CN103173403B - 一种分程胚胎培养液及其配制方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种分程胚胎培养液及其配制方法属于细胞学、生物技术领域.采用添加三种胚胎营养因子的分程培养液,包括卵裂液和囊胚液两种,在体外受精卵和在8-细胞期前后分别使用。本发明的胚胎培养液加入的胚胎营养因子具有协同增效作用,避免了分程培养液丢失胚胎自身分泌的胚胎营养因子的缺陷,受精卵在本发明的培养液中生长具有更高的胚胎干细胞多能性,其发育情况与体内胚胎生长相当,提高了受精卵体外生长发育,改善了胚胎的质量。
Description
技术领域
本发明涉及细胞培养领域,具体地说涉及一种提高体外受精卵生长发育效果的分程胚胎培养液及其配制方法。
背景技术
自从世界上第一个“试管”婴孩于1978年7月25日在英国出生后,到2012年7月1日已有500万个“试管”婴孩诞生。IVF(体外受精)为全球超过占5000万不孕症夫妇带来了福音。然而,三十多年的临床实践并没有显著提高IVF的成功率。2011年,美国妊娠协会统计35岁病人IVF成功率(受孕率)在25-30%左右,而1997年也在30%左右。而婴儿出生率更低。其中一个重要的原因是IVF胚胎培养液的质量。这是IVF胚胎质量最重要的决定性因素之一。
IVF培养通常分为两种流程即两种培养液系列:全程(单培养液系列)和分程(双培养液系列)。利用双培养液系列流程对胚胎早期和后期阶段提供不同的培养液成份,但也丢失了由胚胎分泌入培养液中的重要的有效成份,如胚胎营养因子。全程培养液系列流程保留了这些重要的有效成份,但也保留了培养液中有害的分解产物。
发明内容
发明目的:本发明的目的是提供加入多种胚胎营养因子的分程胚胎培养液,本发明的另一个目的是提供上述分程胚胎培养液的配制方法。
技术方案:为实现上述目的,本发明的一种分程胚胎培养液,包括基本培养液和胚胎营养因子,其中,所述基本培养液包括无机盐缓冲液、氨基酸、丙酮酸钠、乳酸钠、葡萄糖和血清白蛋白;
所述胚胎营养因子包括PAF、IGF-1和GM-CSF的任意一种或多种。
对于本发明涉及的胚胎营养因子,PAF(Platelet-Activating Factor)是植入前期胚胎分泌的磷脂质,在应用中,主要作用在2-细胞期胚胎。PAF可诱导2-细胞胚胎中转录CREB(cAMP-Response element binding protein,cAMP反应元件结合蛋白)的磷酸化,并进一步诱导2-细胞胚胎表达有利于胚胎细胞生存的转录因子和CREB-靶向的转录因子。另一方面,PAF激活MDM2,促使其与细胞核的P53结合成复合物,在细胞浆内将P53降价,从而抑制胚胎细胞的凋零。
IGF-1是IGF(Insulin-like Growth Factors)胰岛素样生长因子中的一种,又被称作“促生长因子”,是一种植入前期胚胎分泌的活性蛋白多肽物质。GM-CSF(Granulocyte-macrophage Colony-stimulating Factor,粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子),可由卵巢,输卵管,子宫内膜的上皮细胞产生,人类卵子和植入前期胚胎存在GM-CSF受体。起到抑制胚胎细胞凋零,提高胚胎发育的作用。
以上胚胎营养因子在培养液中,可促使受精卵生长发育,生成的囊胚期胚胎具有更高的胚胎干细胞多能性,胚胎干细胞生物学指标UTF1和NANOG的表达量比在无胚胎营养因子的胚胎培养液所生成的囊胚期胚胎明显增高。
