方法,所述检测方法是对绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2进行含量测定。
前述的黑骨藤有效部位群的检测方法中,所述的对绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2进行含量测定是:
对照品溶液的制备:精密称取对照品绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2,置于容量瓶中,溶解,摇匀,制成对照品溶液;
供试品溶液的制备:取黑骨藤有效部位群粉末,置于容量瓶中加色谱甲醇溶解并稀释,摇匀,过0.45 μm微孔滤膜,取续滤液,即得;
色谱条件:色谱柱为Xtimate C18,4.6×250 mm,5 μm;流动相:乙腈为A相,0.2 %磷酸水溶液为B相,梯度洗脱;流速1 mL/min;进样量10 μL;检测波长330 nm和280 nm;柱温30℃;
测定方法:分别精密吸取对照品溶液与供试品溶液,在上述色谱条件下,分别测量绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2峰的面积,计算,即得。
前述的黑骨藤有效部位群的检测方法中,所述的供试品溶液按下述步骤进行制备:
①取过40目筛的黑骨藤药材粉末100 g,分别加8倍、6倍、6倍70 %乙醇回流提取3次,提取时间对应为1.5 h、1 h、1 h,粗过滤后抽滤,旋至无醇味,定容于1000 mL容量瓶中,摇匀,上D-101大孔吸附树脂富集,过夜;依次分别用1200 mL蒸馏水、2500 mL70 %乙醇、3000 mL95 %乙醇冲柱,将70 %乙醇部分旋至近膏状,干燥,称重后取出,密封放于4~9℃冰箱中,得黑骨藤有效部位群粉末;
②取黑骨藤有效部位群粉末50mg,置于10 mL容量瓶中加70 %色谱甲醇溶解并稀释至刻度线,摇匀,过0.45 μm微孔滤膜,取续滤液,即得。
前述的黑骨藤有效部位群的检测方法中,所述对照品溶液这样制备:精密称取对照品绿原酸5.02 mg、隐绿原酸5.06 mg、新绿原酸5.13 mg、异绿原酸C5.23 mg和原花青素A25.38 mg,置于5 mL容量瓶中,溶解,摇匀,制成绿原酸质量浓度为1.004 mg/mL、隐绿原酸质量浓度为1.012 mg/mL、新绿原酸质量浓度为1.026 mg/mL、异绿原酸质量浓度为1.046mg/mL和原花青素A2质量浓度为1.076 mg/mLl的对照品溶液。
前述的黑骨藤有效部位群的检测方法中,所述的梯度洗脱是;流动相乙腈(A)-0.2%磷酸水溶液(B);梯度洗脱程序为:0~15min,10%~10%A;15~30min,10%~18%A;30~45min,18%~18%A;45~50min,18%~20%A;50~55min,20%~20%A;55~65min,20%~21%A;65~80min,21%~21%A。
发明人进行了大量的实验,以下是本发明所述检测方法的研究
实验例:检测方法研究
1. 仪器与材料
1.1 仪器
见表1.
1.2 材料
甲醇(色谱纯,天津科密欧化学试剂有限公司);乙腈(色谱纯,天津市科密欧化学试剂有限公司);磷酸(重庆川东集团有限公司);甲醇(AR,天津市科密欧化学试剂有限公司);乙醇(分析纯);纯水(娃哈哈饮用纯净水,贵州娃哈哈饮料有限公司);大孔树脂D101(北京慧德易科技有限责任公司);薄层用硅胶(青岛海洋化工有限公司);对照品:新绿原酸(批号:CHB170914、CHB160419)原绿原酸(批号:CHB170713)隐绿原酸(批号:CHB170828、CHB160404)异绿原酸C(批号:CHB160726、CHB-Y-102)原花青素A2(批号:CHB170612),对照品纯度均为:HPLC≥98 %,均买自成都克洛玛生物科技有限公司。药材共十批,来源信息见表2,由贵阳中医学院刘刚老师鉴定为萝藦科(Asclepiadaceae)杠柳属(Periploca)植物黑骨藤(Periploca forrestii Schltr.)的干燥根及根茎。
2 方法
2.1 溶液的制备
2.1.1 对照品溶液的制备
精密称取对照品绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2各5.02mg、5.06 mg、5.13 mg、5.23 mg、5.38 mg,置于5 mL容量瓶中,溶解,摇匀,制成质量浓度分别为1.004 mg/mL、1.012 mg/mL、1.026 mg/mL、1.046 mg/mL、1.076 mg/mL的对照品溶液。
