CN108293557A - 一种苗木繁育增根的方法 - Google Patents

Abstract

本发明公开了一种苗木繁育增根的方法，包括籽种优选、种子冷藏、种子沙藏、营养基质准备、容器育苗、移植营养钵、大田移植步骤；人为干预植物根系的生长，使植株根系按照人工控制的方向、大小和形状发育，为幼苗发育和移栽后苗木生长创造优越的条件，解决了传统的育苗周期过长、土地条件要求高、移植受季节限制和成活率低、一般容器育苗主根缠绕等问题，在植树造林、庭院绿化、环境整治等城市环境建设方面有着广阔的应用前景，特别对水土保持用苗木的培育、移栽和恶劣环境下(矿山复垦)的植树造林有明显的优势。

Description

一种苗木繁育增根的方法

技术领域

本发明属于苗木繁育技术领域，具体涉及一种苗木繁育增根的方法。

背景技术

生态环境建设，主要通过开展植树种草，治理水土流失，防治荒漠化，建设生态农业等方式，建设祖国秀美山川与城市生态环境。是我国经济、社会可持续发展的基础。

传统的苗木生产方式，使园林绿化中树种种植时间受到限制，树木移栽成活率不能保证，传统的绿化树种栽植方式已无法满足富有内涵的多层次园林景观的要求，严重制约我国生态建设发展的步伐，特别是西北生态环境比较脆弱的地区。

本发明专利是从生物科学的规律出发，研究解决了苗木繁育的根本的问题，从植物的营养供给侧突破了传统的育苗技术难题。

发明内容

本发明的目的在于提供一种苗木繁育增根的方法，以解决上述技术问题。

为实现上述目的本发明采用以下技术方案：一种苗木繁育增根的方法，包括如下步骤：

步骤1、籽种优选；

在选定目标树种后，采收成熟籽种、晾晒干燥防霉变，并采用风选与浮选法将目标种子的杂质以及瘪空种子去除，然后杀虫、消毒，封装到纯棉质布袋中备用；

步骤2、种子冷藏；

将收集的植物种子放入冷藏室让其完成休眠，以保证休眠期种子再熟化与种子内部的能量转化，冷藏温度控制在-18℃～-5℃范围，相对湿度不大于60％，储藏时间50～70天；

步骤3、种子沙藏；

完成休眠期的种子，在冷藏温度降至-5℃～0℃度时，转而进行低温沙藏，温度为0℃～5℃，沙藏前视种子特性进行浸种，用质量浓度为2％～3％的高锰酸钾溶液浸种30min后取出，沙子湿度为60％适宜，沙藏天数为20～30天，观察种子露白后适时播种；

步骤4、营养基质土准备；

用来配制营养基质土的材料以泥炭土、腐殖质土为主，辅以未经耕种的山地土、磨碎的树皮、稻壳、蛭石和珍珠岩，添加经过高温发酵的生物有机肥，选用经过火烧或高温消毒过的土壤，消灭病虫害及杂草种子；

步骤5、容器育苗；

将经过沙藏已经露白的种子放入容器中使用营养基质土进行育苗，并做好苗木病菌预防、幼苗遮阴、二次增根；

步骤6、移植营养钵，容器育苗，3～5天后，喷灌0.15％～0.2％尿素加0.05％ABT溶液混合，喷灌强度控制在0.75～1.00ml/cm²之间，尿素是有机态氮肥，经过土壤中的脲酶作用，水解成碳酸铵或碳酸氢铵后，才能被作物吸收利用；中途根据需要交替喷施叶面肥与营养液数次，又经过45～60天，复次增根又受到容器孔径的限制；若需进行继续下一轮持续增根，就需要更大一号的容器控根钵体，若就此完成控根，重复二次增根后，将苗木移植到营养钵中，12小时后，灌透稳根水肥即完成；

步骤7、大田移植，在大棚中培育120～150天，完成苗木两次人工干预增根后，移植到大田中，成活率99％；与自然培育根对比系比较，比表面积增加8～22倍。

作为本发明进一步的方案：苗木繁育的容器包括营养钵和托盘，营养钵为金属质薄壁钵体，形状为直径60mm(底部)×直径80mm(口部)×壁部90mm(高度)的杯状结构，其底部与侧壁均匀分布直径3mm控制根系发育的圆孔；容器的开孔直径为3mm，对于培育特殊的树种，根据需要开孔；

