CN106046193B - 一种海藻多糖p155及其制备工艺 - Google Patents

一种海藻多糖p155及其制备工艺 Download PDF

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Abstract

本发明提供一种海藻多糖P155及其制备工艺,采用多级串联柱纯化方式,上样液在层析柱间依次流动,溶液中乙醇有助于杂质的溶解,而使需要去除的杂质分别吸附在不同介质的层析柱上,海藻多糖最终吸附在阴离子交换柱上,实现一次性洗脱收集,极大地简化了纯化工艺流程;制备工艺不采用季铵盐等有机试剂,减少了安全隐患,取消了繁杂的有机试剂去除过程,体现了绿色环保的生成理念实现无污染排放等特点;本发明制备工艺降低了生产成本,是一种无污染、低成本、简洁实用的海藻多糖的制备工艺。

Description

一种海藻多糖P155及其制备工艺
技术领域:
本发明提供一种海藻多糖P155,本发明进一步公开了该海藻多糖P155的制备工艺,属于海洋植物提取制备技术领域。
技术背景:
多项研究表明,海藻多糖具有多种生物学活性和广泛的药用价值,越来越受到人们的重视,现已有多种从藻类植物中提取海藻多糖方法,但现有的海藻多糖提取方法多采用耗能大、污染重、成本高的生产流程,制备过程中多采用对人有害,特别是提取过程中经常使用氯化十六烷吡啶(CPC)与十六烷基三甲基溴化铵(CTMAB)等季铵盐沉淀海藻多糖,而这类季铵盐具有杀菌消毒作用,除食入毒性外,还有很强吸入毒性,对皮肤、粘膜具有强刺激作用,操作时需认真防护,同时这类季铵盐在后期处理中难以去除,去除操作增加了生产成本。
发明内容:
本发明提供一种海藻多糖P155,为一种新的海藻多糖,可用于制药、食品等技术领域。
本发明进一步提供了一种海藻多糖P155的制备工艺,克服现有海藻多糖制备工艺中的不足,创建一种无污染、低成本、简洁实用的海藻多糖的制备工艺。
本发明所述的一种海藻多糖P155的制备工艺,包括以下步骤:
1)将海带洗净后剪碎,60~90℃烤箱脱水干燥,用粉碎机破碎成细颗粒,过30目筛网;
2)热水浸提:海带颗粒按4~6倍体积加入纯净水,在回流提取装置中80~85℃浸提3~6小时,反复浸提2次,减压浓缩,合并浸提液;
3)滤液收集:浸提液用纱布过滤,收集过滤清液;
4)调酸沉淀:用盐酸将过滤清液调节至pH 2.0,搅拌均匀;
5)离取上清:将调酸的浸提液8000rpm离心30分钟,收集上清液;
6)调碱中和:用氢氧化钠将上述离心上清液调节至中性;
7)超滤浓缩:用100kD超滤膜包进行循环浓缩,同时进行纯水置换除盐;
8)低温醇析:将浓缩液用无水乙醇调整至浓度85%,低温醇析;
9)析出分离:醇析液3000rpm离心20分钟,吸去上清,保留粗多糖结晶沉淀;
10)乙醇洗涤:用无水乙醇将粗多糖结晶离心洗涤2次;
11)粗多糖收集:将收集到的粗多糖结晶自然干燥;
12)大孔树脂去杂质:将粗多糖按1g/20ml比例溶解于6%乙醇水中,过AB-8大孔树脂去除色素等杂质;
13)大孔树脂去蛋白:将步骤12)的柱流出液直接同过HPD-600大孔树脂,进一步去除粗多糖中色素,同时去除粗多糖中的蛋白质;
14)离子交换柱层析:将步骤13)的柱流出液直接通过平衡好的DEAE SepharoseCL-6B阴离子层析柱,用0.2mol/L NaCl冲洗层析柱,用0.2-1mol/L NaCl溶液对吸附在离子交换柱上的多糖进行线性洗脱,收集第二个主要洗脱峰组分;
15)凝胶过滤柱层析:将步骤14)离子交换层析分离组分浓缩后,过0.05mol/LNaCl平衡过的Sephadex G-200凝胶过滤柱层析,对离子交换层析分离组分进行进一步纯化;
16)超滤浓缩:步骤15)的纯化液用100kD超滤浓缩除盐;
17)真空干燥:对浓缩后的海藻多糖进行真空干燥或冷冻干燥, 即得。
本发明所述的海藻多糖P155在医药产品、食品和日用品开发方面具有广阔的应用前景。
