CN103444528A - 一种平贝母的促生栽培方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种平贝母的促生栽培方法，主要包括外植体的选择与消毒、材料处理、初代培养、继代培养、小鳞茎的增殖、生根培养和炼苗移栽土壤管理等步骤。在不同的培养阶段的利用不同的激素进行调节，对培养基配方的精确筛选达到试管苗生长旺盛的优良效果，并且结合有效的灭菌技术，达到提高增殖率和减少变异、提高土壤肥力、降低病虫害的目的。并且在继代培养后的小鳞茎的增殖过程中适当更换了培养基，更有利于小鳞茎的快速生长。并且通过鳞片不同部位的比较发现，鳞片繁殖材料最佳选择为内层鳞片的下部。
Description
技术领域
本发明涉及一种组织培养方法，具体涉及到一种平贝母的繁殖方法。
背景技术
平贝母，别名平贝、北贝、贝母，为百合科多年生草本，高达1m。平贝母的干燥鳞茎是我国常用的中药材，具有清热润肺、化痰止咳、散结等功能，在临床上用于痰热咳嗽、咳痰带血、瘰疬疮疡肿毒等疾病的治疗。近年来，由于过度采挖，资源逐年减少，商品供不应求，价格不断上涨。
目前对贝母的组织培养研究已经有了一定的规模，但是鉴于技术的问题一直存在着一些问题，对平贝母的快速繁殖技术也已经有一定的研究，但是对平贝母的需求日益增加，目前平贝母的繁殖和种植远远达不到人们的需求，组织培养可以大大提高平贝母的繁殖率，但是目前组织培养体系尚未充分建立，存在一些技术上的问题，优良品种的推广普及尚未完成，供求矛盾日益加剧，严重影响了平贝母的大量繁殖。
发明内容
本发明针对目前存在的问题，提供一种能够快速、有效的利用现有资源繁殖平贝母的方法。
为了解决上述技术问题，本发明采用的一个技术方案是：
一种平贝母的促生栽培方法，其特征在于，包括以下步骤：
（1）外植体的选择与消毒：首先选择当年生长健壮、无霉烂斑点的新鲜平贝母，剪去根及有伤鳞片，流水冲洗30 min后放入清水中浸泡15min，再用50％多菌灵500倍液浸泡20~30 min或者用50％福美双粉500倍液浸泡10~15min，然后将种球鳞片剥下，用紫外灯照射10 min，转入超净工作台，再用75%酒精消毒50 s，无菌水冲洗2~3次，再用6%次氯酸钠溶液消毒10 min，无菌水冲洗2~3次。最后用0.2%的升汞溶液消毒10 min，无菌水冲洗4~5 次；
（2）材料处理：首先在超净工作台上，在无菌条件下， 切去鳞片上部1/3，然后将中、下部分割开来，将鳞片和鳞茎基部分别切成6-8mm的小块；
（3）初代培养：在无菌的条件下将步骤（2）得到的外植体接种在初代培养基上，该培养基是在在3/4MS常规培养基中添加了0.8mg/L的6-BA、1.2mg/L的NAA，30-40mg/L的蔗糖和0.4-0.8mg/L的ZT；培养温度为24℃，光照时间12 h/d，光照强度2 000 Lx，PH为 6.5，琼脂5 g/L，经过25-30天形成愈伤组织；
（4）继代培养：将初代培养的愈伤组织切下接种在继代培养基上，该培养基是在MS常规培养基中添加了0.5mg/L的6-BA、0.3mg/L的IBA、0.3mg/L的KT和20mg/L的蔗糖，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，PH 6.5，经过7-12天时间分化出绿点后，即开始下一阶段；
（5）小鳞茎的增殖：将分化出绿点的愈伤组织继续培养，该培养基是在1/2MS常规培养基中添加了40mg/L的蔗糖、0.3mg/L的KT、0.4mg/LNAA和0.2mg/L的ZT，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，PH 6.5，经10-15天培养便可分化出丛生小鳞茎；