经过控根后，二次增根采用抹去容器外面的枯萎茅根，将植物苗上移20～30mm后，重新培土并使用生根诱导剂激发根系发育，直至70～80％的控根效果时，再次将苗木移栽至大号营养钵中培育；

托盘，为再生硬质塑料质或木质托盘，托盘容积为500mm(长)×400mm(宽)×125mm(高)。

作为本发明进一步的方案：步骤4中营养基质的选择应充分利用当地的土壤和肥源，因地制宜，选择腐殖质土与生物有机肥按3：1比例配制育苗基质，采集的基质要粉碎过筛，除去杂物，充分拌匀，选用40％五氯硝基苯对营养土进行消毒处理；其中有机质含量不少于15％，同时要含有充足的速效氮、磷、钾元素，其中速效氮不少于100毫克/千克，速效磷不少于150毫克/千克，速效钾肥每立方厘米的重量不大于1.5克，pH值控制在6.8～7.3之间。

作为本发明进一步的方案：所述步骤5容器育苗具体过程如下：

a、将准备好的容器，用2％硫酸铜和3％生石灰，分别溶解过滤后，将硫酸铜倒入浓石灰乳中，充分搅拌，得到波尔多液，对所用容器场地等喷洒消毒灭菌，

b、容器码盘，是将容器码放在底部垫有20～30mm的托盘中，容器周边用基质土填充，容器内填充30～40mm的基质土；

c、下种，将经过沙藏已经露白的种子放入容器中心，覆盖30～40mm基质土后压实；

d、托盘上架，育苗大棚中搭设放置托盘的架板，使苗木盘架能灵活移动，方便工厂化生产，将下种后托盘放置在苗架上；

e、完成下种上架工作后，开启喷灌系统，集中喷灌中水，第一次喷灌控制在0.75～1.00ml/cm²之间；大棚内温度控制在22～25℃之间；湿度控制在80％～90％之间，湿度不够时喷雾加湿；

f、病菌预防，露牙出苗后三到五天内喷施70％甲基托布津0.15％，缩二脲0.25％防治有害病菌，隔7～10天喷1次，共喷3～5次；

g、幼苗遮阴，将大棚内设置遮阳卷帘透光率3～5％提高至22％，前15天内将透光率逐步升至8～10％；15～40天期间将透光率稳定在8～12％之间，这时根质比及SPAD值均达到最高值，以促进叶绿素光合作用供给根系生长。40～60天期间将透光率逐步提高至22％；

h、二次增根，经过初期控根过程，使苗木的主侧根系发育均匀，并受到容器孔径的限制，容器内侧已经环状隆起，致使细胞有栓质化和木质化的增厚，外部根须逐渐萎缩，内部结扎部分储备了突发中柱鞘细胞的分生潜能，容器外侧中柱鞘细胞供给受阻萎缩程度不一，观察其中大于50％的萎缩根须时，将容器取出，去除容器外侧的根须，将苗木及其营养基一起取出，给断掉的根须周围喷施1％槲皮素消毒液后，静置1～2小时，复喷一次槲皮素消毒液；再次静置1～2小时后，喷施0.5％ABT生根粉液体，间隔20～30分钟再喷施两次，以补充外源生长素及促进内源生长素合成特性；

经过处理后的苗木，再次移植至容器内，在用量具等量加入容器基质土20～30mm高度，放入处理好的苗木，周边将基质土拥实，均匀码盘，并在容器周边填充基质土压实，完成上述工序后上架，码放整齐；8～12小时后，喷淋0.125％硼镁肥溶液，喷淋强度控制在0.1～0.25ml/cm²之间，以便通过增强叶面光合作用获得能量，修复根须系统，并催生部分维管形成新的根须，根须结扎环切部分，能催生出4～8条不定根，从而扩大了植物的根系，细胞具有了再生能力。

本发明的有益效果是：本发明人为干预植物根系的生长，通过容器育苗以及使用营养基质土改善栽培管理措施，调控植物内源激素的含量、促进生物大分子的合成，诱导植物不定根或不定芽的形态建成，调节植物代谢作用强度，使目标植物其裸根速生倍增，使植株根系按照人工控制的方向、大小和形状发育，为幼苗发育和移栽后苗木生长创造优越的条件，解决了传统的育苗周期过长、土地条件要求高、移植受季节限制和成活率低、一般容器育苗主根缠绕等问题，在植树造林、庭院绿化、环境整治等城市环境建设方面有着广阔的应用前景，特别、对水土保持用苗木的培育、移栽和恶劣环境下(矿山复垦)的植树造林有明显的优势。