本发明在制备过程中均未使用有机试剂,在去除海藻中蛋白质的过程中采用树脂吸附的方式,避免了有害试剂的应用。本发明工艺采用多级串联柱纯化方式,上样液在层析柱间依次流动,溶液中6%的乙醇有助于杂质的溶解,而使需要去除的杂质分别吸附在不同介质的层析柱上,海藻多糖最终吸附在阴离子交换柱上,实现一次性洗脱收集,极大地简化了纯化工艺流程。
本发明的积极效果在于:制备工艺不采用季铵盐等有机试剂,减少了安全隐患,取消了繁杂的有机试剂去除过程,体现了绿色环保的生成理念实现无污染排放等特点;采用多级串联柱纯化方式,使杂质及产物分别吸附在各自不同的层析柱上,实现一次性洗脱收集,极大地简化了纯化工艺流程,降低了生产成本,是一种无污染、低成本、简洁实用的海藻多糖的制备工艺。
附图说明
图1为实施例1离子交换层析图谱;
图2为实施例1凝胶过滤层析图谱;
图3为实施例2离子交换层析图谱;
图4为实施例2凝胶过滤层析图谱;
图5为实施例3离子交换层析图谱;
图6为实施例3凝胶过滤层析图谱。
具体实施方式
下面结合具体实验例对本发明作进一步说明,但并不仅仅限于以下实施例。
实施例1:
1)将海带洗净后剪碎,60℃烤箱脱水干燥,用粉碎机破碎成细颗粒,过30目筛网;
2)热水浸提:称取海带颗粒400g加入4倍体积纯净水,在回流提取装置中80℃浸提3小时,反复浸提2次,减压浓缩,合并浸提液;
3)滤液收集:浸提液用纱布过滤,收集过滤清液;
4)调酸沉淀:用4mol/L盐酸将过滤清液调节至pH 2.0,搅拌均匀;
5)离取上清:将调酸的浸提液8000rpm离心30分钟,收集上清液;
6)调碱中和:用2mol/L氢氧化钠将上述离心上清液调节至中性;
7)超滤浓缩:用100kD超滤膜包进行循环浓缩,同时进行纯水置换除盐;
8)低温醇析:将浓缩液用无水乙醇调整至浓度85%,低温醇析;
9)析出分离:醇析液3000rpm离心20分钟,吸去上清,保留粗多糖结晶沉淀;
10)乙醇洗涤:用无水乙醇将粗多糖结晶离心洗涤2次;
11)粗多糖收集:将收集到的粗多糖结晶自然干燥;获得粗多糖42克,提取率为10.5%;
12)大孔树脂去杂质:将粗多糖按1g/20ml比例溶解于6%乙醇水中,过AB-8大孔树脂去除色素等杂质;
13)大孔树脂去蛋白:将步骤12)的柱流出液直接同过HPD-600大孔树脂,进一步去除粗多糖中色素,同时去除粗多糖中的蛋白质;粗多糖中色素的去除率为94%,蛋白质去除率为91%,多糖回收率为89%(参见图1);
14)离子交换柱层析:将步骤13)的柱流出液直接通过平衡好的DEAE SepharoseCL-6B阴离子层析柱,用0.2mol/L NaCl冲洗层析柱,用0.2-1mol/L NaCl溶液对吸附在离子交换柱上的多糖进行线性洗脱,收集第二个主要洗脱峰组分;经测定,第二主要洗脱组分占总粗多糖上样量的45%(参见图2);
15)凝胶过滤柱层析:将步骤14)离子交换层析分离组分浓缩后,过0.05mol/LNaCl平衡过的Sephadex G-200凝胶过滤柱层析,对离子交换层析分离组分进行进一步纯化;经测定海藻多糖P155的含量为离子交换第二洗脱组分上样量的55%,为分子量较大的组分,纯度为95%;凝胶过滤得到的第一峰,即分子量较大的组分,为终产物海藻多糖P155;
16)超滤浓缩:步骤15)的纯化液用100kD超滤浓缩除盐;
17)真空干燥:对浓缩后的海藻多糖进行真空干燥或冷冻干燥, 即得海藻多糖P155,其中,硫酸基含量22.3%,糖醛酸含量10.4%。岩藻糖、甘露糖、半乳糖的摩尔比为5.7:3.7:1。
实施例2:
1)将海带洗净后剪碎,80℃烤箱脱水干燥,用粉碎机破碎成细颗粒,过30目筛网;
2)热水浸提:取400克干燥的海带颗粒,加入5倍体积纯净水,在回流提取装置中83℃浸提4小时,反复浸提2次,减压浓缩,合并浸提液;
3)滤液收集:浸提液用纱布过滤,收集过滤清液;
4)调酸沉淀:用盐酸将过滤清液调节至pH 2.0,搅拌均匀;
5)离取上清:将调酸的浸提液8000rpm离心30分钟,收集上清液;
6)调碱中和:用氢氧化钠将上述离心上清液调节至中性;
7)超滤浓缩:用100kD超滤膜包进行循环浓缩,同时进行纯水置换除盐;
8)低温醇析:将浓缩液用无水乙醇调整至浓度85%,低温醇析;
