CN108887178A - 一种黄花菜组织培养育苗方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种黄花菜组织培养育苗方法,包括:(1)外植体的选择和处理;(2)愈伤组织的培养;(3)芽诱导;(4)进行生根培养;(5)移栽炼苗;该育苗方法通过在黄花菜组织培养过程中,针对性的在芽诱导和生根培养中添加相应浓度的油菜素内酯,使组织培养得到的黄花菜组培苗芽更壮硕,根更多,抗病性和适应性显著增强;本发明育苗方法育苗周期短,数量大,黄花菜秧苗的成活率高,适合黄花菜秧苗的大规模培育。
Description
技术领域
本发明涉及植物组织培养领域,特别涉及一种黄花菜组织培养育苗方法。
背景技术
黄花菜又名金针菜、柠檬萱草,为百合科多年生草本植物,根近肉质,中下部常有纺锤状膨大。花葶长短不一,花梗较短,花多朵,花被淡黄色、橘红色、黑紫色。黄花菜含有丰富的花粉、糖、蛋白质、维生素C、钙、脂肪、胡萝卜素、氨基酸等人体所必须的养分。黄花菜具有很高的药用价值,我国《营养学报》曾评价黄花菜,具有显著地降低动物血清胆固醇的作用。此外,常吃黄花菜还能滋润皮肤,增强皮肤的韧性和弹力,可使皮肤细嫩饱满、润滑柔软,皱褶减少、色斑消退、增添美容、黄花菜还有抗菌免疫功能,具有中轻度的消炎解毒功效,并在防止传染方面有一定的作用。
随着人们对饮食健康和品质的重视,黄花菜的需求量也越来越大,扩大人工种植黄花菜的数量成为必要趋势。黄花菜传统的繁殖方法分为无性繁殖和有性繁殖两大类:无性繁殖又分为分株繁殖、切片繁殖和扦插繁殖三种,虽然具有成本低、技术要求低的优点,但也存在繁殖周期长、数量小和秧苗存活率低等诸多缺陷;有性繁殖则为种子繁殖,虽然具有数量大、成本低和技术要求低的优点,但也同样存在繁殖周期长和病菌遗留率大、传染率高的缺陷;因而,采用黄花菜传统的繁殖方法难以满足黄花菜市场的急剧增大,限制了黄花菜种植业的快速发现。
黄花菜的组织培养育苗是近年来为满足黄花菜市场急剧增大而发展的一种快速、高效的无性繁殖育苗方法,该方法是将黄花菜植株的部分细胞在无菌条件下进行快速培养,从而得到大量黄花菜秧苗的育苗方法。现有的黄花菜组织培养繁殖方法虽然具有周期短、数量大的优点,但由于培养环境处于无菌环境中,培养得到的黄花菜秧苗对大田环境的适应能力较差,抗病能力较差,不利于田间的定植,限制了组织培养在黄花菜秧苗培育中的大规模应用。
发明内容
本发明的目的在于克服现有黄花菜组织培养育苗方法得到的秧苗抗病能力差、对大田环境适应能力差的缺陷,提出一种能有效提高黄花菜秧苗适应能力和抗病能力的组织培养育苗方法;该育苗方法利用生物激素对植物细胞抗性具有增强作用的机理,通过针对性添加适当浓度的油菜素内酯,使黄花菜组培苗芽更壮硕,根更多,抗病性和适应性显著增强。
为了实现上述发明目的,本发明提供了一种黄花菜组织培养育苗方法,包括以下步骤:
(1)外植体的选择和处理:选取生长健壮、无病虫害植株的花梗,消毒后切成薄片;
(2)愈伤组织的培养:将步骤(1)的薄片接入愈伤组织诱导培养基中进行培养,得到愈伤组织;
(3)芽诱导:将步骤(2)培养得到的愈伤组织接入含有浓度为0.01-0.03μg/L的油菜素内酯的芽诱导培养基中进行培养,得到组培芽;
(4)进行生根培养:将步骤(3)的组培芽接入含有浓度为0.03-0.05μg/L的油菜素内酯的生根培养基中进行培养,得到组培苗;
(5)移栽炼苗:将步骤(4)的组培苗除去培养基后移栽入基质中,进行炼苗,炼苗完成后得到黄花菜秧苗。