具体实施方式

下面结合具体实施例对本发明进行详细说明。

一种苗木繁育增根的方法，包括如下步骤：

步骤1、籽种优选；

在选定目标树种后，采收成熟籽种、晾晒干燥防霉变，并采用风选与浮选法将目标种子的杂质以及瘪空种子去除，然后杀虫、消毒，封装到纯棉质布袋中备用；

步骤2、种子冷藏；

将收集的植物种子放入冷藏室让其完成休眠，以保证休眠期种子再熟化与种子内部的能量转化，冷藏温度控制在-18℃～-5℃范围，相对湿度不大于60％，储藏时间50～70天；

步骤3、种子沙藏；

完成休眠期的种子，在冷藏温度降至-5℃～0℃度时，转而进行低温沙藏，温度为0℃～5℃，沙藏前视种子特性进行浸种，用质量浓度为2％～3％的高锰酸钾溶液浸种30min后取出，沙子湿度为60％适宜，沙藏天数为20～30天，观察种子露白后适时播种；

步骤4、营养基质土准备；

用来配制营养基质土的材料以泥炭土、腐殖质土为主，辅以未经耕种的山地土、磨碎的树皮、稻壳、蛭石和珍珠岩，添加经过高温发酵的生物有机肥，选用经过火烧或高温消毒过的土壤，消灭病虫害及杂草种子；营养基质的选择应充分利用当地的土壤和肥源，因地制宜，选择腐殖质土与生物有机肥按3∶1比例配制育苗基质，采集的基质要粉碎过筛，除去杂物，充分拌匀，选用40％五氯硝基苯对营养土进行消毒处理；其中有机质含量不少于15％，同时要含有充足的速效氮、磷、钾元素，其中速效氮不少于100毫克/千克，速效磷不少于150毫克/千克，速效钾肥每立方厘米的重量不大于1.5克，pH值控制在6.8～7.3之间。

步骤5、容器育苗；

将经过沙藏已经露白的种子放入容器中使用营养基质土进行育苗，并做好苗木病菌预防、幼苗遮阴、二次增根；

其中苗木繁育的容器包括营养钵和托盘，营养钵为金属质薄壁钵体，形状为直径60mm(底部)×直径80mm(口部)×壁部90mm(高度)的杯状结构，其底部与侧壁均匀分布直径3mm控制根系发育的圆孔；容器的开孔直径为3mm，对于培育特殊的树种，根据需要开孔；

经过控根后，二次增根采用抹去容器外面的枯萎茅根，将植物苗上移20～30mm后，重新培土并使用生根诱导剂激发根系发育，直至70～80％的控根效果时，再次将苗木移栽至大号营养钵中培育；

托盘，为再生硬质塑料质或木质托盘，托盘容纳为500mm(长)×400mm(宽)×125mm(高)。

具体过程如下：

a、将准备好的容器，用2％硫酸铜和3％生石灰，分别溶解过滤后，将硫酸铜倒入浓石灰乳中，充分搅拌，得到波尔多液，对所用容器场地等喷洒消毒灭菌，

b、容器码盘，是将容器码放在底部垫有20～30mm的托盘中，容器周边用基质土填充，容器内填充30～40mm的基质土；

c、下种，将经过沙藏已经露白的种子放入容器中心，覆盖30～40mm基质土后压实；

d、托盘上架，育苗大棚中搭设放置托盘的架板，使苗木盘架能灵活移动，方便工厂化生产，将下种后托盘放置在苗架上；

e、完成下种上架工作后，开启喷灌系统，集中喷灌中水，第一次喷灌控制在0.75～1.00ml/cm²之间；大棚内温度控制在22～25℃之间；湿度控制在80％～90％之间，湿度不够时喷雾加湿；

f、病菌预防，露牙出苗后三到五天内喷施70％甲基托布津0.15％，缩二脲0.25％防治有害病菌，隔7～10天喷1次，共喷3～5次；

g、幼苗遮阴，将大棚内设置遮阳卷帘透光率3～5％提高至22％，前15天内将透光率逐步升至8～10％；15～40天期间将透光率稳定在8～12％之间，这时根质比及SPAD值均达到最高值，以促进叶绿素光合作用供给根系生长。40～60天期间将透光率逐步提高至22％；

h、二次增根，经过初期控根过程，使苗木的主侧根系发育均匀，并受到容器孔径的限制，容器内侧已经环状隆起，致使细胞有栓质化和木质化的增厚，外部根须逐渐萎缩，内部结扎部分储备了突发中柱鞘细胞的分生潜能，容器外侧中柱鞘细胞供给受阻萎缩程度不一，观察其中大于50％的萎缩根须时，将容器取出，去除容器外侧的根须，将苗木及其营养基一起取出，给断掉的根须周围喷施1％槲皮素消毒液后，静置1～2小时，复喷一次槲皮素消毒液；再次静置1～2小时后，喷施0.5％ABT生根粉液体，间隔20～30分钟再喷施两次，以补充外源生长素及促进内源生长素合成特性；

