CN103233053A - 一种重组人粒细胞刺激因子的生产方法 - Google Patents
一种重组人粒细胞刺激因子的生产方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103233053A CN103233053A CN2013101161148A CN201310116114A CN103233053A CN 103233053 A CN103233053 A CN 103233053A CN 2013101161148 A CN2013101161148 A CN 2013101161148A CN 201310116114 A CN201310116114 A CN 201310116114A CN 103233053 A CN103233053 A CN 103233053A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- inclusion body
- human granulocyte
- stimulating factors
- production method
- recombined human
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明公开了一种重组人粒细胞刺激因子的生产方法，包括对大肠杆菌表达重组人粒细胞刺激因子的工程菌株进行培养获得包涵体，所述大肠杆菌表达重组人粒细胞刺激因子的工程菌株为pKG931/HB101，培养方法包括扩增培养和发酵罐培养，均采用含酵母和蛋白胨的无抗生素培养基，采用高压均质机破菌，经过变性、复性和层析，得到高纯度G-CSF原液。本发明的生产方法生产周期短，生产效率高，生产规模大，特别适于工业化生产，降低了生产成本。
Description
技术领域
本发明涉及生物制药领域，具体来说是一种重组人粒细胞刺激因子的生产方法。
背景技术
重组人粒细胞刺激因子（granulocyte colony-stimulating factor,G-CSF）是指特异作用于造血系统中粒祖细胞，促机其增殖，向成熟中性粒细胞分化，并维持细胞的存活及其生物功能的一种造血生长因子，是刺激骨髓细胞集落形成的集落刺激因子的一种。对骨髓移植时的中性白细胞增加、癌症化疗时引起的严重中性粒细胞缺乏症、以及再生障碍性贫血伴随的中性白细胞缺乏症均有明显疗效。
采用基因工程技术重组G-CSF的生活学活性与天然的相似，可以大规模生产，以满足临床需要。目前，比较常用的方法是利用大肠杆菌表达外源蛋白，多以不溶性包涵体的形式存在，由于包涵体不具有生活学活性，因此还需要经过变性、复性处理，恢复其生物学活性，再经过纯化处理，得到原液。
中国专利文献CNY718739A公开了一种“重组人粒细胞集落刺激因子的制备方法”，该方法包括：a.选用工程菌DH5α－PBV220－hGCSF菌株进行发酵培养；b.对发酵培养所得菌体进行包涵体的分离和洗涤，得到精制包涵体；c.对精制包涵体进行变性处理，得到变性所得物；d.对变性所得物进行第一次复性处理，得到第一次复性所得物；e.对第一次复性所得物进行超滤处理，得到超滤所得物；f.对超滤所得物进行进行第二次复性处理，得到第二次复性所得物；g.对第二次复性所得物进行层析处理，得到重组人粒细胞集落刺激因子，其纯度达到98％以上、比活性不低于4.0×108IU/mg。本制备方法为解决人粒细胞集落刺激因子制备上存在的表达率偏低、菌体产量偏低、包涵体复性率偏低、活性偏低以及成本偏高等问题提供了可能。
然而，上述方法中，以工程菌DH5α－PBV220－hGCSF菌株作为种子，即使在培养时采用了抗生素氨苄青霉素以提高表达量，其所得rG-CSF蛋白占菌体总蛋白比例在40%左右，而且由于抗生素对环境的不友好，采用了抗生素技术的生产废液的处理成为新的问题。并且，其生产过程复杂，生产周期比较长，生产效率低，发酵罐规模只有20L不适合大规模生产。具体表现为：基本发酵时间为培养8小时，采用超声破菌时间长，分离洗涤5次，两次复性要超过116小时。由于洗涤和复性溶液成份复杂，给后续层析纯化增加了难度，使得第二次复性需要在2-8℃条件下复性96小时以上，且复性完后需经离心处理才能上柱。同时，采用超声破菌，控制超声功率和时间难度大,超声不足不能完全释放重组蛋白,而超声时间太长或功率太大,会使蛋白炭化。