本发明一种黄花菜组织培养育苗方法,通过在黄花菜组织培养过程中,针对性的在芽诱导和生根培养中添加相应浓度的油菜素内酯,利用生物激素对植物细胞抗性具有增强作用的机理,使组织培养得到的黄花菜组培苗芽更壮硕,根更多,抗病性和适应性显著增强;并且,本发明育苗方法育苗周期短,数量大,黄花菜秧苗的成活率高,适合黄花菜秧苗的大规模培育。
上述一种黄花菜组织培养育苗方法,其中,优选的,步骤(1)中所述的薄片厚度为0.1~0.5mm;厚度过大,不利于愈伤组织后期的分化,厚度过小,愈伤组织生成少,培养时间长。
上述一种黄花菜组织培养育苗方法,其中,步骤(2)中所述的愈伤组织诱导培养基是指能促进植物外植体生成愈伤组织的植物培养基;优选的,所述的愈伤组织诱导培养基中含有浓度为2.5-4.0mg/L的6-BA(6-Benzylaminopurine)和浓度为0.2-0.6mg/L的NAA(萘乙酸);最优选的,所述的愈伤组织诱导培养基中含有浓度为3.2mg/L的6-BA和浓度为0.4mg/L的NAA;通过优选,黄花菜外植体生成的愈伤组织细胞数量大,分化效果好。
其中,优选的,步骤(2)愈伤组织的培养条件为:温度为20-25℃,培养时间为15-20d;在优选培养条件下,得到的愈伤组织细胞数量多,分化效果好。
上述一种黄花菜组织培养育苗方法,其中,步骤(3)中所述的芽诱导培养基是指能促进愈伤组织分化生成芽的植物培养基;优选的,所述的芽诱导培养基中含有浓度为1.5-3.2mg/L的6-BA和浓度为0.5-0.10mg/L的NAA;最优选的,所述的芽诱导培养基中含有浓度为2.4mg/L的6-BA和浓度为0.8mg/L的NAA;通过优选,分化生成的组培芽数量多,长势好。
其中,优选的,步骤(3)芽诱导的培养条件为:光照条件下培养温度为22-25℃,非光照条件下培养温度为15-20℃,光照强度为900-1400Lux,光照时间为8-10h/d;培养时间为20-30d;利用光照和温度对植物细胞生长和激素合成的影响,通过改变培养温度和光照条件,有利于芽的分化,能增加细胞密度,提高组培芽的适应性和抗病能力。
其中,优选的,步骤(3)中油菜素内酯的浓度为0.02μg/L;优选浓度条件下,培养得到的组培苗抗病性最好。
上述一种黄花菜组织培养育苗方法,其中,优选的,在将步骤(3)得到的组培芽进行生根培养前,还包括对组培芽进行磁场处理;通过磁场处理,不仅能促进细胞的分化,使组培芽分化出更多的根,还能促进细胞中植物激素的分泌和蛋白质的合成,使组培苗长势更好,适应性和抗病能力更强。
其中,优选的,所述的磁场强度为10-30mT,处理时间为5-10h;最优选的,所述的磁场强度为18-22mT,处理时间为8h;通过优选,处理后的组培苗长势最好,分化的根最多,适应性和抗病能力最强。
上述一种黄花菜组织培养育苗方法,其中,步骤(4)中所述的生根诱导培养基是指能促进愈伤组织分化生成根的植物培养基;优选的,所述的生根培养基中含有浓度为0.8-1.8mg/L的IBA;最优选的,所述的生根培养基中含有浓度为1.2mg/L的IBA(吲哚丁酸);通过优选,分化生成的根数量多,长度大。
其中,优选的,步骤(4)生根培养的培养条件为:光照条件下培养温度为24-28℃,非光照条件下培养温度为15-20℃,光照强度为2200-3000Lux,光照时间为9-12h/d;培养时间为8-15d;利用光照和温度对植物细胞生长和激素合成的影响,通过改变培养温度和光照条件,有利于根的分化,能增加细胞密度,提高组培苗的适应性和抗病能力。
其中,优选的,步骤(4)中油菜素内酯的浓度为0.04μg/L;优选浓度条件下,培养得到的组培苗抗病性最好。