（6）生根培养：将分化出来的小鳞茎接种于下列诱导培养基中进行生根诱导：1/2 MS培养基、0.3mg/L的KT、1mg/L的活性炭、7-8g/L的琼脂、0.5mg/L 的NAA，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，经过8-12天待小鳞茎长至2.5cm高，根系比较发达时，即开始下一个阶段；
（7）炼苗移栽：先将培养瓶移至温室，自然条件下炼苗6d，然后将长出新根的小鳞茎从培养瓶中取出，在阳光下晒1-2天，在晒的过程中要适当遮光，使光照强度为自然光的60%，温度在18℃左右；
（8）土壤管理：调节土壤pH 值为7.0～8.2，将硫磺粉过筛后与5 倍体积细土混匀后施用，除了用硫磺粉调节土壤pH 值外，硫磺粉与草炭混合施用效果则更佳，或者使用松针配合硫磺粉对土壤进行改良，其中松针、原土、粪肥、硫磺粉按照重量份数比2：3：1：2, 或者土壤中施入锯未、草炭、苔藓和硫磺粉进行土壤改良，其中锯未、草炭、苔藓和硫磺粉的重量份数比为1：1：1：2；
增加土壤有机质含量：挖宽50 cm、深40 cm 的定植沟，有机质、有机肥、原土按1:1:1的比例进行改土，有机质用酸性草炭，如果用锯末、树皮必须先堆放1月以上，完全腐熟分解后再使用，如用人畜粪尿腐熟或植物秸秆叶子腐烂腐熟后形成的天然肥料，注意不要掺入草木灰、石灰碱性物质，含量达到3%～5%以上, 以增加土壤的通透性；
土壤覆盖: 土壤覆盖在苗木定植后即可进行，将覆盖物均匀覆盖在床面，宽1 米、厚5 ～ 10 厘米，以后每年再覆盖2 厘米厚，以保持原有厚度，如果应用未腐烂分解的新锯末，需增施50%的氮肥，腐烂分解好的锯末，氮肥用量应相应地减少，覆盖黑地膜可以防止土壤水分蒸发，控制杂草，提高地温，最好是在有滴灌设施的果园应用，覆盖黑地膜与覆盖有机物相结合效果更佳或者定植前用除草剂杀灭杂草, 定植后全垦园地播撒绿肥白三叶、红三叶等豆科植物, 3月后可完全覆盖园地, 又能增加土壤肥力；
当培养基表面成龟裂状后，取出小苗洗净根部附着的培养基，移栽到经消毒上述土壤基质中，温度控制在15℃左右。
本发明的有益效果主要体现在：
（1）建立了完善的平贝母的离体组织培养快速繁殖的成套技术，达到了高效诱导外植体分化增殖目的，并且保存了母体的全部优良性状，遗传性状稳定；
（2）缩短了繁殖周期，在保证了成活率的基础上，提高了繁殖效率，增加了经济效益；
（3）在不同的培养阶段的利用不同的激素进行调节，对培养基配方的精确筛选达到试管苗生长旺盛的优良效果，并且结合有效的灭菌技术，达到提高增殖率和减少变异的目的。
（4）在继代培养后的小鳞茎的增殖过程中适当更换了培养基，更有利于小鳞茎的快速生长。
（5）在移栽炼苗的过程中，采取必要的措施控制了生长的温度和光照强度、土壤条件，使平贝母在适宜的温度下进行繁殖，提高了幼苗的质量和成活率、土壤肥力。
具体实施方式
下面对本发明的较佳实施例进行详细阐述，以使本发明的优点和特征能更易于被本领域技术人员理解，从而对本发明的保护范围做出更为清楚明确的界定。
实施例1
一种平贝母的促生栽培方法，其特征在于，包括以下步骤：
（1）外植体的选择与消毒：首先选择当年生长健壮、无霉烂斑点的新鲜平贝母，剪去根及有伤鳞片，流水冲洗30 min后放入清水中浸泡15min，再用50％多菌灵500倍液浸泡20min或者用50％福美双粉500倍液浸泡10min，然后将种球鳞片剥下，用紫外灯照射10 min，转入超净工作台，再用75%酒精消毒50 s，无菌水冲洗2次，再用6%次氯酸钠溶液消毒10 min，无菌水冲洗3次。最后用0.2%的升汞溶液消毒10 min，无菌水冲洗4次。
（2）材料处理：首先在超净工作台上，在无菌条件下， 选择外层鳞片的中部，切成6-8mm的小块；
（3）初代培养：在无菌的条件下将步骤（2）得到的外植体接种在初代培养基上，该培养基是在在3/4MS常规培养基中添加了0.8mg/L的6-BA、1.2mg/L的NAA，30mg/L的蔗糖和0.4mg/L的ZT；PH为 6.0，培养温度为24℃，光照时间12 h/d，光照强度2 000 Lx，琼脂5 g/L，经过30天形成愈伤组织；
