发明内容
本发明的目的是为了克服上述不足,提供一种疗效确切、安全可靠、服用量小、携带方便的追风透骨丸和追风透骨片换代产品,包括胶囊、片剂、浓缩丸等剂型,本发明的另一个目的是提供该产品的制备方法和质量控制方法。
为达到本发明的目的,所采用的技术方案是:
一种主治关节炎的中成药,是由下列重量百分比药材量制成,将白芷、麻黄、川芎、当归、羌活、防风、桂枝、甘松8味用超临界CO2萃取法提取脂溶性提取物A;然后将这8味药材提取脂溶性部位后的药渣B,加制川乌、制草乌、制香附、甘草、炒白术、秦艽、地龙、茯苓、天麻、细辛、制天南星11味药材一起用40~80%的乙醇溶液提取,所得的醇提物浓缩至稠膏为C;制没药、制乳香、赤小豆、赤芍4味药材粉碎成细粉,与稠膏C混合均匀,干燥、粉碎后得干膏粉D;干膏粉D和脂溶性提取物A混匀,得药物E,按常规的中药制剂工艺制成口服制剂,用高效液相色谱法测定,1g药物E干品中含赤芍以芍药苷(C23H23O11)计不得少于1.0mg。
处方:制川乌 5.21% 白芷 5.21% 制草乌 5.21%
制香附 5.21% 甘草 5.21% 炒白术 2.60%
制没药 1.05% 麻黄 5.21% 川芎 5.21%
制乳香 2.60% 秦艽 2.60% 地龙 5.21%
当归 2.60% 茯苓 10.42% 赤小豆 5.21%
羌活 5.21% 天麻 2.60% 赤芍 5.21%
细辛 5.21% 防风 2.60% 制天南星 5.21%
桂枝 2.60% 甘松 2.60%
为了服用携带方便和适合于临床使用,所述的口服制剂可以是胶囊剂、片剂、浓缩丸。
为达到本发明的另一个目的,提供该产品的制备方法,按如下步骤制备:
步骤一:取处方量的白芷、麻黄、川芎、当归、羌活、防风、桂枝、甘松,置超临界萃取设备中,用CO2流体作为萃取介质,萃取条件为:萃取压力为24~30MPa,萃取温度为40~60℃,解析压力为5~7MPa,解析温度为30~50℃,萃取时间为1~3小时,从解析釜得到脂溶性提取物A,从萃取釜得到药渣B;
步骤二:将步骤一得到的药渣B,与处方量的药材:制川乌、制草乌、制香附、甘草、炒白术、秦艽、地龙、茯苓、天麻、细辛、制天南星,用40~80%的乙醇溶液提取1~3次,每次0.5~3小时,合并提取醇溶液,滤过,浓缩得稠膏C;
步骤三:取处方量的药材:制没药、制乳香、赤小豆、赤芍,粉碎成细粉,与稠膏C混合均匀,干燥、粉碎后得干膏粉D;
步骤四:取干膏粉D与脂溶性提取物A混匀,得药物E;
步骤五:取药物E,按常规的中药制剂工艺制成口服制剂。
其口服制剂可采用常规的中药制剂工艺制备,如取药物E,加入药用辅料,经制粒或不经制粒直接灌装胶囊,制成胶囊剂;
或取药物E,加入药用辅料,经制粒,压制成片剂;
或取药物E,加入药用辅料,用塑制法或泛制法制成浓缩丸。
本发明的产品及其制备方法是发明者采用正交试验法,通过药效学筛选获取的,试验如下:
1、确定提取条件的正交试验
取处方量的药材:制川乌、制草乌、制香附、甘草、炒白术、秦艽、地龙、茯苓、天麻、细辛、制天南星等11味,与超临界萃取后的药渣B混合,采用正交试验法,以镇痛、抗炎药效学指标筛选提取溶剂、溶剂用量、提取时间、提取次数及粉碎度。正交表选取L16(4)5表,因素水平见表1。
表1提取因素水平表
|
因素水平 |
乙醇浓度(%)A |
提取时间(h)B |
溶剂用量(倍)C |
粉碎度D |
提取次数(次)E |
|
1234 |
0406080 |
0.511.52 |
57911 |
φ0.6cm最粗粉粗粉中粉 |
1234 |
2供试品的制备
按处方比例称取药材,桂枝25g、白芷50g、麻黄50g、川芎50g、当归25g、羌活50g、防风25g、甘松25g,粉碎成粗粉,经CO2超临界萃取,萃取条件为:萃取压力26Mpa,萃取温度40℃,解析压力6Mpa,解析温度30℃,萃取时间为3小时。另称取制川乌50g、制草乌50g、制香附50g、甘草50g、炒白术25g、秦艽25g、地龙50g、茯苓100g、天麻25g、细辛50g、制天南星50g,按下表7中16组条件粉碎成不同细度,与超临界提取后的药渣B混合,按下表7中16组不同条件分别提取,滤过,合并滤液,静置12小时,取上清液,60℃减压回收乙醇并浓缩至稠膏状,备用。制没药10g、制乳香25g、赤小豆50g、赤芍50g粉碎成细粉,加入上述稠膏中,混匀,60℃下减压干燥,粉碎成细粉。超临界萃取物用适量乙醇溶解,喷入上述干膏粉中,混匀,即得16组供试品。