上述一种黄花菜组织培养育苗方法,其中,步骤(5)中所述的基质是指适合黄花菜秧苗生长的土壤;优选的,所述的基质包括草炭土、草木灰和沙土;最优选的,所述基质中草炭土、草木灰、沙土的质量比为3-5︰1︰1-3;通过优选,基质更利于黄花菜秧苗的根系生长,秧苗更壮硕,能提高组培苗的成活率。
与现有技术相比,本发明的有益效果:
1、本发明育苗方法在芽诱导和生根培养中添加了相应浓度的油菜素内酯,使黄花菜组培苗芽更壮硕,根更多,抗病性和适应性显著增强。
2、本发明育苗方法通过改变芽诱导的培养温度和光照条件,使芽分化更多、更壮硕,细胞密度更大,组培芽的适应性和抗病能力更强。
3、本发明育苗方法利用磁场处理来促进细胞的分化、植物激素的分泌和蛋白质的合成,使组培芽能分化出更多的根,长势更好,适应性和抗病能力更强。
4、本发明育苗方法通过改变生根培养的培养温度和光照条件,使根的分化更多,细胞密度更大,组培苗的适应性和抗病能力更强。
5、本发明育苗方法育苗周期短,数量大,黄花菜秧苗的成活率高,适合黄花菜秧苗的大规模培育。
具体实施方式
下面结合试验例及具体实施方式对本发明作进一步的详细描述。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实施例,凡基于本发明内容所实现的技术均属于本发明的范围。
实施例1
(1)选取生长健壮、无病虫害的黄花菜植株的花梗,消毒后切成厚度为0.3mm薄片;
(2)将步骤(1)的薄片接入含有浓度为3.2mg/L的6-BA和浓度为0.4mg/L的NAA愈伤组织诱导培养基中,在温度为23℃的条件下进行培养18d,得到愈伤组织;
(3)将步骤(2)培养得到的愈伤组织接入含有浓度为0.02μg/L的油菜素内酯、浓度为2.4mg/L的6-BA和浓度为0.8mg/L的NAA的芽诱导培养基中,在光照条件下培养温度为23℃、非光照条件下培养温度为18℃、光照强度为1200Lux、光照时间为9h/d的条件下进行培养25d,得到组培芽;
(4)将步骤(3)得的组培芽用强度为22mT的磁场进行处理时间8h;
(5)将步骤(4)经过磁场处理的组培芽接入含有浓度为0.04μg/L的油菜素内酯和浓度为1.2mg/L的IBA的生根培养基中,在光照条件下温度为26℃、非光照条件下培养温度为18℃、光照强度为2600Lux、光照时间为10h/d的条件下进行培养12d,得到组培苗;
(6)将步骤(5)的组培苗除去培养基后移栽入包括草炭土、草木灰、沙土的质量比为4︰1︰2的基质中,进行炼苗,炼苗完成后得到黄花菜秧苗。
实施例2
(1)选取生长健壮、无病虫害的黄花菜植株的花梗,消毒后切成厚度为0.1mm薄片;
(2)将步骤(1)的薄片接入含有浓度为2.5mg/L的6-BA和浓度为0.6mg/L的NAA愈伤组织诱导培养基中,在温度为20℃的条件下进行培养20d,得到愈伤组织;
(3)将步骤(2)培养得到的愈伤组织接入含有浓度为0.01μg/L的油菜素内酯、浓度为3.2mg/L的6-BA和浓度为0.5mg/L的NAA的芽诱导培养基中,在光照条件下培养温度为25℃、非光照条件下培养温度为15℃、光照强度为1400Lux、光照时间为8h/d的条件下进行培养20d,得到组培芽;
(4)将步骤(3)的组培芽接入含有浓度为0.03μg/L的油菜素内酯和浓度为1.8mg/L的IBA的生根培养基中,在光照条件下温度为28℃、非光照条件下培养温度为15℃、光照强度为3000Lux、光照时间为9h/d的条件下进行培养8d,得到组培苗;
(5)将步骤(4)的组培苗除去培养基后移栽入包括草炭土、草木灰、沙土的质量比为3︰1︰3的基质中,进行炼苗,炼苗完成后得到黄花菜秧苗。