（4）继代培养：将初代培养的愈伤组织切下接种在继代培养基上，该培养基是在MS常规培养基中添加了0.5mg/L的6-BA、0.3mg/L的IBA、0.3mg/L的KT和20mg/L的蔗糖，PH 6.0，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，经过12天时间分化出绿点后，即开始下一阶段；
（5）小鳞茎的增殖：将分化出绿点的愈伤组织继续培养，该培养基是在1/2MS常规培养基中添加了40mg/L的蔗糖、0.3mg/L的KT、0.4mg/LNAA和0.2mg/L的ZT，PH 6.0，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，经15天培养便可分化出丛生小鳞茎；
（6）生根培养：将分化出来的小鳞茎接种于下列诱导培养基中进行生根诱导：1/2 MS培养基、0.3mg/L的KT、1mg/L的活性炭、7g/L的琼脂、0.5mg/L 的NAA，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，经过12天待小鳞茎长至2.5cm高，根系比较发达时，即开始下一个阶段；
（7）炼苗移栽：先将培养瓶移至温室，自然条件下炼苗6d，然后将长出新根的小鳞茎从培养瓶中取出，在阳光下晒2天，在晒的过程中要适当遮光，使光照强度为自然光的50%，温度在15℃左右，当培养基表面成龟裂状后，取出小苗洗净根部附着的培养基，移栽到经消毒的腐殖土∶草炭∶珍珠岩：蛭石=2∶2∶1：3 （重量比）的混合基质中，温度控制在25℃左右。
实施例2
将步骤（2）材料处理过程中的材料选择外层鳞片的下部，其余条件与实施例1相同，结果在初代培养中经过27天形成愈伤组织，在继代培养中经过9天时间分化出绿点，在小鳞茎的增殖过程中经过12天培养可分化出丛生小鳞茎，在生根培养过程中经过11天小鳞茎长至2.5cm，根系比较发达。
实施例3
将步骤（2）材料处理过程中的材料选择外层鳞片的下部，其余条件与实施例1相同，结果在初代培养中经过27天形成愈伤组织，在继代培养中经过8天时间分化出绿点，在小鳞茎的增殖过程中经过12天培养可分化出丛生小鳞茎，在生根培养过程中经过10天小鳞茎长至2.5cm，根系比较发达。
实施例4
将步骤（2）材料处理过程中的材料选择中层鳞片的中部，其余条件与实施例1相同，结果在初代培养中经过28天形成愈伤组织，在继代培养中经过10天时间分化出绿点，在小鳞茎的增殖过程中经过11天培养可分化出丛生小鳞茎，在生根培养过程中经过10天小鳞茎长至2.5cm，根系比较发达。
实施例5
将步骤（2）材料处理过程中的材料选择中层鳞片的下部，其余条件与实施例1相同，结果在初代培养中经过26天形成愈伤组织，在继代培养中经过9天时间分化出绿点，在小鳞茎的增殖过程中经过13天培养可分化出丛生小鳞茎，在生根培养过程中经过10天小鳞茎长至2.5cm，根系比较发达。
实施例6
将步骤（2）材料处理过程中的材料选择内层鳞片的中部，其余条件与实施例1相同，结果在初代培养中经过27天形成愈伤组织，在继代培养中经过10天时间分化出绿点，在小鳞茎的增殖过程中经过12天培养可分化出丛生小鳞茎，在生根培养过程中经过9天小鳞茎长至2.5cm，根系比较发达。
实施例7
将步骤（2）材料处理过程中的材料选择内层鳞片的下部，其余条件与实施例1相同，结果在初代培养中经过25天形成愈伤组织，在继代培养中经过7天时间分化出绿点，在小鳞茎的增殖过程中经过10天培养可分化出丛生小鳞茎，在生根培养过程中经过8天小鳞茎长至2.5cm，根系比较发达。
实施例8
将步骤（2）材料处理过程中的材料选择鳞片的基部，其余条件与实施例1相同，结果在初代培养中经过26天形成愈伤组织，在继代培养中经过8天时间分化出绿点，在小鳞茎的增殖过程中经过12天培养可分化出丛生小鳞茎，在生根培养过程中经过10天小鳞茎长至2.5cm，根系比较发达。
通过实施例1至实施例8的对比发现，内层鳞片的下部是平贝母进行组织培养的最佳材料。