3正交试验各组供试品的药效学试验
所筛选药物是临床用于治疗关节炎的有效方药,根据其适应症我们选择了镇痛的2个指标:①对醋酸所致小鼠扭体反应的影响②对小鼠热板法所致疼痛作用的影响;以及抗炎的3个指标:①对尿酸钠(MSU)诱发大鼠足肿胀的影响②对大鼠棉球肉芽肿的影响③对二甲苯所致小鼠耳肿胀试验的影响。通过上述5个指标对正交试验各组样品进行了药效学试验。
3.1试验材料与剂量
3.1.1药品与试剂
追风透骨丸为阳性对照药品;冰醋酸,0.6%醋酸(由冰醋酸配成);消炎痛,25mg/片;戊巴比妥钠;肝素钠注射液;0.9%氯化钠注射液,500ml/瓶;尿酸(Lancaster)25g/瓶,Morecambe.England,Batch:10057758;注射用青霉素钠,80万单位/只。
3.1.2动物
Wistar大鼠,体重140±30g,昆明种小鼠,体重20±2g,
3.1.3剂量的选择
原追风透骨丸及原追风透骨片的人临床剂量为4g生药量/次,2次/日。正交试验各组样品以得膏量与投料药材量作相应换算,与原制剂服用生药量相等。选择大剂量组进行实验,小鼠中剂量相当于人临床剂量的9.01倍,常用按10倍计算;大鼠中剂量,相当于人临床剂量的6.25倍,常用按7.5倍计算。在此基础之上,大剂量小鼠提高至20倍,大鼠提高至15倍。一天两次的剂量作一次给药。
3.2方法与结果
3.2.1镇痛试验
(1)对醋酸所致小鼠扭体反应的影响
取小白鼠,按体重随机分18组,每组10只,筛选药物1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16剂量分别为0.76、1.16、1.28、1.48、1.00、1.00、1.00、0.88、0.96、1.00、0.79、0.75、0.92、0.88、0.92、0.88g/kg(即g干膏/kg动物,以下相同);17组为生理盐水对照组。各组均等容积0.4ml/只灌胃给药7天,末次给药30min后,各鼠分别腹腔注射0.6%HAC0.2ml/只,观察各鼠产生扭体潜伏期、15min内扭体次数及产生扭体反应的小鼠数,计算镇痛百分率。结果见表2。
镇痛百分率(%)=(NS对照组扭体数-给药组扭体数)/NS对照组扭体数×100%
表2对醋酸所致小鼠扭体反应的影响(x±s,n=10)
| 组别 |
药物及剂量(g/kg) |
鼠数(只) |
潜伏期(s) |
扭体次数(n) |
镇痛百分率(%) |
|
12345678910111213141516生理盐水(NS) |
0.761.161.281.481.001.001.000.880.961.000.790.750.920.880.920.880.4ml/只 |
1010101010101010101010101010101010 |
158.8±46.74131.8±67.68177.6±47.11243.6±125.06273.8±123.99236.7±108.48265.8±143.88*243±93.72259±88.75240.6±67.82224.5±30.41342.5±146.50**247±41.16118.1±92.37180±64.35*237.9±68.76253.5±45.78 |
19.9±16.8024.5±13.2722.2±7.7416.6±9.5414.9±10.0916.5±7.9914.2±9.07*19.4±9.4018.1±8.1219.5±7.2520.2±4.669.1±8.56**22.7±11.4026.5±11.5516.5±7.89*23.2±15.7224.4±7.26 |
18.44-0.419.0231.9738.9332.3841.820.4925.8220.0817.2162.706.97-8.6132.384.92-- |
注:与生理盐水对照组比*P<0.05,**P<0.01
由表可知,筛选药物7、12、15组能减少扭体次数,延长产生疼痛反应的潜伏期,与阴性对照组比有显著性差异(P<0.05)。