发明内容
针对现有技术存在的问题，本发明的目的在于提供一种适合工艺化，能够提高生产量、缩短生产周期，是高密度快速生产重组人粒细胞刺激因子的方法。
本发明采用如下技术方案：
一种重组人粒细胞刺激因子的生产方法，依次包括（1）对大肠杆菌表达重组人粒细胞刺激因子的工程菌株进行培养获得包涵体，（2）对发酵培养所得菌体进行包涵体的提取和洗涤，得到精制包涵体；（3）对精制包涵体进行变性处理，得到变性所得物；（4）对变性所得物进行复性处理；（5）对复性所得物进行不需离心分离直接进行层析纯化处理，得到重组人粒细胞集落刺激因子，其特征在于：所述大肠杆菌表达重组人粒细胞刺激因子的工程菌株为pKG931/HB101；所述工程菌株的培养包括扩增培养和发酵罐培养，
其中扩增培养包括以下子步骤：
①.菌种复苏：将工程菌种接种到液体LB培养基中培养，设定摇床温度为30℃，150r/min，培养12-14小时；
②.一级种子液培养：将复苏后的种子液接种到含液体LB培养基的摇瓶中培养，设定摇床温度为30℃，150r/min，培养9-11小时；
③.二级种子液培养：将一级种子液按增加1%的体积比方式接种到含30L液体LB的贝朗50L发酵罐中，罐培养控制条件为：转速100-300rpm/min，通气30L/min，罐压0.1-0.2bar，温度30℃，溶氧不低于50%，培养3-5小时，至OD600值至为1.0-2.0时结束培养，取样镜检观察无杂菌，菌种形态正常，即为发酵罐培养用种子；
所述发酵罐培养包括如下子步骤：
①.发酵前的准备：采用贝朗公司500L发酵罐，将发酵培养基浓缩液接入发酵罐并定容至500L，设定灭菌温度115℃，30min，发酵罐自动在线灭菌；
②.发酵罐培养：灭菌后，待培养基温度降到30℃时，将种子罐中二级种子液通过管道接种到500L发酵罐中，发酵罐培养控制条件为：培养温度30℃，发酵培养过程通过调节转速、通气量及罐压等将溶氧控制在30%（w%）以上，各参数调节范围为：转速200—450r/min、通气量100-400L/min、罐压0.1-0.3bar，培养4小时开始诱导表达；
③.诱导发酵：诱导温度为37-42℃，诱导4小时，结束发酵，经离心收集发酵产物，收集到的发酵湿菌体可以在-20℃的冰箱中保存。
通过上述方法控制培养条件，通过对pKG931/HB101菌株发酵培养，G-CSF平均湿菌体收率可达100-120g/L，其rG-CSF蛋白占菌体总蛋白的50%以上，而且发酵周期短，采用500L发酵罐，生产量大，是一种高密度快速生产方法。
上述发酵罐培养子步骤②和③中，通过补加氨水控制PH为6.0-7.0，诱导后即开始补料，补料速度为每小时补加补料培养基5L。
所述液体LB培养基的组分及配比为：10g/L酵母粉+10g/L蛋白胨+5g/L氯化钠。
所述发酵培养基浓缩液的组分及配比为：3000g酵母粉+3000g蛋白胨+1500g KH2PO4·2H2O+2000g Na2HPO4+500g NH4Cl+250g NaCl+5000g葡萄糖+62.5g MgCl2+6.25g CaCl2。
所述发酵补料培养基的组分及配比为：100g/L酵母粉+100g/L蛋白胨。
上述各种培养基，均未采用抗生素，是一种环境友好培养基。
所述步骤（2）中对发酵培养所得菌体进行包涵体的提取和洗涤，为克服超声破菌的不足，本发明采用高压均质机进行破菌，其子步骤为：
①包涵体提取：用25mmol/L Tris-HCl-EDTA溶液将菌体悬浮利用高压均质机加压至500-600bar进行菌体破碎，然后用管式离心机连续流离心的方法收集G-CSF包涵体；
②包涵体洗涤：先用25mmol/L Tris-HCl+2M盐酸胍溶液+0.5%（w%）曲拉通X-100将沉淀离心洗涤2次，再用纯化水将沉淀离心洗涤2次，洗涤过程使用J-26XP离心机离心收集沉淀，得精制G-CSF包涵体。