经过处理后的苗木，再次移植至容器内，在用量具等量加入容器基质土20～30mm高度，放入处理好的苗木，周边将基质土拥实，均匀码盘，并在容器周边填充基质土压实，完成上述工序后上架，码放整齐；8～12小时后，喷淋0.125％硼镁肥溶液，喷淋强度控制在0.1～0.25ml/cm²之间，以便通过增强叶面光合作用获得能量，修复根须系统，并催生部分维管形成新的根须，根须结扎环切部分，能催生出4～8条不定根，从而扩大了植物的根系，细胞具有了再生能力。

步骤6、移植营养钵，容器育苗，3～5天后，喷灌0.15％～0.2％尿素加0.05％ABT溶液混合，喷灌强度控制在0.75～1.00ml/cm²之间，尿素是有机态氮肥，经过土壤中的脲酶作用，水解成碳酸铵或碳酸氢铵后，才能被作物吸收利用；中途根据需要交替喷施叶面肥与营养液数次，又经过45～60天，复次增根又受到容器孔径的限制；若需进行继续下一轮持续增根，就需要更大一号的容器控根钵体，若就此完成控根，重复步骤5中h步二次增根后，将苗木移植到营养钵中，12小时后，灌透稳根水肥即完成；

步骤7、大田移植，在大棚中培育120～150天，完成苗木两次人工干预增根后，移植到大田中，成活率99％；与自然培育根对比系比较，比表面积增加8～22倍。

以上所述为本发明较佳实施例，对于本领域的普通技术人员而言，根据本发明的教导，在不脱离本发明的原理与精神的情况下，对实施方式所进行的改变、修改、替换和变型仍落入本发明的保护范围之内。

Claims (4)

1.一种苗木繁育增根的方法，其特征在于，包括如下步骤：

步骤1、籽种优选；

在选定目标树种后，采收成熟籽种、晾晒干燥防霉变，并采用风选与浮选法将目标种子的杂质以及瘪空种子去除，然后杀虫、消毒，封装到纯棉质布袋中备用；

步骤2、种子冷藏；

将收集的植物种子放入冷藏室让其完成休眠，以保证休眠期种子再熟化与种子内部的能量转化，冷藏温度控制在-18℃～-5℃范围，相对湿度不大于60％，储藏时间50～70天；

步骤3、种子沙藏；

完成休眠期的种子，在冷藏温度降至-5℃～0℃度时，转而进行低温沙藏，温度为0℃～5℃，沙藏前视种子特性进行浸种，用质量浓度为2％～3％的高锰酸钾溶液浸种30min后取出，沙子湿度为60％适宜，沙藏天数为20～30天，观察种子露白后适时播种；

步骤4、营养基质土准备；

用来配制营养基质土的材料以泥炭土、腐殖质土为主，辅以未经耕种的山地土、磨碎的树皮、稻壳、蛭石和珍珠岩，添加经过高温发酵的生物有机肥，选用经过火烧或高温消毒过的土壤，消灭病虫害及杂草种子；

步骤5、容器育苗；

将经过沙藏已经露白的种子放入容器中使用营养基质土进行育苗，并做好苗木病菌预防、幼苗遮阴、二次增根；

步骤6、移植营养钵，容器育苗，3～5天后，喷灌0.15％～0.2％尿素加0.05％ABT溶液混合，喷灌强度控制在0.75～1.00ml/cm²之间，尿素是有机态氮肥，经过土壤中的脲酶作用，水解成碳酸铵或碳酸氢铵后，才能被作物吸收利用；中途根据需要交替喷施叶面肥与营养液数次，又经过45～60天，复次增根又受到容器孔径的限制；若需进行继续下一轮持续增根，就需要更大一号的容器控根钵体，若就此完成控根，重复二次增根后，将苗木移植到营养钵中，12小时后，灌透稳根水肥即完成；