实施例3
(1)选取生长健壮、无病虫害的黄花菜植株的花梗,消毒后切成厚度为0.1~0.5mm薄片;
(2)将步骤(1)的薄片接入含有浓度为4.0mg/L的6-BA和浓度为0.2mg/L的NAA愈伤组织诱导培养基中,在温度为25℃的条件下进行培养15d,得到愈伤组织;
(3)将步骤(2)培养得到的愈伤组织接入含有浓度为0.03μg/L的油菜素内酯、浓度为1.5mg/L的6-BA和浓度为0.10mg/L的NAA的芽诱导培养基中,在温度为22℃、光照强度为900Lux、光照时间为10h/d的条件下进行培养20d,得到组培芽;
(4)将步骤(3)得的组培芽用强度为30mT的磁场进行处理时间5h;
(5)将步骤(4)经过磁场处理的组培芽接入含有浓度为0.05μg/L的油菜素内酯和浓度为0.8mg/L的IBA的生根培养基中,在温度为28℃、光照强度为2200Lux、光照时间为12h/d的条件下进行培养15d,得到组培苗;
(6)将步骤(5)的组培苗除去培养基后移栽入包括草炭土、草木灰、沙土的质量比为5︰1︰3的基质中,进行炼苗,炼苗完成后得到黄花菜秧苗。
实施例4
(1)选取生长健壮、无病虫害的黄花菜植株的花梗,消毒后切成厚度为0.3mm薄片;
(2)将步骤(1)的薄片接入含有浓度为3.2mg/L的6-BA和浓度为0.4mg/L的NAA愈伤组织诱导培养基中,在温度为23℃的条件下进行培养18d,得到愈伤组织;
(3)将步骤(2)培养得到的愈伤组织接入含有浓度为0.02μg/L的油菜素内酯、浓度为2.4mg/L的6-BA和浓度为0.8mg/L的NAA的芽诱导培养基中,在温度为23℃、光照强度为1200Lux、光照时间为9h/d的条件下进行培养25d,得到组培芽;
(4)将步骤(3)的组培芽接入含有浓度为0.04μg/L的油菜素内酯和浓度为1.2mg/L的IBA的生根培养基中,在温度为26℃、光照强度为2600Lux、光照时间为10h/d的条件下进行培养12d,得到组培苗;
(5)将步骤(4)的组培苗除去培养基后移栽入包括草炭土、草木灰、沙土的质量比为6︰2︰3的基质中,进行炼苗,炼苗完成后得到黄花菜秧苗。
对比例1
(1)选取生长健壮、无病虫害的黄花菜植株的花梗,消毒后切成厚度为0.3mm薄片;
(2)将步骤(1)的薄片接入含有浓度为3.2mg/L的6-BA和浓度为0.4mg/L的NAA愈伤组织诱导培养基中,在温度为23℃的条件下进行培养18d,得到愈伤组织;
(3)将步骤(2)培养得到的愈伤组织接入含有浓度为2.4mg/L的6-BA和浓度为0.8mg/L的NAA的芽诱导培养基中,在光照条件下培养温度为23℃、非光照条件下培养温度为18℃、光照强度为1200Lux、光照时间为9h/d的条件下进行培养25d,得到组培芽;
(4)将步骤(3)得的组培芽用强度为22mT的磁场进行处理时间8h;
(5)将步骤(4)经过磁场处理的组培芽接入含有浓度为1.2mg/L的IBA的生根培养基中,在光照条件下温度为26℃、非光照条件下培养温度为18℃、光照强度为2600Lux、光照时间为10h/d的条件下进行培养12d,得到组培苗;
(6)将步骤(5)的组培苗除去培养基后移栽入包括草炭土、草木灰、沙土的质量比为4︰1︰2的基质中,进行炼苗,炼苗完成后得到黄花菜秧苗。
对比例2
(1)选取生长健壮、无病虫害的黄花菜植株的花梗,消毒后切成厚度为0.3mm薄片;
(2)将步骤(1)的薄片接入含有浓度为3.2mg/L的6-BA和浓度为0.4mg/L的NAA愈伤组织诱导培养基中,在温度为23℃的条件下进行培养18d,得到愈伤组织;