本发明在包涵体提取时利用高压均质方法取代了传统的超声破碎方法，高压均质机的工作原理是将未均质的样品先以高压低流速的状态进入均质阀区，接着样品经过均质阀与阀座之间的狭缝，这时候样品的压力也急速的降低，而样品的流速迅速的增加，此时产生剧烈的能量，而此能量是由扰流现象及不同的压力差所引起，此能量便会将固体颗粒撕碎。之后，均质过的样品会再撞击冲击环，减弱能量之后进入样品收集槽，高压均质方法不仅具有速度快、处理量大的特点，而且可以通过多次循环破碎将菌体碎片乳化成极微小的颗粒，再通过离心的方法很容易将其去除，可收集到纯度较高的包涵体，再用高浓度的尿素溶液将包涵体溶解，其纯度可达到90%以上，从而减小了后续纯化的难度。本发明包涵体洗涤过程的难点在于包涵体中除目的蛋白外,还有少量脂类、核酸、多糖和其它杂蛋白等,这些成分会影响目的蛋白的纯化和复性,因此在包涵体蛋白去折叠前应先洗涤包涵体。如果洗涤不充分,则有可能在包涵体的溶解和复性过程中降解重组蛋白质,而且洗涤得到较纯的包涵体则可简化后续色谱纯化的步骤。采用本发明的重组人粒细胞刺激因子的包涵体溶解后蛋白溶液经SDS-PAGE电泳扫描，纯度达到90%以上。
所述步骤（3）变性处理采用如下方法：用20mmol/L Tris-HCl－10mmol/L DTT－8mol/L尿素将G-CSF包涵体进行溶解，然后离心收集上清液，收集的上清即为G-CSF包涵体蛋白溶液，纯度达到90％以上。
所述步骤（4）复性处理采用如下方法：将G-CSF包涵体蛋白溶液用20mmol/L Tris-HCl－10mmol/L半胱氨酸-尿素进行稀释复性，包涵体蛋白溶液与复性用溶液体积比1:11，加入氯化铜溶液作为催化剂，室温下搅拌4-5小时,通过HPLC分析判断复性是否完全。
目前蛋白的复性方法主要有稀释复性、透析、超滤、柱上复性等等，稀释复性法同其他方法相比而言具有设备要求简单、操作方便、成本低、容易放大的优点，但是也存在分子间存在大量错误的折叠和聚合，以至蛋白沉淀，使复性收率大大降低，平均只有20%左右。本发明通过改变复性液中的离子强度、还原剂浓度、增加添加剂等，在室温环境下复性4-5个小时即可使重组人粒细胞刺激因子包涵体蛋白完全复性，不但时间短，而且目的蛋白质量收率高于90%，并且通过C18分析型色谱柱进行HPLC纯度分析对复性过程进行判断，可清楚的观察到复性液中蛋白纯度达到95%以上。另外，复性液保持澄清，没有沉淀现象发生，不需要离心即可以进行下一步的CM离子交换层析，经过一步层析纯化后，RP-HPLC的纯度即可达99%以上，具有纯化周期短，成本低，步骤简单的显著特点，原液经SDS-PAGE电泳扫描，纯度达到99%以上，HPLC显示单峰，rhG-CSF比活性不低于3.0×108IU/mg。高于《中和人民共和国药典2010版》第三部的要求。
所述步骤（5）层析纯化包括如下两步：
①利用CM Sepharose FF离子交换柱层析对G-CSF复性液进行目的蛋白高度提纯，流动相A：为0.1%（w%）醋酸溶液-0.01%（w%）Tween-80，流动相B：为50%醋酸-0.01%（w%）Tween-80，先用流动相A平衡层析柱，上完样后用流动相B分阶段洗脱，在280nm波长检测器下收集最高色谱峰；
②将最终的离子交换层析收集液过Sephdax G-25凝胶柱，流动相为10mmol/L醋酸-醋酸钠-0.004%（w%）Tween-80，在280nm波长检测器下收集第一色谱峰。用0.2微米的滤膜将G-25凝胶层析收集液过滤除菌，其质量指标要达到原液标准。
本发明的有益效果主要体现在如下几个方面：
（1）采用重组质粒体pKG931作为表达载体，以大肠杆菌HB101作为受体菌，和合理的培养条件，在不用抗生素时，能够获得50%以上高表达量，并可缩短周期，降低生产成本，发酵规模达到了500L，可进行大批量生产，提高生产效率。
（2）培养基不添加抗生素，对环境友好。
（3）采用均质机进行菌体破碎提取包涵体，破菌率高，易于控制，不存在蛋白炭化的风险。
（4）通过改变复性液中的离子强度、还原剂浓度、增加添加剂等，在室温环境下复性4-5个小时即可使重组人粒细胞刺激因子包涵体蛋白完全复性，目的蛋白质量收率高于90%，并且通过C18分析型色谱柱进行HPLC纯度分析对复性过程进行判断，可清楚的观察到复性液中蛋白纯度达到95%以上。
（5）复性液保持澄清，没有沉淀现象发生，不需要离心即可以进行下一步的CM离子交换层析，经过一步层析纯化后，RP-HPLC的纯度即可达99%以上，具有纯化周期短，成本低，步骤简单的显著特点，原液经SDS-PAGE电泳扫描，纯度达到99%以上，HPLC显示单峰，rhG-CSF比活性不低于3.0×108IU/mg。高于《中和人民共和国药典2010版》第三部的要求。
具体实施例
下面结合具体实施例对本发明作进一步详细描述，以助于理解本发明的内容。