9)析出分离:醇析液3000rpm离心20分钟,吸去上清,保留粗多糖结晶沉淀;
10)乙醇洗涤:用无水乙醇将粗多糖结晶离心洗涤2次;
11)粗多糖收集:将收集到的粗多糖结晶自然干燥;获得粗多糖39克,本次粗多糖提取率为9.8%(参见图3);
12)大孔树脂去杂质:将粗多糖按1g/20ml比例溶解于6%乙醇水中,过AB-8大孔树脂去除色素等杂质;
13)大孔树脂去蛋白:将步骤12)的柱流出液直接同过HPD-600大孔树脂,进一步去除粗多糖中色素,同时去除粗多糖中的蛋白质;测定结果表明,粗多糖中色素的去除率为95%,蛋白质去除率为90%,多糖回收率为88%(参见图4);
14)离子交换柱层析:将步骤13)的柱流出液直接通过平衡好的DEAE SepharoseCL-6B阴离子层析柱,用0.2mol/L NaCl冲洗层析柱,用0.2-1mol/L NaCl溶液对吸附在离子交换柱上的多糖进行线性洗脱,收集第二个主要洗脱峰组分;经测定,第二主要洗脱组分占总粗多糖上样量的42%;
15)凝胶过滤柱层析:将步骤14)离子交换层析分离组分浓缩后,过0.05mol/LNaCl平衡过的Sephadex G-200凝胶过滤柱层析,对离子交换层析分离组分进行进一步纯化;
16)超滤浓缩:步骤15)的纯化液用100kD超滤浓缩除盐;经测定海藻多糖P155的含量为离子交换第二洗脱组分上样量的58%,为分子量较大的组分,纯度为94%;凝胶过滤得到的第一峰,即分子量较大的组分,为终产物P155;
17)真空干燥:对浓缩后的海藻多糖进行真空干燥或冷冻干燥, 即得海藻多糖P155,其中,硫酸基含量20.5%,糖醛酸含量9.8%。岩藻糖、甘露糖、半乳糖的摩尔比为5.4:3.2:1。
实施例3:
1)将海带洗净后剪碎,90℃烤箱脱水干燥,用粉碎机破碎成细颗粒,过30目筛网;
2)热水浸提:海带颗粒500g加入6倍体积纯净水,在回流提取装置中85℃浸提3~6小时,反复浸提2次,减压浓缩,合并浸提液;
3)滤液收集:浸提液用纱布过滤,收集过滤清液;
4)调酸沉淀:用盐酸将过滤清液调节至pH 2.0,搅拌均匀;
5)离取上清:将调酸的浸提液8000rpm离心30分钟,收集上清液;
6)调碱中和:用氢氧化钠将上述离心上清液调节至中性;
7)超滤浓缩:用100kD超滤膜包进行循环浓缩,同时进行纯水置换除盐;
8)低温醇析:将浓缩液用无水乙醇调整至浓度85%,低温醇析;
9)析出分离:醇析液3000rpm离心20分钟,吸去上清,保留粗多糖结晶沉淀;
10)乙醇洗涤:用无水乙醇将粗多糖结晶离心洗涤2次;
11)粗多糖收集:将收集到的粗多糖结晶自然干燥;获得粗多糖62克,本次粗多糖提取率为12.4%(参见图5);
12)大孔树脂去杂质:将粗多糖按1g/20ml比例溶解于6%乙醇水中,过AB-8大孔树脂去除色素等杂质;
13)大孔树脂去蛋白:将步骤12)的柱流出液直接同过HPD-600大孔树脂,进一步去除粗多糖中色素,同时去除粗多糖中的蛋白质;测定结果表明,粗多糖中色素的去除率为92%,蛋白质去除率为90%,多糖回收率为86%;
14)离子交换柱层析:将步骤13)的柱流出液直接通过平衡好的DEAE SepharoseCL-6B阴离子层析柱,用0.2mol/L NaCl冲洗层析柱,用0.2-1mol/L NaCl溶液对吸附在离子交换柱上的多糖进行线性洗脱,收集第二个主要洗脱峰组分;经测定,第二主要洗脱组分占总粗多糖上样量的40%(参见图6);
15)凝胶过滤柱层析:将步骤14)离子交换层析分离组分浓缩后,过0.05mol/LNaCl平衡过的Sephadex G-200凝胶过滤柱层析,对离子交换层析分离组分进行进一步纯化;经测定P155的含量为离子交换第二洗脱组分上样量的60%,为分子量较大的组分,纯度为92%。凝胶过滤得到的第一峰,即分子量较大的组分,为终产物P155;
16)超滤浓缩:步骤15)的纯化液用100kD超滤浓缩除盐;
17)真空干燥:对浓缩后的海藻多糖进行真空干燥或冷冻干燥, 即得海藻多糖P155,其中,硫酸基含量23.7%,糖醛酸含量10.9%。岩藻糖、甘露糖、半乳糖的摩尔比为5.6:3.9:1。