(3)将步骤(2)培养得到的愈伤组织接入含有浓度为0.04μg/L的油菜素内酯、浓度为2.4mg/L的6-BA和浓度为0.8mg/L的NAA的芽诱导培养基中,在光照条件下培养温度为23℃、非光照条件下培养温度为18℃、光照强度为1200Lux、光照时间为9h/d的条件下进行培养25d,得到组培芽;
(4)将步骤(3)得的组培芽用强度为22mT的磁场进行处理时间8h;
(5)将步骤(4)经过磁场处理的组培芽接入含有浓度为0.06μg/L的油菜素内酯和浓度为1.2mg/L的IBA的生根培养基中,在光照条件下温度为26℃、非光照条件下培养温度为18℃、光照强度为2600Lux、光照时间为10h/d的条件下进行培养12d,得到组培苗;
(6)将步骤(5)的组培苗除去培养基后移栽入包括草炭土、草木灰、沙土的质量比为4︰1︰2的基质中,进行炼苗,炼苗完成后得到黄花菜秧苗。
对比例3
(1)选取生长健壮、无病虫害的黄花菜植株的花梗,消毒后切成厚度为0.3mm薄片;
(2)将步骤(1)的薄片接入含有浓度为3.2mg/L的6-BA和浓度为0.4mg/L的NAA愈伤组织诱导培养基中,在温度为23℃的条件下进行培养18d,得到愈伤组织;
(3)将步骤(2)培养得到的愈伤组织接入含有浓度为0.008μg/L的油菜素内酯、浓度为2.4mg/L的6-BA和浓度为0.8mg/L的NAA的芽诱导培养基中,在光照条件下培养温度为23℃、非光照条件下培养温度为18℃、光照强度为1200Lux、光照时间为9h/d的条件下进行培养25d,得到组培芽;
(4)将步骤(3)得的组培芽用强度为22mT的磁场进行处理时间8h;
(5)将步骤(4)经过磁场处理的组培芽接入含有浓度为0.02μg/L的油菜素内酯和浓度为1.2mg/L的IBA的生根培养基中,在光照条件下温度为26℃、非光照条件下培养温度为18℃、光照强度为2600Lux、光照时间为10h/d的条件下进行培养12d,得到组培苗;
(6)将步骤(5)的组培苗除去培养基后移栽入包括草炭土、草木灰、沙土的质量比为4︰1︰2的基质中,进行炼苗,炼苗完成后得到黄花菜秧苗。
对比例4
(1)选取生长健壮、无病虫害的黄花菜植株的花梗,消毒后切成厚度为0.3mm薄片;
(2)将步骤(1)的薄片接入含有浓度为3.2mg/L的6-BA和浓度为0.4mg/L的NAA愈伤组织诱导培养基中,在温度为23℃的条件下进行培养18d,得到愈伤组织;
(3)将步骤(2)培养得到的愈伤组织接入含有浓度为2.4mg/L的6-BA和浓度为0.8mg/L的NAA的芽诱导培养基中,在温度为23℃、光照强度为1200Lux、光照时间为9h/d的条件下进行培养25d,得到组培芽;
(4)将步骤(3)的组培芽接入含有浓度为1.2mg/L的IBA的生根培养基中,在温度为26℃、光照强度为2600Lux、光照时间为10h/d的条件下进行培养12d,得到组培苗;
(5)将步骤(4)的组培苗除去培养基后移栽入包括草炭土、草木灰、沙土的质量比为4︰1︰2的基质中,进行炼苗,炼苗完成后得到黄花菜秧苗。
将上述实施例1-4和对比例1-4的培育得到的黄花菜组培苗,对植株进行测量,并移栽到大田中,统计成活率和得病率,结果如下:
序号 | 株高(cm) | 直径(cm) | ≥4条根占比(%) | 根长度(cm) | 得病率(%) | 成活率(%) |
实施例1 | 8.5 | 0.76 | 68.9 | 3.2 | 5.6 | 97.7 |
实施例2 | 9.2 | 0.73 | 63.4 | 2.8 | 5.8 | 96.5 |