本发明的重组人粒细胞集落刺激因子的制备方法，包括步骤:a.选用工程菌pKG931/HB101进行发酵培养；b.对发酵培养所得菌体进行包涵体的提取和洗涤，得到精制包涵体；c.对精制包涵体进行变性处理，得到变性所得物；d.对变性所得物进行复性处理；e.对复性所得物进行层析处理，得到重组人粒细胞集落刺激因子。
具体方法为：
a.选用北京康赛医学技术有限责任公司提供的工程菌pKG931/HB101进行发酵培养
其中，步骤a又包括种子扩增培养和发酵罐培养，所述种子扩增培养包括以下子步骤：
①.菌种复苏：从菌种保存库中取出一支rG-CSF表达的pKG931/HB101工作种子进行菌种复苏，将种子液按2%的体积比接种到含5ml液体LB培养基的10ml试管中培养，设定摇床温度为30℃，150r/min，培养12-14小时；所述液体LB的配方为：10g/L酵母粉+10g/L蛋白胨+5g/L氯化钠；
②.一级种子液培养：将复苏后的种子液按2%的体积比接种到含100ml液体LB培养基的500ml摇瓶中培养，设定摇床温度为30℃，150r/min，培养9-11小时；
③.二级种子液培养：将一级种子液按3%的体积比接种到含30L液体LB的贝朗50L发酵罐中，罐培养控制条件为：转速100-300rpm/min，通气30L/min，罐压0.1-0.2bar，温度30℃，溶氧不低于50%（通过控制发酵罐转速、通气、罐压保持溶氧不低于30%），培养3-5小时，至OD600值至为1.0-2.0时结束培养，取样镜检观察无杂菌，菌种形态正常，即为发酵罐培养用种子。
所述发酵罐培养包括以下子步骤：
①.发酵前的准备：采用贝朗公司500L发酵罐，将PH电极、溶氧电极校正和安装好；将发酵培养基浓缩液接入发酵罐并定容至500L，设定灭菌温度115℃，30min，发酵罐自动在线灭菌；所述发酵培养基的配方为：3000g酵母粉+3000g蛋白胨+1500g KH2PO4 2H2O+2000gNa2HPO4+500g NH4Cl+250g NaCl+5000g葡萄糖+62.5g MgCl2+6.25g CaCl2，加纯化水定容至500L；
②.发酵罐培养：灭菌后，待培养基温度降到30℃时，将种子罐中二级种子液通过管道接种到500L发酵罐中，发酵罐培养控制条件为：培养温度30℃，发酵培养过程通过调节转速、通气量及罐压等将溶氧控制在30%以上，各参数调节范围为：转速200—450r/min、通气量100-400L/min、罐压0.1-0.3bar，培养4小时开始诱导表达。
③.诱导发酵：诱导温度为37-42℃，诱导4小时，结束发酵，经离心收集发酵产物，平均湿菌体收率可达100-120g/L，其rG-CSF蛋白占菌体总蛋白的52%，收集到的发酵湿菌体可以在-20℃的冰箱中保存。
上述发酵罐培养子步骤②和③中，通过补加氨水控制PH为6.0-7.0，诱导后即开始补料，补料速度为每小时补加补料培养基5L。发酵补料培养基的配方为：100g/L酵母粉+100g/L蛋白胨。
b.对发酵培养所得菌体进行包涵体的分离和洗涤，得到精制包涵体
包涵体提取和包涵体洗涤子步骤：
①包涵体提取：用25mmol/L Tris-HCl-EDTA溶液（重组人粒细胞刺激因子发酵菌裂解液）将菌体悬浮利用高压均质机加压至500-600bar进行匀浆破碎，然后用管式离心机连续流离心的方法收集G-CSF包涵体；
②包涵体洗涤：先用25mmol/L Tris-HCl+2M盐酸胍溶液+0.5%曲拉通X-100（重组人粒细胞刺激因子包涵体洗涤液）将沉淀离心洗涤2次，再用纯化水将沉淀离心洗涤2次，洗涤过程使用J-26XP离心机离心收集沉淀，得精制G-CSF包涵体。
c.对精制包涵体进行变性处理，得到变性所得物
用20mmol/L Tris-HCl－10mmol/L DTT－8mol/L尿素将G-CSF包涵体进行溶解，然后离心收集上清液，收集的上清即为G-CSF包涵体蛋白溶液，纯度应达到90％以上。
d.对变性所得物进行复性处理
将G-CSF包涵体蛋白溶液用20mmol/L Tris-HCl－10mmol/L半胱氨酸-尿素进行稀释复性，包涵体蛋白溶液与复性用溶液体积比1:11，加入氯化铜溶液作为催化剂，室温下搅拌4-5小时,通过HPLC分析判断复性是否完全。
e.对复性所得物进行层析处理
包括两步层析：
①利用CM Sepharose FF离子交换柱层析对G-CSF复性液进行目的蛋白高度提纯，流动相A：为0.1%醋酸溶液-0.01%Tween-80，流动相B：为50%醋酸-0.01%Tween-80，先用流动相A平衡层析柱，上完样后用流动相B分阶段洗脱，在280nm波长检测器下收集最高色谱峰。