实施例9
一种平贝母的促生栽培方法，其特征在于，包括以下步骤：
（1）外植体的选择与消毒：首先选择当年生长健壮、无霉烂斑点的新鲜平贝母，剪去根及有伤鳞片，流水冲洗30 min后放入清水中浸泡15min，再用50％多菌灵500倍液浸泡30 min或者用50％福美双粉500倍液浸泡15min，然后将种球鳞片剥下，用紫外灯照射10 min，转入超净工作台，再用75%酒精消毒50 s，无菌水冲洗3次，再用6%次氯酸钠溶液消毒10 min，无菌水冲洗3次。最后用0.2%的升汞溶液消毒10 min，无菌水冲洗5 次。
（2）材料处理：首先在超净工作台上，在无菌条件下，选择内层鳞片的下部切成6-8mm的小块；
（3）初代培养：在无菌的条件下将步骤（2）得到的外植体接种在初代培养基上，该培养基是在在3/4MS常规培养基中添加了0.8mg/L的6-BA、1.2mg/L的NAA， 40mg/L的蔗糖和0.8mg/L的ZT；培养温度为24℃，光照时间12 h/d，光照强度2 000 Lx，PH为 6.5，琼脂5 g/L，经过25天形成愈伤组织；
（4）继代培养：将初代培养的愈伤组织切下接种在继代培养基上，该培养基是在MS常规培养基中添加了0.5mg/L的6-BA、0.3mg/L的IBA、0.3mg/L的KT和20mg/L的蔗糖，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，PH 6.5，经过12天时间分化出绿点后，即开始下一阶段；
（5）小鳞茎的增殖：将分化出绿点的愈伤组织继续培养，该培养基是在1/2MS常规培养基中添加了40mg/L的蔗糖、0.3mg/L的KT、0.4mg/LNAA和0.2mg/L的ZT，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，PH 6.5，经10天培养便可分化出丛生小鳞茎；
（6）生根培养：将分化出来的小鳞茎接种于下列诱导培养基中进行生根诱导：1/2 MS培养基、0.3mg/L的KT、1mg/L的活性炭、8g/L的琼脂、0.5mg/L 的NAA，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，经过10天待小鳞茎长至2.5cm高，根系比较发达时，即开始下一个阶段；
（7）炼苗移栽：先将培养瓶移至温室，自然条件下炼苗6d，然后将长出新根的小鳞茎从培养瓶中取出，在阳光下晒2天，在晒的过程中要适当遮光，使光照强度为自然光的60%，温度在18℃左右，当培养基表面成龟裂状后，取出小苗洗净根部附着的培养基，移栽到经消毒的腐殖土∶草炭∶珍珠岩：蛭石=2∶2∶1：3 （重量比）的混合基质中，温度控制在15℃左右。
实施例10：
一种利用组织培养技术繁殖平贝母的方法，其特征在于，包括以下步骤：
（1）外植体的选择与消毒：首先选择当年生长健壮、无霉烂斑点的新鲜平贝母，剪去根及有伤鳞片，流水冲洗30 min后放入清水中浸泡15min，再用50％多菌灵500倍液浸泡20~30 min或者用50％福美双粉500倍液浸泡10~15min，然后将种球鳞片剥下，用紫外灯照射10 min，转入超净工作台，再用75%酒精消毒50 s，无菌水冲洗2~3次，再用6%次氯酸钠溶液消毒10 min，无菌水冲洗2~3次。最后用0.2%的升汞溶液消毒10 min，无菌水冲洗4~5 次；
（2）材料处理：首先在超净工作台上，在无菌条件下， 切去鳞片上部1/3，然后将中、下部分割开来，将鳞片和鳞茎基部分别切成6-8mm的小块；
（3）初代培养：在无菌的条件下将步骤（2）得到的外植体接种在初代培养基上，该培养基是在在3/4MS常规培养基中添加了0.8mg/L的6-BA、1.2mg/L的NAA，30-40mg/L的蔗糖和0.4-0.8mg/L的ZT；培养温度为24℃，光照时间12 h/d，光照强度2 000 Lx，PH为 6.5，琼脂5 g/L，经过25-30天形成愈伤组织；