实施例3 | 9.7 | 0.68 | 65.6 | 2.5 | 6.1 | 96.1 |
实施例4 | 10.2 | 0.62 | 61.3 | 2.7 | 7.2 | 95.5 |
对比例1 | 7.6 | 0.48 | 51.3 | 2.3 | 18.6 | 92.6 |
对比例2 | 10.3 | 0.62 | 53.1 | 3.4 | 16.2 | 93.8 |
对比例3 | 7.9 | 0.51 | 47.6 | 1.6 | 20.6 | 91.3 |
对比例4 | 9.1 | 0.48 | 42.2 | 1.5 | 23.8 | 89.5 |
通过以上数据可知:本发明实施例1-4培育得到的黄花菜秧苗更壮硕,根数量多,得病率低,成活率高;尤其是实施例1,为最佳实施方案,得到的黄花菜秧苗品质最好;实施例2中未采用优选,未进行磁场处理,得到秧苗根数量较少,得病率增加,成活率降低;实施例3未采用优选,未在芽诱导和生根培养过程中对温度进行特殊调控,得到的秧苗直径减小,得病率增加,成活率降低;实施例4中未采用优选,未进行磁场处理和温度的特殊调控,得到的秧苗直径小,根数量少,得病率增加,成活率降低;对比例1中未添加油菜素内酯,得到的秧苗株高、直径、根数量和成活率都显著减小,得病率显著提高;对比例2、3中加入的油菜素内酯不在本申请规定范围内,得到的秧苗株高、直径、根数量和成活率都显著减小,得病率显著提高;对比例4为现有的常规黄花菜秧苗培育方法,得到的秧苗品质差。
Claims (10)
1.一种黄花菜组织培养育苗方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)外植体的选择和处理:选取生长健壮、无病虫害植株的花梗,消毒后切成薄片;
(2)愈伤组织的培养:将步骤(1)的薄片接入愈伤组织诱导培养基中进行培养,得到愈伤组织;
(3)芽诱导:将步骤(2)培养得到的愈伤组织接入含有浓度为0.01-0.03μg/L的油菜素内酯的芽诱导培养基中进行培养,得到组培芽;
(4)进行生根培养:将步骤(3)的组培芽接入含有浓度为0.03-0.05μg/L的油菜素内酯的生根培养基中进行培养,得到组培苗;
(5)移栽炼苗:将步骤(4)的组培苗除去培养基后移栽入基质中,进行炼苗,炼苗完成后得到黄花菜秧苗。
2.根据权利要求1所述的育苗方法,其特征在于,步骤(2)中所述的愈伤组织诱导培养基中含有浓度为2.5-4.0mg/L的6-BA和浓度为0.2-0.6mg/L的NAA。
3.根据权利要求1所述的育苗方法,其特征在于,步骤(3)中所述的芽诱导培养基中含有浓度为1.5-3.2mg/L的6-BA和浓度为0.5-0.10mg/L的NAA。
4.根据权利要求1所述的育苗方法,其特征在于,步骤(3)中芽诱导的培养条件为:光照条件下培养温度为22-25℃,非光照条件下培养温度为15-20℃,光照强度为900-1400Lux,光照时间为8-10h/d;培养时间为20-30d。
5.根据权利要求1所述的育苗方法,其特征在于,还包括对组培芽的磁场处理;所述磁场处理在组培芽的生根培养前。
6.根据权利要求5所述的育苗方法,其特征在于,所述磁场处理中的磁场强度为10-30mT,处理时间为5-10h。
7.根据权利要求1所述的育苗方法,其特征在于,步骤(4)中所述的生根培养基中含有浓度为0.8-1.8mg/L的IBA。
8.根据权利要求1所述的育苗方法,其特征在于,步骤(4)中生根培养的培养条件为:光照条件下培养温度为24-28℃,非光照条件下培养温度为15-20℃,光照强度为2200-3000Lux,光照时间为9-12h/d;培养时间为8-15d。