②将最终的离子交换层析收集液过Sephdax G-25凝胶柱，流动相为10mmol/L醋酸-醋酸钠-0.004%Tween-80，在280nm波长检测器下收集第一色谱峰。用0.2微米的滤膜将G-25凝胶层析收集液过滤除菌，其质量指标要达到原液标准。
原液经SDS-PAGE电泳扫描，纯度达到99%以上，HPLC显示单峰，rhG-CSF比活性达到3.9×108IU/mg。高于《中和人民共和国药典2010版》第三部的要求。
Claims (10)
1.一种重组人粒细胞刺激因子的生产方法，包括（1）对大肠杆菌表达重组人粒细胞刺激因子的工程菌株进行培养获得包涵体，（2）对发酵培养所得菌体进行包涵体的提取和洗涤，得到精制包涵体；（3）对精制包涵体进行变性处理，得到变性所得物；（4）对变性所得物进行复性处理；（5）对复性所得物进行层析纯化处理，得到重组人粒细胞集落刺激因子，其特征在于：所述大肠杆菌表达重组人粒细胞刺激因子的工程菌株为pKG931/HB101，培养方法包括扩增培养和发酵罐培养，其中扩增培养包括以下子步骤：
①.菌种复苏：将工程菌株进行菌种复苏，将种子液接种到液体LB培养基中培养，设定摇床温度为30℃，150r/min，培养12-14小时；
②.一级种子液培养：将复苏后的种子液接种到含液体LB培养基的摇瓶中培养，设定摇床温度为30℃，150r/min，培养9-11小时；
③.二级种子液培养：将一级种子液按增加1%的体积比方式接种到含30L液体LB的贝朗50L发酵罐中，罐培养控制条件为：转速100-300rpm/min，通气30L/min，罐压0.1-0.2bar，温度30℃，溶氧不低于50%，培养3-5小时，至OD600值至为1.0-2.0时结束培养，取样镜检观察无杂菌，菌种形态正常，即为发酵罐培养用种子；
所述发酵罐培养包括如下子步骤：
①.发酵前的准备：采用贝朗公司500L发酵罐，将发酵培养基浓缩液接入发酵罐并定容至500L，设定灭菌温度115℃，30min，发酵罐自动在线灭菌；
②.发酵罐培养：灭菌后，待培养基温度降到30℃时，将种子罐中二级种子液通过管道接种到500L发酵罐中，发酵罐培养控制条件为：培养温度30℃，发酵培养过程通过调节转速、通气量及罐压等将溶氧控制在30%以上，各参数调节范围为：转速200—450r/min、通气量100-400L/min、罐压0.1-0.3bar，培养4小时开始诱导表达；
③.诱导发酵：诱导温度为37-42℃，诱导4小时，结束发酵，经离心收集发酵产物。
2.如权利要求1所述的重组人粒细胞刺激因子的生产方法，其特征在于：所述LB培养基的组份及其配比为：10g/L酵母粉+10g/L蛋白胨+5g/L氯化钠。
3.如权利要求1所述的重组人粒细胞刺激因子的生产方法，其特征在于：所述发酵培养基浓缩液的组份及其配比为：3000g酵母粉+3000g蛋白胨+1500g KH2PO4·2H2O+2000gNa2HPO4+500g NH4Cl+250g NaCl+5000g葡萄糖+62.5g MgCl2+6.25g CaCl2。
4.如权利要求1至3中之一所述的重组人粒细胞刺激因子的生产方法，其特征在于：上述发酵罐培养子步骤②和③中，通过补加氨水控制PH为6.0-7.0，诱导后即开始补料，补料速度为每小时补加补料培养基5L。
5.如权利要求4所述的重组人粒细胞刺激因子的生产方法，其特征在于：所述发酵补料培养基的组份及其配比为：100g/L酵母粉+100g/L蛋白胨。
6.如权利要求1至3中之一所述的重组人粒细胞刺激因子的生产方法，其特征在于所述步骤（2）中包涵体提取和包涵体洗涤子步骤为：
①包涵体提取：用25mmol/L Tris-HCl-EDTA溶液构成的重组人粒细胞刺激因子发酵菌裂解液将菌体悬浮，利用高压均质机加压到500-600bar进行匀浆破碎，然后用管式离心机连续流离心的方法收集G-CSF包涵体；
②包涵体洗涤：先用25mmol/L Tris-HCl+2M盐酸胍溶液+0.5%曲拉通X-100重组人粒细胞刺激因子包涵体洗涤液将沉淀离心洗涤2次，再用纯化水将沉淀离心洗涤2次，洗涤过程离心收集沉淀，得精制G-CSF包涵体。
7.如权利要求1至3中之一所述的重组人粒细胞刺激因子的生产方法，其特征在于所述步骤（3）对精制包涵体进行变性处理，是用20mmol/L Tris-HCl－10mmol/L DTT－8mol/L尿素将G-CSF包涵体进行溶解，然后离心收集上清液。