本发明采用的是分程培养液,即双程培养液,包括卵裂液培养液和囊胚液培养液。所述卵裂液和囊胚液的无机盐缓冲液都包括如下组分:氯化钠、氯化钾、磷酸二氢钾、氯化钙、硫酸镁、碳酸氢钠和EDTA二钠。
具体地说,无机盐缓冲液中所述氯化钾与氯化钠的摩尔比为1.8~2.2:100;所述磷酸二氢钾与氯化钠的摩尔比为0.3~0.4:100;所述氯化钙与氯化钠的摩尔比为1.6~1.8:100;所述硫酸镁与氯化钠的摩尔比为0.18~0.22:100;所述碳酸氢钠与氯化钠的摩尔比为20~30:100;所述EDTA二钠与氯化钠的摩尔比为0.01:100。
作为本发明的最优方案,无机盐缓冲液中氯化钾与氯化钠摩尔比为2:100;磷酸二氢钾与氯化钠摩尔比为0.35:100,氯化钙与氯化钠摩尔比1.71:100,硫酸镁与氯化钠摩尔比为0.2:100,碳酸氢钠与氯化钠摩尔比为25:100,EDTA二钠与氯化钠摩尔比为0.01:100。从而使缓冲液维持在pH7.3~7.5之间,有利于体外胚胎的生长发育。
其中,对于卵裂液培养液,所述胚胎营养因子由PAF、IGF-1和GM-CSF组成,用于配制受精卵体外生长至8-细胞期的卵裂液培养液。
进一步的,对于卵裂液培养液,所述PAF浓度为20ng/毫升,所述IGF-1浓度为2ng/毫升;所述GM-CSF浓度为2ng/毫升。所述乳酸钠和氯化钠的摩尔比为10.5:100;所述丙酮酸钠和氯化钠的摩尔比为0.32:100;所述葡萄糖和氯化钠的摩尔比为0.5:100。每毫升基本培养液含有3mg血清白蛋白。
对于囊胚液培养液,所述胚胎营养因子由IGF-1和GM-CSF组成,用于配制体外受精卵从8-细胞期至植入前的囊胚液培养液。
具体地说,所述IGF-1浓度为5ng/毫升;所述GM-CSF浓度为4ng/毫升。进一步的,所述乳酸钠和氯化钠的摩尔比为5.87:100;所述丙酮酸钠和氯化钠的摩尔比为0.1:100;所述葡萄糖和氯化钠的摩尔比为3.15:100。每毫升基本培养液含有4mg血清白蛋白。
对于本发明分程胚胎培养液的配制方法,先配制基本培养液,将PAF预先存放在有机溶剂中,配制时吸取PAF于清洁的硅化玻璃管中,注入氮气将有机溶剂挥发,加入含有血清白蛋白的基本培养液,涡旋混合,避免气泡产生,于25℃水箱水浴孵化1小时使PAF与血清蛋白充分结合,再加入含有血清白蛋白的基本培养液配制到浓度为20ng/毫升;将高于终浓度200倍的IGF-1和GM-CSF完全溶于超纯水中,再加入含有血清白蛋白的基本培养液分别稀释至终浓度2ng/毫升和2ng/毫升。获得卵裂液培养液。
配制基本培养液,将高于终浓度200倍的IGF-1和GM-CSF完全溶于超纯水中,再加入含有血清白蛋白的基本培养液分别稀释至终浓度5ng/毫升和4ng/毫升。获得囊胚液培养液。
本发明中所述氨基酸包括必需氨基酸和非必需氨基酸,对于用于人类体外受精的合子而言,所述氨基酸包括所有胚胎所需的必需氨基酸和非必需氨基酸。
有益效果:本发明的一种胚胎培养液及其配制方法通过加入多种胚胎营养因子避免了分程培养液流程丢失胚胎自身分泌的胚胎营养因子的缺点,同时,三种胚胎营养因子具有协同增效效果。受精卵在含胚胎营养因子的培养液中所生成的囊胚胚胎具有更高的胚胎干细胞多能性,表现为其中更多的细胞表达胚胎干细胞生物学指标UTF1和NANOG;并且与体内发育成的囊胚期胚胎无统计学上的差别。本发明的胚胎培养液可显著提高受精卵体外生长发育,改善胚胎的质量,为提高助孕技术的成功率提供了重要的手段。
附图说明
图1表示受精卵在三种体外培养液下84小时后囊胚期胚胎的百分率及每个胚胎的细胞数;