（4）继代培养：将初代培养的愈伤组织切下接种在继代培养基上，该培养基是在MS常规培养基中添加了0.5mg/L的6-BA、0.3mg/L的IBA、0.3mg/L的KT和20mg/L的蔗糖，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，PH 6.5，经过7-12天时间分化出绿点后，即开始下一阶段；
（5）小鳞茎的增殖：将分化出绿点的愈伤组织继续培养，该培养基是在1/2MS常规培养基中添加了40mg/L的蔗糖、0.3mg/L的KT、0.4mg/LNAA和0.2mg/L的ZT，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，PH 6.5，经10-15天培养便可分化出丛生小鳞茎；
（6）生根培养：将分化出来的小鳞茎接种于下列诱导培养基中进行生根诱导：1/2 MS培养基、0.3mg/L的KT、1mg/L的活性炭、7-8g/L的琼脂、0.5mg/L 的NAA，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，经过8-12天待小鳞茎长至2.5cm高，根系比较发达时，即开始下一个阶段；
（7）炼苗移栽：先将培养瓶移至温室，自然条件下炼苗6d，然后将长出新根的小鳞茎从培养瓶中取出，在阳光下晒1-2天，在晒的过程中要适当遮光，使光照强度为自然光的60%，温度在18℃左右；
（8）土壤管理：调节土壤pH 值为7.0～8.2，将硫磺粉过筛后与5 倍体积细土混匀后施用，除了用硫磺粉调节土壤pH 值外，硫磺粉与草炭混合施用效果则更佳，或者使用松针配合硫磺粉对土壤进行改良，其中松针、原土、粪肥、硫磺粉按照重量份数比2：3：1：2, 或者土壤中施入锯未、草炭、苔藓和硫磺粉进行土壤改良，其中锯未、草炭、苔藓和硫磺粉的重量份数比为1：1：1：2；
增加土壤有机质含量：挖宽50 cm、深40 cm 的定植沟，有机质、有机肥、原土按1:1:1的比例进行改土，有机质用酸性草炭，如果用锯末、树皮必须先堆放1月以上，完全腐熟分解后再使用，如用人畜粪尿腐熟或植物秸秆叶子腐烂腐熟后形成的天然肥料，注意不要掺入草木灰、石灰碱性物质，含量达到3%～5%以上, 以增加土壤的通透性；
土壤覆盖: 土壤覆盖在苗木定植后即可进行，将覆盖物均匀覆盖在床面，宽1 米、厚5 ～ 10 厘米，以后每年再覆盖2 厘米厚，以保持原有厚度，如果应用未腐烂分解的新锯末，需增施50%的氮肥，腐烂分解好的锯末，氮肥用量应相应地减少，覆盖黑地膜可以防止土壤水分蒸发，控制杂草，提高地温，最好是在有滴灌设施的果园应用，覆盖黑地膜与覆盖有机物相结合效果更佳或者定植前用除草剂杀灭杂草, 定植后全垦园地播撒绿肥白三叶、红三叶等豆科植物, 3月后可完全覆盖园地, 又能增加土壤肥力；
当培养基表面成龟裂状后，取出小苗洗净根部附着的培养基，移栽到经消毒上述土壤基质中，温度控制在15℃左右。
测得萌发率为96%，苗木成活率为100%，土壤肥力提高13%，病虫害减少21%。
以上所述仅为本发明的实施例，并非因此限制本发明的专利范围，凡是利用本发明说明书内容所作的等效结构或等效流程变换，或直接或间接运用在其他相关的技术领域，均同理包括在本发明的专利保护范围内。
Claims (2)
1.一种平贝母的促生栽培方法，其特征在于，包括以下步骤：
（1）外植体的选择与消毒：首先选择当年生长健壮、无霉烂斑点的新鲜平贝母，剪去根及有伤鳞片，流水冲洗30 min后放入清水中浸泡15min，再用50％多菌灵500倍液浸泡20~30 min或者用50％福美双粉500倍液浸泡10~15min，然后将种球鳞片剥下，用紫外灯照射10 min，转入超净工作台，再用75%酒精消毒50 s，无菌水冲洗2~3次，再用6%次氯酸钠溶液消毒10 min，无菌水冲洗2~3次，最后用0.2%的升汞溶液消毒10 min，无菌水冲洗4~5 次；