8.如权利要求1至3中之一所述的重组人粒细胞刺激因子的生产方法，其特征在于所述步骤（4）复性处理，是将G-CSF包涵体蛋白溶液用20mmol/L Tris-HCl－10mmol/L半胱氨酸-尿素进行稀释复性，包涵体蛋白溶液与复性用溶液体积比1:11，加入氯化铜溶液作为催化剂，室温下搅拌4-5小时。
9.如权利要求1至3中之一所述的重组人粒细胞刺激因子的生产方法，其特征在于所述步骤（5）对复性所得物进行层析纯化处理，包括利用CM Sepharose FF离子交换柱层析对G-CSF复性液进行目的蛋白高度提纯，流动相A为0.1%醋酸溶液-0.01% Tween-80，流动相B为50%醋酸-0.01% Tween-80，先用流动相A平衡层析柱，上完样后用流动相B分阶段洗脱，在280nm波长检测器下收集最高色谱峰。
10.如权利要求9所述的重组人粒细胞刺激因子的生产方法，其特征在于在用CM SepharoseFF离子交换柱层析后还用Sephdax G-25凝胶柱层析，流动相为10mmol/L醋酸-醋酸钠-0.004%Tween-80，在280nm波长检测器下收集第一色谱峰，最后再用用0.2微米的滤膜将G-25凝胶层析收集液过滤除菌。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201310116114.8A CN103233053B (zh) | 2013-04-03 | 2013-04-03 | 一种重组人粒细胞刺激因子的生产方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201310116114.8A CN103233053B (zh) | 2013-04-03 | 2013-04-03 | 一种重组人粒细胞刺激因子的生产方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN103233053A true CN103233053A (zh) | 2013-08-07 |
| CN103233053B CN103233053B (zh) | 2014-03-05 |
Family
ID=48881118
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN201310116114.8A Active CN103233053B (zh) | 2013-04-03 | 2013-04-03 | 一种重组人粒细胞刺激因子的生产方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN103233053B (zh) |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103820414A (zh) * | 2014-03-07 | 2014-05-28 | 重庆原伦生物科技有限公司 | 变形链球菌重组亚单位基因工程疫苗候选抗原Glu的纯化方法 |
| CN104004082A (zh) * | 2014-05-27 | 2014-08-27 | 北京四环生物制药有限公司 | 一种重组人白细胞介素-2发酵包涵体的提取方法 |
| CN104558100A (zh) * | 2015-02-04 | 2015-04-29 | 吉林农业大学 | 包涵体的预处理方法 |
| CN105002103A (zh) * | 2015-06-06 | 2015-10-28 | 山东新时代药业有限公司 | 一种重组g-csf（15-75）多肽毕赤酵母菌的发酵方法 |
| CN105695385A (zh) * | 2016-03-30 | 2016-06-22 | 通化东宝药业股份有限公司 | 重组人胰岛素基因工程菌高表达株筛选培养基及制备方法 |
| CN106222221A (zh) * | 2016-08-05 | 2016-12-14 | 山东科兴生物制品有限公司 | 制备重组人粒细胞刺激因子原液的纯化方法 |
| WO2017177981A1 (zh) * | 2016-04-15 | 2017-10-19 | 江苏恒瑞医药股份有限公司 | 一种重组人粒细胞刺激因子的复性及纯化方法 |