图2为受精卵培养后每24小时胚胎与体内同期胚胎所含的细胞总数的比较图;
图3表示为本发明的免疫荧光技术分析加入胚胎营养因子的培养液所生长成的囊胚期胚胎含有与体内生长成的囊胚期胚胎相当数量的总细胞数和表达胚胎干细胞生物标记(UTF1)的细胞数;
图4所示为本发明的Western blot和免疫荧光技术分析加入胚胎营养因子的培养液所生长成的囊胚期胚胎含有更多数量的总细胞数和表达胚胎干细胞生物标记(NANOG)的细胞数。
具体实施方式
下面结合附图对本发明作更进一步的说明。
实施例1
一种分程胚胎培养液,由卵裂液和囊胚液组成,卵裂液用于受精卵生长至8-细胞期的时期内,囊胚液用于受精卵从8-细胞期生长至受精卵植入前时期内。卵裂液和囊胚液都由基本培养液和胚胎营养因子组成,且基本培养液中的无机盐缓冲液组分相同。
无机盐缓冲液的配方如表1所示,其pH在7.3~7.5之间:
表1卵裂液和囊胚液的配方
其中,氨基酸包括必需氨基酸和非必需氨基酸,包括所有胚胎所需的必需氨基酸和非必需氨基酸,其含量与胚胎需求相对应。氨基酸购于Life Technologies公司。
以上分程胚胎培养液的配制方法是,准备PAF,PAF购于Sigma-Aldrich.Co.LLC公司,将PAF C18(β-Acetyl-γ-O-octadecyl-L-α-phosphatidylcholine)和PAF C16(β-Acetyl-γ-O-hexadecyl-L-α-phosphatidylcholine),按相同浓度混合,储于有机溶剂氯仿中(10毫克/毫升)。配制时吸取2微升PAF于清洁的硅化玻璃管中,注入高压氮气气流将氯仿挥发,加入1毫升含有3毫克血清白蛋白/毫升的基本培养液,涡旋混合,避免气泡产生,于25℃水箱水浴孵化1小时使PAF与血清蛋白充分结合,涡旋混合,再加入含有3毫克白蛋白/毫升的基本培养液配制到浓度为20ng/毫升。用MilliQ水(超纯水)配制高于终浓度200倍的IGF-1和GM-CSF,完全溶解后再加入含有白蛋白的基本培养液稀释至终浓度,IGF-1和GM-CSF用于配制卵裂液的终浓度分别为2ng/毫升和2ng/毫升。以上获得用于受精卵体外生长至8-细胞期的卵裂液。
对于囊胚液的配制,用MilliQ水配制高于终浓度200倍的IGF-1和GM-CSF,完全溶解后再加入含有白蛋白的基本培养液稀释至终浓度即可,用于配制囊胚液的终浓度分别为5ng/毫升和4ng/毫升。囊胚液用于8-细胞期生长至植入前。
其中,IGF-1购于Life Technologies公司的重组IGF-1产品,GM-CSF购于Sigma-Aldrich.Co.LLC.公司的重组GM-CSF产品。
本事实例中的胚胎营养因子在培养液中,可促使受精卵生成的囊胚期胚胎具有更高的胚胎干细胞多能性,胚胎干细胞生物学指标UTF1和NANOG的表达量比在无胚胎营养素的胚胎营养液所生成的囊胚期胚胎明显增高。请参考下文的试验例部分。
实施例2
本实施例与实施例1基本相同,其区别在于基本培养液的配方如表2所示:
表2实施例2基本培养液的配方
实施例3
本实施例与实施例1基本相同,其区别在于胚胎培养液的配方如表3所示:
表3实施例3基本培养液的配方
试验例1囊胚期胚胎生成率和每个胚胎总细胞数的统计比较
取小鼠卵子并进行体外受精,胚胎培养条件如下:
1)以10微升培养液微滴,上面覆盖大约2毫米厚的矿物油;
2)37℃恒温、保湿,通入5%O2+5%CO2+90%N2的混合气体;
3)台式孵化器(COOK公司),气体流量为每分钟15毫升;
4)加入胚胎前,培养液必须在孵化箱内平衡至少2小时,pH值至7.4;