2.1.2 供试品溶液的制备
(1)取黑骨藤药材粉末(过40目筛)约100 g,分别加8倍、6倍、6倍70 %乙醇回流提取3次,提取时间各为1.5 h、1 h、1 h,粗过滤后抽滤,旋至无醇味,定容于1000 mL容量瓶中,摇匀,上D-101大孔吸附树脂富集,过夜。依次用1200 mL蒸馏水、2500 mL70 %乙醇、3000mL95 %乙醇冲柱,将70 %乙醇部分旋至近膏状,干燥,称重后取出,密封放于4~9℃冰箱中,即得黑骨藤有效部位群粉末。
(2)精密取黑骨藤有效部位群粉末50.0 mg,置于10 mL容量瓶中加70 %色谱甲醇溶解并稀释至刻度线,摇匀,过0.45 μm微孔滤膜,取续滤液,按“2.2”色谱条件分析。其色谱图如图1至图4。
2.2 色谱条件
色谱柱为Xtimate C18(4.6×250 mm,5 μm);流动相乙腈(A)-0.2 %磷酸水溶液(B),按表3色谱条件进行梯度洗脱;流速1 mL/min;进样量10 μL;检测波长330 nm和280nm;柱温30℃。
3. 方法学考察
3.1 线性关系考察
分别精密称取新绿原酸、绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸C、原花青素A2对照品各10.00 mg、5.01 mg、5.00 mg、3.51 mg、5.00 mg,将新绿原酸加入1号25 mL的容量瓶中将隐绿原酸加入1号5 mL的容量瓶中,用70 %色谱甲醇溶液定容至刻度线,摇匀,备用。将绿原酸、异绿原酸C、原花青素A2加入1号10 mL容量瓶中,精密移取1号25 mL的容量瓶与1号5 mL的容量瓶中的对照品溶液各1 mL、2 mL加入1号10 mL容量瓶中,用70 %色谱甲醇溶液定容至刻度线,摇匀。再精密移取1号10 mL容量瓶中混合对照品溶液各1 mL,分别移取5次,加入5 mL、10 mL、25 mL、50 mL、100 mL容量瓶中,用70 %色谱甲醇溶液定容至刻度线,摇匀制成由高至低各个浓度梯度的混合对照品溶液。分别按“4.1”条件进样,以平均峰面积值Y为纵坐标,浓度(mg/mL)X为横坐标,计算回归方程,绘制标准曲线。试验结果见表4。
3.2 精密度试验
精密吸取新绿原酸、异绿原酸C对照品溶液各1 mL分别加入已标记为1、2号的10mL容量瓶中,用70 %色谱甲醇溶液定容,摇匀待用。再精密取绿原酸、隐绿原酸、原花青素A2对照品溶液各3 mL、1 mL、2 mL均加入已标记为3号的10 mL容量瓶中,精密吸取1、2号容量瓶中的新绿原酸,异绿原酸C标准品溶液各1 mL、2 mL加入3号容量瓶中,用70 %色谱甲醇溶液定容,摇匀,制成一份新绿原酸、绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸C、原花青素A2浓度分别为0.010 mg/mL、0.301 mg/mL、0.101 mg/mL、0.021 mg/mL、0.215 mg/mL的混合对照品溶液,按上述色谱条件,平行进样6次,测得各对照品的含量,分别计算其RSD值均小于3 % ,表明仪器精密度良好。试验结果见表5。
3.3 稳定性试验
精密称取取批号为D1的黑骨藤药材有效部位群粉末1份,按“2.1.2(2)”项下条件制备,分别于0 h、4 h、6 h、8 h、12 h、24 h、32 h、48 h按“2.2”项下条件分析,测定峰面积,RSD值均小于3 %,结果表明供试品中待测成分绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、原花青素A2、异绿原酸C在48 h内稳定。试验结果见表6。
3.4 重复性试验
精密称取取批号为D1的黑骨藤药材有效部位群粉末,按“2.1.2(2)”项下的方法平行制备6份供试品溶液并测定其中待测成分的含量。试验结果见表7。各成分含量的RSD<3%,表明此方法具有较好的重复性。
3.5 加样回收率试验
精密称取黑骨藤药材有效部位群粉末6份:25.1 mg、25.1 mg、25.0 mg、25.1 mg、25.1 mg、25.1 mg,分别置于10 mL容量瓶中,按。精密称取对照品新绿原酸、绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸C、原花青素A2各:7.85 mg、18.01 mg、8.76 mg、5.05 mg、7.92 mg,分别置于100 mL、10 mL、25 mL、50 mL、10 mL中,加70%色谱甲醇溶液定容至刻度线,摇匀,分别各移取1ml加入装有黑骨藤有效部位群粉末的容量瓶中,定容,摇匀,过0.45 μm微孔滤膜,取续滤液,制成含量各为:0.0785 mg、1.7990 mg、0.3504 mg、0.1010 mg、0.7920 mg的供试品溶液,按“2.2”色谱条件分析。试验结果见表8。