| CN109294968A (zh) * | 2017-07-25 | 2019-02-01 | 格兰柏生化科技有限公司 | 一种动物核酸疫苗的大规模生产技术 |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102154189A (zh) * | 2010-12-31 | 2011-08-17 | 山东新时代药业有限公司 | 一种rhG-CSF重组工程菌的发酵培养方法 |
| CN101830977B (zh) * | 2010-05-07 | 2012-01-25 | 厦门特宝生物工程股份有限公司 | 一种重组人粒细胞刺激因子的纯化方法 |
| WO2012057529A2 (en) * | 2010-10-29 | 2012-05-03 | Hanmi Holdings Co., Ltd. | Method for purifying human granulocyte-colony stimulating factor from recombinant e. coli |
-
2013
- 2013-04-03 CN CN201310116114.8A patent/CN103233053B/zh active Active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101830977B (zh) * | 2010-05-07 | 2012-01-25 | 厦门特宝生物工程股份有限公司 | 一种重组人粒细胞刺激因子的纯化方法 |
| WO2012057529A2 (en) * | 2010-10-29 | 2012-05-03 | Hanmi Holdings Co., Ltd. | Method for purifying human granulocyte-colony stimulating factor from recombinant e. coli |
| CN102154189A (zh) * | 2010-12-31 | 2011-08-17 | 山东新时代药业有限公司 | 一种rhG-CSF重组工程菌的发酵培养方法 |
Cited By (15)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103820414A (zh) * | 2014-03-07 | 2014-05-28 | 重庆原伦生物科技有限公司 | 变形链球菌重组亚单位基因工程疫苗候选抗原Glu的纯化方法 |
| CN103820414B (zh) * | 2014-03-07 | 2016-08-17 | 成都欧林生物科技股份有限公司 | 变形链球菌重组亚单位基因工程疫苗候选抗原Glu的纯化方法 |
| CN104004082B (zh) * | 2014-05-27 | 2015-06-10 | 北京四环生物制药有限公司 | 一种重组人白细胞介素-2发酵包涵体的提取方法 |
| CN104004082A (zh) * | 2014-05-27 | 2014-08-27 | 北京四环生物制药有限公司 | 一种重组人白细胞介素-2发酵包涵体的提取方法 |
| CN104558100A (zh) * | 2015-02-04 | 2015-04-29 | 吉林农业大学 | 包涵体的预处理方法 |
| CN105002103A (zh) * | 2015-06-06 | 2015-10-28 | 山东新时代药业有限公司 | 一种重组g-csf（15-75）多肽毕赤酵母菌的发酵方法 |
| CN105002103B (zh) * | 2015-06-06 | 2018-08-14 | 山东新时代药业有限公司 | 一种重组g-csf（15-75）多肽毕赤酵母菌的发酵方法 |
| CN105695385A (zh) * | 2016-03-30 | 2016-06-22 | 通化东宝药业股份有限公司 | 重组人胰岛素基因工程菌高表达株筛选培养基及制备方法 |
| CN105695385B (zh) * | 2016-03-30 | 2017-05-10 | 通化东宝药业股份有限公司 | 重组人胰岛素基因工程菌高表达株筛选培养基及制备方法 |