5)将10个受精卵加入到10μL实施例1获得的卵裂液培养液中;
6)受精卵在卵裂液中培养48小时后换成囊胚液培养液。
本试验将实施例1的双程胚胎培养液作为实验组,实施例1不加胚胎营养因子作为对照,同时采用COOK公司生产的产品sIVF双程胚胎培养液进行对比,在相同条件下体外培养受精卵。通过胚胎的形态学特点记录并计算出84小时受精卵培养后囊胚期胚胎的生成率,然后利用2%的福莫尔林固定胚胎30分钟,用每毫升10微克Hoechst33342染色,制片,荧光显微镜下检测每个胚胎的总细胞数。对比结果如图1所示。
从图1中可以看出,加入胚胎营养因子囊胚期胚胎生成率都高于不加胚胎营养因子的组,而囊胚期细胞数在加入胚胎营养因子后,具有显著增效作用。另外,本发明双程培养液中三种胚胎营养因子的组合其实验结果显著高于其他两组,显著地提高了受精卵体外生长发育。
试验例2与体内同期胚胎的总细胞数比较
本试验例将小鼠体内收集的受精卵分为两组,分别在实施例1的胚胎培养液中培养、以及在如实施例1中的胚胎培养液中生长但该培养液中不含有胚胎营养因子。另一组为体内同期胚胎。三组均以注射hCG后的相同时间假定为同期胚胎。通过采用2%的福莫尔林固定胚胎30分钟,用每毫升10微克Hoechst33342染色,制片,荧光显微镜下每12小时检测每个胚胎的总细胞数,将培养液中胚胎总细胞数与体内同期胚胎所含的总细胞数进行比较。
结果如图2所示,可以看出,加入胚胎营养因子的培养液产生的细胞数与体内同期胚胎相当,而不加胚胎营养因子的胚胎所含的细胞数明显降低(p<0.001)。
试验例3免疫荧光技术分析
UTF1(Unidifferentiated Embryonic Cell Transcription Factor1)是人类及动物胚胎干细胞的生物学指标之一,本试验通过统计囊胚期胚胎表达UTF1的细胞数,将实施例1的胚胎培养所产生的囊胚期胚胎和体内囊胚期胚胎进行比较。
利用2%福莫尔林室温下固定胚胎30分钟;室温下置于含0.3%Tween-20的PBS中30分钟使细胞膜通透化;室温下置于30%的与二抗相同源的动物血清中1小时以阻断非特异性的结合位点;在4℃环境下与一抗结合12小时;室温下与二抗结合1小时;每毫升10微克Hoechst33342染色DNA以确定细胞核的位置。试验结果如图3所示。
从图3可以看出,利用本发明实施例1的胚胎培养液,囊胚期胚胎含有与体内生长成的囊胚期胚胎相当数量的总细胞数(P>0.05);并且表达胚胎干细胞生物标记(UTF1)的细胞数也无显著性差异(P>0.05)。
试验例4Western Blot检测目标蛋白质
NANOG是重要的人类及动物胚胎干细胞的生物学指标,是维持胚胎干细胞多能性的关键因子。本试验将体外受精卵在实施例1所述胚胎培养液的生长情况与体内同期受精卵的生长情况进行对比。
1)配制蛋白质抽取液:
溶剂:聚乙二醇辛基苯基醚(TritonX-100),
24mM脱氧胆酸,
0.2%十二烷基硫酸钠(SDS),
20mM氟化钠,
20mM Na4P2O7,
2mM苯甲基磺酰氟(PMSF,Phenylmethanesulphony Fluoride),
3.08mM抑肽酶,
42mM亮抑蛋白酶肽(Leupeptin),
2.91mM抑胃肽(Pepstatin A)。
2)将50个小鼠胚胎置于1.5微升蛋白质抽取液。液氮处理收集蛋白质,稀释于Laemmli加载缓冲液。
3)使用PhastSystem装置系统(由Amersham Pharmacia Biotech公司制造)作蛋白质电泳和转膜。转膜缓冲液含12mM Tris,96mM甘氨酸和20%甲醇。以含5克%脱脂牛奶粉的阻断液阻断非特异性的结合位点。在4℃环境下与初级抗体结合12小时,于HRP(Horse Radish Peroxidase)共轭的二级抗体中室温下孵化1小时。