4.样品测定
取龙宫、开阳、博信中草药行、銧铭药行、鸿源药行、惠水、王氏虫草行、安顺、黔陶与情隆10个不同产地的黑骨藤药材,按“2.1.2(1)(2)”项下方法制备,分别称取黑骨藤有效部位群细颗粒约50.0 mg,精密称定,制备供试品溶液,每个产地2份,每份进2针,按“2.2”项下色谱条件进行测定,按外标法计算每批有效部位群中5种成分的含量,试验结果见表9。
5结果与结论
5.1色谱条件的确定
5.1.1 流动相的选择
高效液相色谱法流动相组成及配比影响被分析物的分离效果。试验通过改变流动相的组成及配比来确定最佳条件。通过比较乙腈-0.1 %磷酸水溶液、甲醇-0.2%磷酸水溶液、乙腈-0.1 %磷酸水溶液、乙腈-0.2 %磷酸水溶液,发现乙腈-0.2 %磷酸水溶液分离效果最好。因此,试验选用乙腈-0.2 %磷酸水溶液作为流动相。
5.1.2 波长的选择
为了使待测成分尽可能被完全检出,吸收峰最强,本实验对280 nm、285 nm、290nm、300 nm、320 nm、330 nm、360 nm不同波长进行了考察,结果表明酚酸类成分在330 nm下有最强吸收峰,固选择330 nm为4个酚酸成分的最适吸收波长。待测成分原花青素A2在280nm下有最强吸收峰,固选择280 nm为黄酮类化合物原花青素A2的最适吸收波长。在该波长测定时,色谱峰对称,干扰少。
5.1.3 柱温的选择
本实验通过同一条件下25℃、30℃、35℃、38℃时柱温的考察发现,在30℃时待测成分的含量、峰形、分离度、保留时间等都达到最好,固选择30℃为最适温度。
5.1.4 色谱条件
通过不同洗脱梯度的考察,发现色谱柱为Xtimate C18(4.6×250 mm,5 μm);流动相乙腈(A)-0.2 %磷酸水溶液(B),按表“1.3”色谱条件进行梯度洗脱;流速1 mL/min;进样量为10 uL;检测波长330 nm、280 nm;柱温30℃时,待测成分的含量最高,峰形、分离度、保留时间等最好。
2. 考察部位的选择
药材通过水浴回流提取后上D101大孔吸附色谱柱进行纯化富集处理,富集得到水部位、70 %乙醇部位、95 %乙醇部位,本实验主要考察70 %乙醇有效部位化学成分,合并水部位与95 %乙醇部位作为阴性对比,发现黄酮类化合物原花青素A2全部富集于70 %乙醇部位,酚酸类化合物新绿原酸、绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸C总体上大部分都富集于70 %乙醇部位,色谱图见下图图1-图4。据文献报道苗药黑骨藤具有抗风湿抗炎等多种作用,不同因为对苗药黑骨藤研究不够彻底,还不能确定黑骨藤中主要起到抗风湿抗炎的有效部位,酚酸类与黄酮类成分具有多种药理作用,其主要作用可能为抗炎抗风湿作用,固选择70%乙醇部位作为黑骨藤有效部位群的质量控制研究对象,为下一步药理研究实验提供依据。
结论:本发明所述方法专属性强,重现性、稳定性及精密度良好。所述检测方法能够同时测定绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2的含量,从源头上对产品质量进行控制,使产品质量达到稳定。且所述检测方法高效,快速,准确,灵敏度高,重复性好,结果可靠,能有效控制该产品的质量,确保药物的临床药效。
本发明的有益效果:本发明对绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2的含量进行检测,所述检测方法准确,灵敏度高,重复性好,结果可靠,为黑骨藤药材质量控制和评价提供依据,并为药材最佳产地的确定奠定基础。有助于在生产上确定药材适宜生长区,指导药材采收。
附图说明:
图1是混合对照品色谱图(360 nm);其中,1.新绿原酸;2.绿原酸;3.隐绿原酸;4.异绿原酸C;
图2是供试品色谱图(360 nm);其中,1.新绿原酸;2.绿原酸;3.隐绿原酸;4.异绿原酸C;
图3是混合对照品色谱图(280 nm);其中1为花青素A2;
图4是供试品色谱图(280 nm);其中,1.原花青素A2。
下面结合实施例对本发明作进一步的说明。
具体实施方式
实施例1:
一种黑骨藤有效部位群的检测方法;包括对绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2进行含量测定。具体测定方法为:
对照品溶液的制备:精密称取对照品绿原酸5.02 mg、隐绿原酸5.06 mg、新绿原酸5.13 mg、异绿原酸C5.23 mg和原花青素A25.38 mg,置于5 mL容量瓶中,溶解,摇匀,制成绿原酸质量浓度为1.004 mg/mL、隐绿原酸质量浓度为1.012 mg/mL、新绿原酸质量浓度为1.026 mg/mL、异绿原酸质量浓度为1.046 mg/mL和原花青素A2质量浓度为1.076 mg/mL的对照品溶液;
供试品溶液的制备:
①取过40目筛的黑骨藤药材粉末100 g,分别加8倍、6倍、6倍70 %乙醇回流提取3次,提取时间对应为1.5 h、1 h、1 h,粗过滤后抽滤,旋至无醇味,定容于1000 mL容量瓶中,摇匀,上D-101大孔吸附树脂富集,过夜;依次分别用1200 mL蒸馏水、2500 mL70 %乙醇、3000 mL95 %乙醇冲柱,将70 %乙醇部分旋至近膏状,干燥,称重后取出,密封放于4~9℃冰箱中,得黑骨藤有效部位群粉末;
②取黑骨藤有效部位群粉末50 mg,置于10 mL容量瓶中加70 %色谱甲醇溶解并稀释至刻度线,摇匀,过0.45 μm微孔滤膜,取续滤液,即得;
色谱条件:色谱柱为Xtimate 5 μm C18 Dim.4.6×250 mm ,5 μm;流动相:乙腈为A相,0.2 %磷酸水溶液为B相,梯度洗脱;流速1 mL/min;进样量10 μL;检测波长330 nm和280nm;柱温30℃;
测定方法:分别精密吸取对照品溶液与供试品溶液,在上述色谱条件下,分别测量绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2峰的面积,计算,即得。
所述的梯度洗脱是;按下表进行梯度洗脱:
Claims (2)
1.一种黑骨藤有效部位群的检测方法,其特征在于:所述检测方法是对绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2进行含量测定;
所述的对绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2进行含量测定是:
对照品溶液的制备:精密称取对照品绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2,置于容量瓶中,溶解,摇匀,制成对照品溶液;
供试品溶液的制备:所述的供试品溶液按下述步骤进行制备:
①取过40目筛的黑骨藤药材粉末100 g,分别加8倍、6倍、6倍70 %乙醇回流提取3次,提取时间对应为1.5 h、1 h、1 h,粗过滤后抽滤,旋至无醇味,定容于1000 mL容量瓶中,摇匀,上D-101大孔吸附树脂富集,过夜;依次用1200 mL蒸馏水、2500 mL70 %乙醇、3000 mL95 %乙醇冲柱,将70 %乙醇部分旋至近膏状,干燥,称重后取出,密封放于4~9℃冰箱中,得黑骨藤有效部位群粉末;
②取黑骨藤有效部位群粉末50 mg,置于10 mL容量瓶中加70 %色谱甲醇溶解并稀释至刻度线,摇匀,过0.45 μm微孔滤膜,取续滤液,得供试品溶液;
色谱条件:色谱柱为Xtimate C18,4.6×250 mm,5 μm;流动相:乙腈为A相,0.2 %磷酸水溶液为B相,梯度洗脱;流速1 mL/min;进样量10 μL;检测波长330 nm和280 nm;柱温30℃;0~15min,10%→10%A;15~30min,10%→18%A;30~45min,18%→18%A;45~50min,18%→20%A;50~55min,20%→20%A;55~65min,20%→21%A;65~80min,21%→21%A;
测定方法:分别精密吸取对照品溶液与供试品溶液,在上述色谱条件下,分别测量绿原酸、隐绿原酸、新绿原酸、异绿原酸C和原花青素A2峰的面积,计算,即得。
2.如权利要求1中所述的黑骨藤有效部位群的检测方法,其特征在于:所述对照品溶液这样制备:精密称取对照品绿原酸5.02 mg、隐绿原酸5.06 mg、新绿原酸5.13 mg、异绿原酸C5.23 mg和原花青素A25.38 mg,置于5 mL容量瓶中,溶解,摇匀,制成绿原酸质量浓度为1.004 mg/mL、隐绿原酸质量浓度为1.012 mg/mL、新绿原酸质量浓度为1.026 mg/mL、异绿原酸质量浓度为1.046 mg/mL和原花青素A2质量浓度为1.076 mg/mL的对照品溶液。
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