(2)对小鼠热板法所致疼痛作用的影响
①取雌性小鼠在22℃室温条件下,开启热板式镇痛实验仪,将温度定于(55±0.5)℃,预热10min,然后每次投入1只小鼠记录小鼠自投入至出现痛反应(舔后足)的时间,共测2次,每次间隔5min,求平均值(以平均值不超过30s为合格)。
②筛选合格小鼠190只,分18组,筛选药物1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16(0.76、1.16、1.28、1.48、1.00、1.00、1.00、0.88、0.96、1.00、0.79、0.75、0.92、0.88、0.92、0.88g/kg),17组为生理盐水对照组。各组均等容积0.4ml/只灌胃给药,给药后30、45、60、90、120min同前测定痛反应时间2次,求平均值。若小鼠60s仍无痛反应,则停止测试,按60s计算,实验结束后按不同时间所测得之痛阈平均值,计算痛阈提高百分率。结果见表3。
痛阈提高百分率=(用药后平均痛阈值-用药前平均痛阈值)/用药前平均痛阈值×100%
表3对小鼠热板法所致疼痛作用的影响(x±s,n=10)
|
组别 |
剂量(g/kg |
药前(s) |
痛阈提高百分率(%) |
|
30min |
45min |
60min |
90min |
120min |
| 12345678910 | 0.761.161.281.481.001.001.000.880.961.00 |
15.48±3.8912.89±2.3514.52±3.7416.47±0.1817.72±7.031.71±3.1714.35±2.5015.05±3.5315.62±4.2616.54± |
-23.58±21.69-14.51±41.3-34.15±26.13-32.66±20.65-49.09±12.06-49.09±30.63-1.38±46.2-24.07±33.6710.83±33.68-1.53± |
-7.36±37.334.58±43.390.17±38.41-11.94±44.47-41.89±22.96-41.89±35.08-16.41±41.96-24.63±36.0217.24±44.5-18.02± |
-13.82±32.820.93±27.28-26.23±30.02-2.05±72.78-31.29±45.47-31.29±36.4515.63±93.53-11.61±51.6129.09±68.54-18.02± |
1.58±33.14113.30±156.49-32.23±23.014.71±74.47-5.67±42.59-5.67±37.5846.05±69.8511.22±47.0339.51±62.793.64± |
1.39±61.08103.93±95.26*-5.97±54.658.13±83.01-0.97±50.75-0.97±63.4434.39±59.172.13±105.3767.74±79.8316.19± |
| 111213141516生理盐水(NS) | 0.790.750.920.880.920.880.4ml/只 |
3.4215.67±5.4816.94±3.1317.33±2.6918.51±4.9016.56±2.0216.35±4.0917.10±5.14 |
34.83-10.3±29.013.82±32.33-6.12±34.26-3.43±37.06-16.69±22.14-4.68±38.7511.32±48.72 |
25.4317.67±45.062.03±35.98-4.37±27.05-22.17±17.28-13.94±26.19-9.34±48.781.56±54.98 |
28.6215.57±32.792.76±40.973.51±47.33-14.5±17.44-12.91±42.89-1.34±71.9-3.47±30.16 |
33.1529.52±43.7359.37±75.394.26±36.281.73±22.527.08±48.2430.75±38.6960.42±123.8 |