| WO2017177981A1 (zh) * | 2016-04-15 | 2017-10-19 | 江苏恒瑞医药股份有限公司 | 一种重组人粒细胞刺激因子的复性及纯化方法 |
| CN108368162A (zh) * | 2016-04-15 | 2018-08-03 | 江苏恒瑞医药股份有限公司 | 一种重组人粒细胞刺激因子的复性及纯化方法 |
| CN108368162B (zh) * | 2016-04-15 | 2021-11-12 | 江苏恒瑞医药股份有限公司 | 一种重组人粒细胞刺激因子的复性及纯化方法 |
| CN106222221A (zh) * | 2016-08-05 | 2016-12-14 | 山东科兴生物制品有限公司 | 制备重组人粒细胞刺激因子原液的纯化方法 |
| CN109294968A (zh) * | 2017-07-25 | 2019-02-01 | 格兰柏生化科技有限公司 | 一种动物核酸疫苗的大规模生产技术 |
| CN109294968B (zh) * | 2017-07-25 | 2022-06-14 | 格兰柏生化科技有限公司 | 一种动物核酸疫苗的大规模生产技术 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN103233053B (zh) | 2014-03-05 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN103233053B (zh) | 一种重组人粒细胞刺激因子的生产方法 | |
| CN102146426B (zh) | 毕赤酵母表达重组类人胶原蛋白的生产方法 | |
| CN108070032A (zh) | 一种重组人源胶原蛋白的纯化方法 | |
| CN102242165A (zh) | 一种发酵生产高分子量透明质酸钠的方法及其所用的培养基 | |
| WO2015103974A1 (zh) | 麦角硫因的提取及纯化方法 | |
| CN100376684C (zh) | 用低次烟叶蛋白制备抑菌肽的方法 | |
| CN102775466A (zh) | 富硒酵母中含硒蛋白的制备方法 | |
| CN102154189A (zh) | 一种rhG-CSF重组工程菌的发酵培养方法 | |
| CN103204904B (zh) | 一种抗前列腺癌赤魟软骨蛋白多肽及其制备方法和用途 | |
| CN103937830A (zh) | 一种高效分泌表达纳豆激酶的重组菌 | |
| CN102994601A (zh) | 一种利用海洋胶原蛋白酶mcp-01制备胶原蛋白小肽的方法 | |
| CN108368162B (zh) | 一种重组人粒细胞刺激因子的复性及纯化方法 | |
| CN101367883B (zh) | 一种从发酵液中提取灵芝多糖的方法 | |
| CN105177033A (zh) | 利用pSUMO系统制备碱性成纤维细胞生长因子的方法 | |
| CN105017407A (zh) | 一种重组人表皮生长因子的纯化方法 | |
| CN102167733A (zh) | 一种可酸切高拷贝降血压肽串联基因的构建、表达及应用 | |
| CN103014100A (zh) | 一种重组人粒细胞刺激因子的纯化方法 | |
| CN102180959A (zh) | 改良的鸡白介素2蛋白及其制备方法 | |
| CN102660568B (zh) | 一种重组胸腺肽α1的制备方法 | |
| CN101182475A (zh) | 高效表达弹性蛋白酶的毕赤酵母及其构建方法和应用 | |
| CN110527690A (zh) | 一种耐热型单宁酶及其应用 | |
| CN102181468A (zh) | 酿酒酵母金属硫蛋白成熟肽的高效表达纯化方法 | |
| CN102212547A (zh) | 肠三叶因子重组表达载体及肠三叶因子制备方法 | |
| CN1473843A (zh) | 重组 trail 包含体蛋白的工业化提取、复性和纯化方法 | |
| CN102115736B (zh) | 一种植物叶绿素酶的纯化方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| GR01 | Patent grant | ||
| GR01 | Patent grant |