Claims (1)

1.一种海藻多糖P155的制备工艺,包括以下步骤:
1)将海带洗净后剪碎,60~90℃烤箱脱水干燥,用粉碎机破碎成细颗粒,过30目筛网;
2)热水浸提:海带颗粒按4~6倍体积加入纯净水,在回流提取装置中80~85℃浸提3~6小时,反复浸提2次,减压浓缩,合并浸提液;
3)滤液收集:浸提液用纱布过滤,收集过滤清液;
4)调酸沉淀:用盐酸将过滤清液调节至pH 2.0,搅拌均匀;
5)离取上清:将调酸的浸提液8000rpm离心30分钟,收集上清液;
6)调碱中和:用氢氧化钠将上述离心上清液调节至中性;
7)超滤浓缩:用100kD超滤膜包进行循环浓缩,同时进行纯水置换除盐;
8)低温醇析:将浓缩液用无水乙醇调整至浓度85%,低温醇析;
9)析出分离:醇析液3000rpm离心20分钟,吸去上清,保留粗多糖结晶沉淀;
10)乙醇洗涤:用无水乙醇将粗多糖结晶离心洗涤2次;
11)粗多糖收集:将收集到的粗多糖结晶自然干燥;
12)大孔树脂去杂质:将粗多糖按1g/20mL比例溶解于6%乙醇水中,过AB-8大孔树脂去除杂质;
13)大孔树脂去蛋白:将步骤12)的柱流出液直接通过HPD-600大孔树脂,进一步去除粗多糖中色素,同时去除粗多糖中的蛋白质;
14)离子交换柱层析:将步骤13)的柱流出液直接通过平衡好的DEAE Sepharose CL-6B阴离子层析柱,用0.2mol/L NaCl冲洗层析柱,用0.2-1mol/L NaCl溶液对吸附在离子交换柱上的多糖进行线性洗脱,收集第二个主要洗脱峰组分;
15)凝胶过滤柱层析:将步骤14)离子交换层析分离组分浓缩后,过0.05mol/L NaCl平衡过的Sephadex G-200凝胶过滤柱层析,对离子交换层析分离组分进行进一步纯化;
16)超滤浓缩:步骤15)的纯化液用100kD超滤浓缩除盐;
17)真空干燥:对浓缩后的海藻多糖进行真空干燥或冷冻干燥, 即得。
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