45.2355.84±66.5979.52±54.96*26.22±48.265.46±52.4118.43±52.4253.32±92.7817.67±60.2 |
注:与生理盐水对照组比*P<0.05,**P<0.01
由以上热板实验结果可知,筛选药物2、12组镇痛作用均于给药后120min出现,小鼠疼痛反应时间及痛阈提高百分率与生理盐水组比有显著性差异(P<0.05)。
3.3.2.2药物抗炎作用试验
(1)对尿酸钠(MSU)诱发大鼠足肿胀的影响
微晶型尿酸钠(MSU)的制备:取8g尿酸置于1600ml沸水中,调pH至7.4,再加热至95℃,室温冷却并轻轻搅拌,过滤,得到微晶尿酸钠,高温(200℃)灭菌。用前以无菌生理盐水配成100mg/ml的混悬液。
取雄性大鼠190只,按体重随机分18组,每组10只,筛选药物1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16(0.57、0.87、0.96、1.11、0.75、0.75、0.75、0.66、0.72、0.75、0.59、0.56、0.69、0.66、0.69、0.66g/kg),17组为生理盐水对照组。各组等容积3ml/只,均为致炎前灌胃给药7天。末次给药1小时后致炎,无菌操作,给大鼠右后足跖皮下注射MSU(100mg/ml)、0.1ml/只,采用大鼠足爪容积测定法测定致炎前和致炎后不同时间(每小时1次,连续5~6次)大鼠足爪容积变化,以致炎前、后足爪容积的差值作为肿胀度,计算各肿胀度及肿胀抑制率,并作t检验。结果见表4。
肿胀率(%)=(致炎后足跖容积-致炎前足跖容积)/致炎前足跖容积×100%
肿胀抑制率(%)=(对照组平均肿胀率-给药组平均肿胀率)/对照组平均肿胀率×100%
表4对MSU诱导大鼠足肿胀的影响(x±s,n=10)
| 组别 |
剂量(g/kg) |
致炎前足趾容积(ml) |
足容积差(ml) |
3h肿胀抑制率(%) |
| 1h | 2h | 3h | 4h | 5h |
| 12345678910111213141516生理盐水(NS) | 0.570.870.961.110.750.750.750.660.720.750.590.560.690.660.690.663ml/只 |
1.14±0.201.12±0.121.12±0.101.08±0.241.10±0.131.01±0.121.05±0.181.10±0.161.20±0.111.12±0.891.34±0.191.14±0.171.03±0.191.15±0.171.07±0.231.12±0.181.21±0.13 |
0.22±0.190.30±0.180.38±0.160.35±0.160.39±0.220.33±0.180.29±0.200.38±0.260.36±0.200.31±0.130.31±0.220.42±0.320.40±0.160.36±0.230.43±0.330.44±0.210.29±0.15 |
0.39±0.210.33±0.240.45±0.150.42±0.110.43±0.170.27±0.230.46±0.180.50±0.320.31±0.150.36±0.220.32±0.360.39±0.290.49±0.200.28±0.150.45±0.290.31±0.170.29±0.12 |
0.37±0.170.20±0.11*0.22±0.230.30±0.190.40±0.210.43±0.250.45±0.260.51±0.350.31±0.160.37±0.110.33±0.230.19±0.13*0.37u±0.210.27±0.190.46±0.220.39±0.150.37±0.18 |
0.39±0.200.34±0.280.43±0.180.49±0.270.43±0.210.38±0.150.36±0.140.45±0.260.36±0.140.45±0.130.29±0.12*0.24±0.18*0.47±0.200.48±0.090.36±0.300.31±0.230.41±0.11 |