步骤7、大田移植，在大棚中培育120～150天，完成苗木两次人工干预增根后，移植到大田中，成活率99％；与自然培育根系比较，比表面积增加8～22倍。

2.根据权利要求1所述的一种苗木繁育增根的方法，其特征在于，苗木繁育的容器包括营养钵和托盘，营养钵为金属质薄壁钵体，形状为直径60mm(底部)×直径80mm(口部)×壁部90mm(高度)的杯状结构，其底部与侧壁均匀分布直径3mm控制根系发育的圆孔；容器的开孔直径为3mm，对于培育特殊的树种，根据需要开孔；

经过控根后，二次增根采用抹去容器外面的枯萎茅根，将植物苗上移20～30mm后，重新培土并使用生根诱导剂激发根系发育，直至70～80％的控根效果时，再次将苗木移栽至大号营养钵中培育；

托盘，为再生硬质塑料质或木质托盘，托盘容积为500mm(长)×400mm(宽)×125mm(高)。

3.根据权利要求1所述的一种苗木繁育增根的方法，其特征在于，步骤4中营养基质的选择应充分利用当地的土壤和肥源，因地制宜，选择腐殖质土与生物有机肥按3∶1比例配制育苗基质，采集的基质要粉碎过筛，除去杂物，充分拌匀，选用40％五氯硝基苯对营养土进行消毒处理；其中有机质含量不少于15％，同时要含有充足的速效氮、磷、钾元素，其中速效氮不少于100毫克/千克，速效磷不少于150毫克/千克，速效钾肥每立方厘米的重量不大于1.5克，pH值控制在6.8～7.3之间。

4.根据权利要求1所述的一种苗木繁育增根的方法，其特征在于，所述步骤5容器育苗具体过程如下：

a、将准备好的容器，用2％硫酸铜和3％生石灰，分别溶解过滤后，将硫酸铜倒入浓石灰乳中，充分搅拌，得到波尔多液，对所用容器场地等喷洒消毒灭菌，

b、容器码盘，是将容器码放在底部垫有20～30mm基质的托盘中，容器周边用基质土填充，容器内填充30～40mm的基质土；

c、下种，将经过沙藏已经露白的种子放入容器中心，覆盖30～40mm基质土后压实；

d、托盘上架，育苗大棚中搭设放置托盘的架板，使苗木盘架能灵活移动，方便工厂化生产，将下种后托盘放置在苗架上；

e、完成下种上架工作后，开启喷灌系统，集中喷灌中水，第一次喷灌控制在0.75～1.00ml/cm²之间；大棚内温度控制在22～25℃之间；湿度控制在80％～90％之间，湿度不够时喷雾加湿；

f、病菌预防，露牙出苗后三到五天内喷施70％甲基托布津0.15％，缩二脲0.25％防治有害病菌，隔7～10天喷1次，共喷3～5次；

g、幼苗遮阴，将大棚内设置遮阳卷帘透光率3～5％提高至22％，前15天内将透光率逐步升至8～10％；15～40天期间将透光率稳定在8～12％之间，这时根质比及SPAD值均达到最高值，以促进叶绿素光合作用供给根系生长；40～60天期间将透光率逐步提高至22％；

h、二次增根，经过初期控根过程，使苗木的主侧根系发育均匀，并受到容器孔径的限制，容器内侧已经环状隆起，致使细胞有栓质化和木质化的增厚，外部根须逐渐萎缩，内部结扎部分储备了突发中柱鞘细胞的分生潜能，容器外侧中柱鞘细胞供给受阻萎缩程度不一，观察其中大于50％的萎缩根须时，将容器取出，去除容器外侧的根须，将苗木及其营养基一起取出，给断掉的根须周围喷施1％槲皮素消毒液后，静置1～2小时，复喷一次槲皮素消毒液；再次静置1～2小时后，喷施0.5％ABT生根粉液体，间隔20～30分钟再喷施两次，以补充外源生长素及促进内源生长素合成特性；

经过处理后的苗木，再次移植至容器内，在用量具等量加入容器基质土20～30mm高度，放入处理好的苗木，周边将基质土拥实，均匀码盘，并在容器周边填充基质土压实，完成上述工序后上架，码放整齐；8～12小时后，喷淋0.125％硼镁肥溶液，喷淋强度控制在0.1～0.25ml/cm²之间，以便通过增强叶面光合作用获得能量，修复根须系统，并催生部分维管形成新的根须，根须结扎环切部分，能催生出4～8条不定根，从而扩大了植物的根系，细胞具有了再生能力。