4)利用免疫荧光分析技术检测目标蛋白质,结果如图4所示。
如图4所示,本试验Western Blot分析胚胎营养因子增加了胚胎干细胞生物标记(NANOG)的表达,ACTIN是HOUSEKEEPER基因,作为蛋白质总量的常用参照;MBL5是常用的胚胎干细胞用于阳性对照。免疫荧光技术分析加入胚胎营养因子的培养液所生长成的囊胚期胚胎含有更多数量的总细胞数(P<0.01);并且表达NANOG的细胞数也显著性增高(P<0.001)。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出:对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
Claims (3)
1.一种分程胚胎培养液,包括基本培养液和胚胎营养因子,其特征在于:
所述基本培养液包括无机盐缓冲液、氨基酸、丙酮酸钠、乳酸钠、葡萄糖和血清白蛋白;
所述胚胎营养因子由20ng/毫升PAF、2ng/毫升IGF-1和2ng/毫升GM-CSF组成,用于配制受精卵体外生长至8-细胞期的卵裂液培养液;以及
所述胚胎营养因子由5ng/毫升IGF-1和4ng/毫升GM-CSF组成,用于配制体外受精卵从8-细胞期至植入前的囊胚液培养液;
所述无机盐缓冲液包括氯化钠、氯化钾、磷酸二氢钾、氯化钙、硫酸镁、碳酸氢钠和EDTA二钠;
当配制受精卵体外生长至8-细胞期的卵裂液培养液时,
所述乳酸钠和氯化钠的摩尔比为10.5:100;
所述丙酮酸钠和氯化钠的摩尔比为0.32:100;
所述葡萄糖和氯化钠的摩尔比为0.5:100;
每毫升基本培养液含有3mg血清白蛋白;
当配制体外受精卵从8-细胞期至植入前的囊胚液培养液时,
所述乳酸钠和氯化钠的摩尔比为5.87:100;
所述丙酮酸钠和氯化钠的摩尔比为0.1:100;
所述葡萄糖和氯化钠的摩尔比为3.15:100;
每毫升基本培养液含有4mg血清白蛋白。
2.根据权利要求1所述的一种分程胚胎培养液,其特征在于:
所述氯化钾与氯化钠的摩尔比为1.8~2.2:100;
所述磷酸二氢钾与氯化钠的摩尔比为0.3~0.4:100;
所述氯化钙与氯化钠的摩尔比为1.6~1.8:100;
所述硫酸镁与氯化钠的摩尔比为0.18~0.22:100;
所述碳酸氢钠与氯化钠的摩尔比为20~30:100;
所述EDTA二钠与氯化钠的摩尔比为0.01:100。
3.如权利要求1所述的分程胚胎培养液的配制方法,其特征在于:用于配制受精卵体外生长至8-细胞期的卵裂液培养液时,先配制基本培养液,将PAF预先存放在有机溶剂中,配制时吸取PAF于清洁的硅化玻璃管中,注入氮气将有机溶剂挥发,加入含有血清白蛋白的基本培养液,涡旋混合,避免气泡产生,于25℃水箱水浴孵化1小时使PAF与血清蛋白充分结合,再加入含有血清白蛋白的基本培养液配制到浓度为20ng/毫升;将高于终浓度200倍的IGF-1和GM-CSF 完全溶于超纯水中,再加入含有血清白蛋白的基本培养液分别稀释至终浓度2ng/毫升和2ng/毫升;
用于配制体外受精卵从8-细胞期至植入前的囊胚液培养液时配制基本培养液时,将高于终浓度200倍的IGF-1和GM-CSF 完全溶于超纯水中,再加入含有血清白蛋白的基本培养液分别稀释至终浓度5ng/毫升和4ng/毫升。
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