0.48±0.240.36±0.210.55±0.150.60±0.250.46±0.240.55±0.190.56±0.220.51±0.400.45±0.220.50±0.150.42±0.180.46±0.220.57±0.210.34±0.260.55±0.230.52±0.270.41±0.19 | 4.2147.342.0318.02-7.32-25.65-26.48-36.8323.762.527.3248.22-6.0230.71-26.87-2.77-- |
注:与生理盐水对照组比*P<0.05,**P<0.01
由以上结果可知,筛选药物2、12组在致炎后3h即出现作用,11组4h出现作用,足肿胀度明显减小,肿胀抑制率也明显升高,与对照组比有非常显著性差异(P<0.05),特别是12组3h时出现作用,作用维持至4h仍较明显(P<0.05),说明筛选药物2、11、12可对抗MSU引起的炎症反应。
(2)对大鼠棉球肉芽肿的影响
取雄性大鼠190只,按体重随机分19组,每组10只,筛选药物1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16(0.57、0.87、0.96、1.11、0.75、0.75、0.75、0.66、0.72、0.75、0.59、0.56、0.69、0.66、0.69、0.66g/kg),17组为生理盐水对照组。各组均等容积灌胃给药3ml/只。乙醚浅麻醉,无菌操作,将两个脱脂棉球分别植入大鼠两侧腋窝皮下,棉球形状应和植入部位一样。
大鼠术前灌胃给药3天,术后再连续给药7天,第8天脱臼处死大鼠,取出棉球,置60℃烤箱烤至恒重,减去棉球原重量,即为肉芽肿重量,肉芽肿重量以g表示,比较各组肉芽肿重量,并计算抑制率,结果见表5。
肿胀率=(致炎后足跖容积-致炎前足跖容积)/致炎前足跖容积×100%
肿胀抑制率=(对照组平均肿胀率-给药组平均肿胀率)/对照组平均肿胀率×100%
| 组别 | 鼠数(只) |
剂量(g/kg) | 肉芽肿重量(g) |
肿胀抑制率(%) |
|
12345678910111213141516生理盐水(NS) |
1010101010101010101010101010101010 |
0.570.870.961.110.750.750.750.660.720.750.590.560.690.660.690.663ml/只 |
0.042±0.0110.045±0.0220.041±0.0150.037±0.0160.036±0.0180.039±0.0150.038±0.0200.038±0.0200.038±0.0110.039±0.0120.035±0.0190.034±0.013*0.044±0.0190.037±0.0110.032±0.010**0.035±0.0160.042±0.019 |
0-7.142.3811.914.297.149.529.529.527.1416.6719.05-4.7611.923.8116.67-- |
注:与生理盐水对照组比*P<0.05,**P<0.01
由以上结果可知,筛选药物12(P<0.05)、15(P<0.01)能明显抑制肉芽肿生长,与阴性对照组比有显著性差异。
(3)对二甲苯所致小鼠耳肿胀试验的影响
取昆明种小白鼠190只,按体重随机分19组,每组10只,筛选药物1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16剂量分别为0.76、1.16、1.28、1.48、1.00、1.00、1.00、0.88、0.96、1.00、0.79、0.75、0.92、0.88、0.92、0.88g/kg;17组为生理盐水对照组。各组均等容积(0.4ml/只)灌胃给药7天,末次给药0.5小时后,将二甲苯涂于小鼠右耳前后两面,50ul/只,2h后将小鼠颈椎脱臼处死,沿耳廓基线剪下两耳,用9mm打孔器分别在同一部位打下圆耳片,称重,计算肿胀抑制率。结果见表6。
肿胀度=(右耳片重量-左耳片重量)/左耳片重量×100%
肿胀率=(对照组平均肿胀度-给药组平均肿胀度)/对照组平均肿胀度×100%
肿胀抑制率=(对照组平均肿胀率-给药组平均肿胀率)/对照组平均肿胀率×100%
表6对二甲苯致小鼠耳肿胀度的影响(x±s,n=10)
| 组别 |
鼠数(只) |
剂量(g/kg) |