9.根据权利要求1所述的育苗方法,其特征在于,步骤(5)中所述的基质包括草炭土、草木灰和沙土。
10.根据权利要求9所述的育苗方法,其特征在于,所述基质中草炭土、草木灰、沙土的质量比为3-5︰1︰1-3。
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CN201810621638.5A CN108887178A (zh) | 2018-06-15 | 2018-06-15 | 一种黄花菜组织培养育苗方法 |
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Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113396784A (zh) * | 2021-05-20 | 2021-09-17 | 中国农业大学 | 一种基于芽体切分提高黄花菜繁殖系数的扦插育苗方法 |
CN113475322A (zh) * | 2021-05-27 | 2021-10-08 | 中国农业大学 | 一种利用细胞分裂素提高黄花菜繁殖系数的扦插育苗方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101755681A (zh) * | 2008-11-28 | 2010-06-30 | 北京玉佳明三态离子科学研究院有限公司 | 磁场促长式植物细胞组织培养促长机的制造方法 |
CN105766619A (zh) * | 2016-03-18 | 2016-07-20 | 刘翠平 | 一种黄花菜种子的培育方法 |
-
2018
- 2018-06-15 CN CN201810621638.5A patent/CN108887178A/zh active Pending
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101755681A (zh) * | 2008-11-28 | 2010-06-30 | 北京玉佳明三态离子科学研究院有限公司 | 磁场促长式植物细胞组织培养促长机的制造方法 |
CN105766619A (zh) * | 2016-03-18 | 2016-07-20 | 刘翠平 | 一种黄花菜种子的培育方法 |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
于中涛等: "《农业科技成果的推广与转化》", 31 October 1996, 中国农业科技出版社 * |
何和明等: "油菜素内酯生物学效应及其应用", 《海南大学学报自然科学版》 * |
唐世建等: "黄花菜组织培养在工厂化繁殖中的应用", 《湖南农业大学学报(自然科学版)》 * |
胡继金等: "黄花菜组织培养的快速繁殖及程序", 《湖南农学院学报》 * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113396784A (zh) * | 2021-05-20 | 2021-09-17 | 中国农业大学 | 一种基于芽体切分提高黄花菜繁殖系数的扦插育苗方法 |
CN113475322A (zh) * | 2021-05-27 | 2021-10-08 | 中国农业大学 | 一种利用细胞分裂素提高黄花菜繁殖系数的扦插育苗方法 |
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