（2）材料处理：首先在超净工作台上，在无菌条件下，切去鳞片上部1/3，然后将中、下部分割开来，将鳞片和鳞茎基部分别切成6-8mm的小块；
（3）初代培养：在无菌的条件下将步骤（2）得到的外植体接种在初代培养基上，该培养基是在在3/4MS常规培养基中添加了0.8mg/L的6-BA、1.2mg/L的NAA，30-40mg/L的蔗糖和0.4-0.8mg/L的ZT；培养温度为24℃，光照时间12 h/d，光照强度2 000 Lx，PH为 6.5，琼脂5 g/L，经过25-30天形成愈伤组织；
（4）继代培养：将初代培养的愈伤组织切下接种在继代培养基上，该培养基是在MS常规培养基中添加了0.5mg/L的6-BA、0.3mg/L的IBA、0.3mg/L的KT和20mg/L的蔗糖，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，PH 6.5，经过7-12天时间分化出绿点后，即开始下一阶段；
（5）小鳞茎的增殖：将分化出绿点的愈伤组织继续培养，该培养基是在1/2MS常规培养基中添加了40mg/L的蔗糖、0.3mg/L的KT、0.4mg/LNAA和0.2mg/L的ZT，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，PH 6.5，经10-15天培养便可分化出丛生小鳞茎；（6）生根培养：将分化出来的小鳞茎接种于下列诱导培养基中进行生根诱导：1/2 MS培养基、0.3mg/L的KT、1mg/L的活性炭、7-8g/L的琼脂、0.5mg/L 的NAA，培养温度为24℃，光照周期13h/d，光强度为2200lux，经过8-12天待小鳞茎长至2.5cm高，根系比较发达时，即开始下一个阶段；
（7）炼苗移栽：先将培养瓶移至温室，自然条件下炼苗6d，然后将长出新根的小鳞茎从培养瓶中取出，在阳光下晒1-2天，在晒的过程中要适当遮光，使光照强度为自然光的60%，温度在18℃左右；
（8）土壤管理：调节土壤pH 值为7.0～8.2，将硫磺粉过筛后与5 倍体积细土混匀后施用，除了用硫磺粉调节土壤pH 值外，硫磺粉与草炭混合施用效果则更佳，或者使用松针配合硫磺粉对土壤进行改良，其中松针、原土、粪肥、硫磺粉按照重量份数比2：3：1：2, 或者土壤中施入锯未、草炭、苔藓和硫磺粉进行土壤改良，其中锯未、草炭、苔藓和硫磺粉的重量份数比为1：1：1：2；
增加土壤有机质含量：挖宽50 cm、深40 cm 的定植沟，有机质、有机肥、原土按1:1:1的比例进行改土，有机质用酸性草炭，如果用锯末、树皮必须先堆放1月以上，完全腐熟分解后再使用，如用人畜粪尿腐熟或植物秸秆叶子腐烂腐熟后形成的天然肥料，注意不要掺入草木灰、石灰碱性物质，含量达到3%～5%以上, 以增加土壤的通透性；
土壤覆盖: 土壤覆盖在苗木定植后即可进行，将覆盖物均匀覆盖在床面，宽1 米、厚5 ～ 10 厘米，以后每年再覆盖2 厘米厚，以保持原有厚度，如果应用未腐烂分解的新锯末，需增施50%的氮肥，腐烂分解好的锯末，氮肥用量应相应地减少，覆盖黑地膜可以防止土壤水分蒸发，控制杂草，提高地温，最好是在有滴灌设施的果园应用，覆盖黑地膜与覆盖有机物相结合效果更佳或者定植前用除草剂杀灭杂草, 定植后全垦园地播撒绿肥白三叶、红三叶等豆科植物, 3月后可完全覆盖园地, 又能增加土壤肥力；
当培养基表面成龟裂状后，取出小苗洗净根部附着的培养基，移栽到经消毒上述土壤基质中，温度控制在15℃左右。
2.根据权利要求1所述的一种平贝母的促生栽培方法，其特征在于，所述的鳞片繁殖材料最佳选择为内层鳞片的下部。
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| CN201310357743XA CN103444528A (zh) | 2013-08-16 | 2013-08-16 | 一种平贝母的促生栽培方法 |
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