肿胀度(g) |
肿胀率(%) |
肿胀抑制率(%) |
| 12345678910111213141516生理盐水 | 1010101010101010101010101010101010 | 0.761.161.281.481.001.001.000.880.961.000.790.750.920.880.920.880.4ml/只 |
0.014±0.0060.008±0.006*0.017±0.0060.014±0.0050.013±0.0070.012±0.0050.013±0.0060.014±0.0060.011±0.0040.009±0.004*0.012±0.0060.014±0.0060.016±0.0060.011±0.0050.014±0.0040.014±0.0040.015±0.003 | 87.08±44.1256.98±35.23*113.37±44.9694.15±35.6279.63±42.4375.58±33.0186.14±46.0888.21±50.9474.38±34.8660.46±29.36*76.6±36.7889.24±42.09111.99±57.5376.27±38.3990.63±33.5181.93±28.3291.04±27.61 | 4.3537.41-24.53-3.4212.5316.985.383.1118.333.5915.861.98-23.0116.220.4510.01-- |
注:与生理盐水对照组比*P<0.05,**P<0.01
由以上结果可知,筛选药物2、10组能明显抑制二甲苯所致小鼠耳肿胀、提高肿胀抑制率,与生理盐水组比有显著性差异(P<0.05,P<0.01)。
4药效学试验结果分析
根据以上5种指标的药效学试验数据,采用综合评价法对正交试验各组结果进行统计分析。各指标的权重系数均取0.2,总分为100分,所得5种指标得分相加,得各组综合评分,结果见表7。计算公式如下:
(1)镇痛指标:
扭体镇痛百分率评分=(20/最大镇痛百分率)×各组镇痛百分率
2h痛阈提高百分率评分=(20/最大镇痛提高百分率)×各组痛阈提高百分率
(2)抗炎指标(3种指标计算方法相同,其中MSU模型取3h结果):
肿胀抑制率评分=(20/最大肿胀抑制率)×各组肿胀抑制率
表7提取正交试验结果
从极差R的大小可知,各因素对药效结果的影响程度依次为A>C>E>B>D。根据K值的大小进行直观分析,确定最佳工艺为A3B4C2D1E2,即药材粉碎成通过φ0.6cm筛网的粗粒(D1),与超临界提取后的药渣混合后,加7倍量(C2)60%乙醇(A3)提取2次(E2),每次2小时(B4)。
5本发明的产品与原追风透骨丸、原追风透骨片的药效学比较
为了考察优选工艺的合理性与重复性,根据优选工艺制备了三批产品(药物E),分别进行了上述5种指标的药效学试验,并与原追风透骨丸及追风透骨片进行了药效学比较,结果见表8。
表8本发明的产品与原追风透骨丸、原追风透骨片的药效学比较结果
| 样品 |
扭体镇痛百分率(%) |
热板2h痛阈提高百分率(%) | MSU3h肿胀抑制率(%) |
肉芽肿胀抑制率(%) |
二甲苯耳肿胀抑制率(%) |
|
123平均值原追风透骨丸原追风透骨片 |
74.13**66.43*63.99*68.1838.1160.42* |
88.52*77.36*82.60*82.8361.4958.31 |
50.00*57.32**52.44**53.2529.27*40.80* |
54.89**38.46*21.7038.3515.0010.78 |
15.90*5.21*12.46*11.193.757.34 |
注:与生理盐水对照组比较*P<0.05;**P<0.01
将三批产品药效结果的平均值与正交试验各组试验比较可知,扭体镇痛百分率、MSU 3h肿胀抑制率、肉芽肿胀抑制率均优于正交试验各组结果,热板2h痛阈提高百分率在各组结果中列第二,二甲苯耳肿胀抑制率处于中上水平。与原追风透骨丸和原追风透骨片组比较,本发明产品的各项指标均优于该二组结果。
结果表明:
1、本发明的制备方法合理,产品的镇痛、抗炎作用优于原工艺制备的追风透骨丸。
2、采用乙醇溶液提取优于水提,治疗效果优于追风透骨片;
3、采用60%乙醇溶液提取效果最佳。
本发明的另一个目的是提供该产品的质量控制方法:
采用高效液相色谱法测定,1g药物E干品中含赤芍以芍药苷(C23H23O11)计不得少于1.0mg。其色谱条件:用十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂,体积浓度为15~30%的甲醇水溶液为流动相,检测波长为230nm,理论板数按芍药苷峰计算应不低于1500;
对照品溶液的制备:精密称定芍药苷对照品,加乙醇或甲醇溶液制成每1ml含0.06mg的溶液,即得;
供试品溶液的制备:取本品1g,精密称定,置具塞锥形瓶中,精密加入乙醇或甲醇溶液50ml,密塞,称定重量,超声处理,放冷,再称定重量,用乙醇或甲醇溶液补足减失的重量,摇匀,滤过,取续滤液,即得;
测定法:分别精密吸取对照品溶液与供试品溶液各20μl,注入液相色谱仪,测定,即得。
本发明的有益效果:
1、本发明的制备方法合理,产品的镇痛、抗炎作用优于原工艺制备的追风透骨丸和追风透骨片。
2、产品中无朱砂和细辛的挥发油成分,避免了汞蓄积中毒的危险及细辛挥发油的毒性,保证了临床用药的安全性,因此临床安全性高于原追风透骨丸及原追风透骨片。
3、由于在制剂过程中不加蜜糖,糖尿病人服用不会导致血糖增高,因此较原追风透骨丸扩大了适用人群。
4、原追风透骨丸服用剂量为每次6g、每日2次,按新工艺制备的胶囊、片剂、浓缩丸的每次服用剂量为1.2~2g,每日服用次数不变,因此服用量可减至原制剂的1/3~1/5,患者的治疗的依从性大为提高。
5、本发明中增加了芍药苷的含量测定,芍药苷为本品处方中赤芍的主要有效成分,具有解热、镇痛、抗炎、抗溃疡等药理作用,与本品的疗效密切相关。因此增加该成分的含量测定有利于控制本品的质量,从而较原追风透骨丸和原追风透骨片提高了产品的质量标准。
具体实施方式
实施例1:(见图1)
称取白芷2832g、麻黄2832g、川芎2832g、当归1416g、羌活2832g、防风1416g、桂枝1416g、甘松1416g,采用CO2超临界萃取,萃取条件为:萃取压力为24MPa,萃取温度为40℃,解析压力为5MPa,解析温度为30℃,萃取时间为3小时。得692g脂溶性提取物A及药渣B 15.87kg备用;称取制川乌2832g、制草乌2832g、制香附2832g、甘草2832g、炒白术1416g、秦艽1416g、地龙2832g、茯苓5660g、天麻1416、细辛2832g、制天南星2832g,与超临界萃取所余药渣B混合,采用60%乙醇溶液提取,乙醇用量为药材量的7倍,提取时间为2小时,提取2次,提取液滤过,减压浓缩至稠膏C,相对密度为1.26(50℃);称取制没药568g、制乳香1416g、赤小豆2832g、赤芍2832g粉碎成细粉,与上述稠膏C混合,干燥,粉碎后得干膏粉D,干膏粉D和脂溶性提取物A混匀,得药物E 15.24kg,照高效液相色谱法(中国药典2000年版一部附录VI D)测定芍药苷的含量:
色谱条件:用十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂;21%甲醇水溶液为流动相;检测波长为230nm。理论板数按芍药苷峰计算为2020;
对照品溶液的制备:取经五氧化二磷减压干燥器中干燥36小时的芍药苷对照品,精密称定,加稀乙醇制成每1ml含0.06mg的溶液,即得;
供试品溶液的制备:精密称取本品1.0324g,置具塞锥形瓶中,精密加入稀乙醇50ml,密塞,称定重量,超声处理,放冷,再称定重量,用稀乙醇补足减失的重量,摇匀,滤过,取续滤液,即得;
测定法:分别精密吸取对照品溶液与供试品溶液各20μl,注入液相色谱仪,测定,得药物E的芍药苷平均含量为1.18mg/g。
实施例2:
称取白芷283.2g、麻黄283.2g、川芎283.2g、当归141.6g、羌活283.2g、防风141.6g、桂枝141.6g、甘松141.6g,采用CO2超临界萃取,萃取条件为:萃取压力为30MPa,萃取温度为60℃,解析压力为7MPa,解析温度为50℃,萃取时间为1小时。得63.1g脂溶性提取物A及药渣B 1.54kg备用;称取制川乌283.2g、制草乌283.2g、制香附283.2g、甘草283.2g、炒白术141.6g、秦艽141.6g、地龙283.2g、茯苓566.0g、天麻141.6、细辛283.2g、制天南星283.2g,与超临界萃取所余药渣B混合,采用40%乙醇溶液提取,乙醇用量为药材量的8倍,提取时间为0.5小时,提取3次,提取液滤过,减压浓缩至稠膏C,相对密度为1.26(50℃);称取制没药56.8g、制乳香141.6g、赤小豆283.2g、赤芍283.2g粉碎成细粉,与上述稠膏C混合,干燥,粉碎后得干膏粉D,干膏粉D和脂溶性提取物A混匀,得药物E 1.48kg,照高效液相色谱法(中国药典2000年版一部附录VI D)测定芍药苷的含量:
色谱条件:用十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂;30%甲醇水溶液为流动相;检测波长为230nm。理论板数按芍药苷峰计算为2250;
对照品溶液的制备:取经五氧化二磷减压干燥器中干燥36小时的芍药苷对照品,精密称定,加稀乙醇制成每1ml含0.06mg的溶液,即得;
供试品溶液的制备:精密称取本品1.0235g,置具塞锥形瓶中,精密加入稀乙醇50ml,密塞,称定重量,超声处理,放冷,再称定重量,用稀乙醇补足减失的重量,摇匀,滤过,取续滤液,即得;
测定法:分别精密吸取对照品溶液与供试品溶液各20μl,注入液相色谱仪,测定,得药物E的芍药苷平均含量为1.25mg/g。
实施例3:
称取白芷1416g、麻黄1416g、川芎1416g、当归708g、羌活1416g、防风708g、桂枝708g、甘松708g,采用CO2超临界萃取,萃取条件为:萃取压力为27MPa,萃取温度为50℃,解析压力为6MPa,解析温度为40℃,萃取时间为2小时。得352g脂溶性提取物A及药渣B 7.95kg备用;称取制川乌1416g、制草乌1416g、制香附1416g、甘草1416g、炒白术708g、秦艽708g、地龙1416g、茯苓2830g、天麻708、细辛1416g、制天南星1416g,与超临界萃取所余药渣B混合,采用80%乙醇溶液提取,乙醇用量为药材量的5倍,提取时间为3小时,提取1次,提取液滤过,减压浓缩至稠膏C,相对密度为1.26(50℃);称取制没药284g、制乳香708g、赤小豆1416g、赤芍1416g粉碎成细粉,与上述稠膏C混合,干燥,粉碎后得干膏粉D,干膏粉D和脂溶性提取物A混匀,得药物E 7.50kg,照高效液相色谱法(中国药典2000年版一部附录VI D)测定芍药苷的含量:
色谱条件:用十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂;25%甲醇水溶液为流动相;检测波长为230nm。理论板数按芍药苷峰计算为2340;
对照品溶液的制备:取经五氧化二磷减压干燥器中干燥36小时的芍药苷对照品,精密称定,加稀乙醇制成每1ml含0.06mg的溶液,即得;
供试品溶液的制备:精密称取本品1.0013g,置具塞锥形瓶中,精密加入稀乙醇50ml,密塞,称定重量,超声处理,放冷,再称定重量,用稀乙醇补足减失的重量,摇匀,滤过,取续滤液,即得;
测定法:分别精密吸取对照品溶液与供试品溶液各20μl,注入液相色谱仪,测定,得药物E的芍药苷平均含量为1.12mg/g。
实施例4:
将实施例1所述的药物E,经以下工艺制成不同制剂:
(1)胶囊剂:取3.81kg药物E,加入微粉硅胶390g,混匀,制粒,灌装胶囊,制成10000粒,每粒装0.42g,测得芍药苷为0.41mg/粒。
(2)浓缩丸(塑制法):取3.81kg药物E,加入适量微粉硅胶300g、羧甲基淀粉钠100g,混匀,采用塑制法,以乙醇溶液制软材,压丸条,干燥,包衣,制成45000丸,每丸重0.1g,测得芍药苷含量为1.03mg/g。
(3)浓缩丸(泛制法):取3.81kg药物E,加入适量微粉硅胶300g、羧甲基淀粉钠100g,混匀,以水或乙醇溶液泛丸,干燥,包衣,制成45000丸,每丸重0.1g,测得芍药苷含量为1.06mg/g。
(4)取3.81kg药物E,加入适量微粉硅胶400g、羧甲基淀粉钠150g,混匀,制粒,压片,包衣,制成10000片。每片重0.45g,测得芍药苷含量为0.43mg/粒。