BR102013031734B1 - método para controlar athetis lepigone - Google Patents

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Abstract

MÉTODO PARA O CONTROLE DE PRAGA. A presente invenção refere-se a um método para controlar Athetis lepigone, que compreende contatar Athetis lepigone com proteína Cry1F. A presente invenção obtém o controle de Athetis lepigone permitindo-se que as plantas produzam proteína Cry1F in vivo, o que é letal para Athetis lepigone. Em comparação com métodos de controle agrícola e químico correntes, o método da presente invenção pode controlar Athetis lepigone por todo o período de crescimento das plantas e fornece as plantas com uma proteção total. Adicionalmente, o método é estável, completo, simples, conveniente, econômico, isento de poluição e isento de resíduo.

Description

Campo da Invenção
[001] A presente invenção refere-se a um método para o controle de praga, especificamente um método para impedir que Athetis lepigone cause danos às plantas pela proteína Cry1F expressada nesta.
Antecedentes
[002] Athetis lepigone pertence a Lepidoptera, Noctuidae. Como uma praga onívora, ela principalmente alimenta-se de milho. Ela principalmente habita no distrito agrícola do milho no verão da região de Huang-Huai-Hai na China, e também foi encontrada tal como no Japão, Coreia, Rússia e Europa. Ela causa danos principalmente em raízes aéreas do milho no soro arável, come raízes escoras e caules do milho, deforma ou ainda mata as plantas do milho. O campo de milho danificado apresentará áreas vazias grandes ou ainda tornam-se estéreis se sob ataques severos.
[003] O milho é uma cultura agrícola principal na China. Em 9 de Julho de 2011, a "News Broadcast" de CCTV primeiramente relatou explosões de Athetis lepigone na China. A partir do outono de 2011 até 31 de maio de 2012, várias análises de campo conduzidas pelo Pest Prevention and Control Laboratory of National Maize Industry descobriram que Athetis lepigone no ano de 2012 compreendeu um número grande de populações no inverno de tamanho grande com uma densidade alta de larvas, indicando que a explosão de Athetis lepigone é provável de explodir subitamente novamente na região de Huang- Huai-Hai. Existem dois métodos comumente usados para controlar Athetis lepigone, os métodos de controle agrícola e de controle químico.
[004] O método de controle agrícola é um manejo integrado e coordenado de múltiplos fatores para o ecossistema inteiro da terra cultivável, que regula safras, pragas e fatores ambientais e estabelece um ecossistema de terra cultivável conducente para o crescimento da safra mas desfavorável para Athetis lepigone. Por exemplo, as remoções imediatas de palhas, ervas daninhas e outras coberturas das raízes de mudas de milho para um espaço maior entre linhagens de milho longe das plantas de modo a expor o solo são comumente usadas, de modo a garantir que a próxima etapa de pulverização de pesticida possa ter um contato direto a Athetis lepigone. Entretanto, visto que o controle agrícola deve obedecer aos requisitos para as condições da safra e aumentar a produção, tal método tem aplicações limitadas e não pode ser usado como uma medida de emergência quando Athetis lepigone explode.
[005] O método de controle químico, também conhecido como controle com pesticida, é para matar pragas usando-se pesticidas. Como um meio importante para o manejo abrangente do controle, este é um método rápido, conveniente, simples e altamente eficaz de custo. Particularmente, o mesmo pode ser usado como uma prática de emergência essencial para reduzir a densidade de Athetis lepigone antes que os danos tenham feito. Correntemente, as medidas principais do controle químico incluem isca venenosa, solo envenenado, assim como banho e pulverização de pesticida. Entretanto, o controle químico tem suas limitações: seu uso inadequado pode causar consequências devastadoras, tais como envenenamento das safras, resistência à praga, predadores mortais e poluição do ambiente de modo a destruir ecossistemas de terra cultivável; resíduos de pesticida apresentam uma ameaça para a segurança de seres humanos e animais de criação no local; e como Athetis lepigone prefere um micro-habitat úmido e escuro, ela geralmente esconde-se sob coberturas tais como palhas de trigo ou abaixo do solo arável, tornando o contato direto entre produtos químicos e Athetis lepigone difícil, o que torna o controle químico ineficaz.
[006] Para superar as limitações dos métodos de controle agrícola e de controle químico em aplicações, os pesquisadores descobriram que inserir genes que codificam proteínas pesticidas no genoma da planta pode produzir plantas resistentes à praga. A proteína Cry1F pesticida, entre um grupo grande de proteínas pesticidas, é uma proteína de cristal paraesporal insolúvel produzida por Bacillus thuringiensis.
[007] A proteína Cry1F, se ingerida por pragas, é dissolvida no ambiente alcalino do intestino intermediário das pragas e libera protoxina, um precursor para uma toxina. Além disso, a protease alcalina digere a protoxina em seu término N e C e produz um fragmento ativo, que subsequentemente se ligaria a um receptor de membrana de células epiteliais do intestino intermediário das pragas e inseriria na membrana intestinal, resultando na perfuração da membrana celular, desequilibrando a homeostase do pH e pressão osmótica através da membrana celular, interrompendo a digestão da praga, e eventualmente levando à morte das pragas.
[008] Foi confirmado que plantas transgênicas com Cry1F podem resistir às pragas de Lepidoptera tais como Agrotis ypsilon Rottemberg. Entretanto, até aqui não existe nenhum relato sobre o controle de Athetis lepigone gerando-se plantas transgênicas que produzem proteína Cry1F.
Sumário da Invenção
[009] O propósito da presente invenção é fornecer um método de controle de praga pela primeira vez usando uma planta transgênica que expressa proteína Cry1F para controlar o dano causado por Athetis lepigone. O dito método eficazmente supera limitações técnicas dos métodos de controle agrícola, controle químico e controle biológico.
[0010] Para obter o propósito como mencionado acima, a presente invenção fornece um método para controlar Athetis lepigone, o dito método compreende contatar Athetis lepigone com proteína Cry1F.
[0011] Adicionalmente, a presente invenção fornece uma planta transgênica que expressa a proteína Cry1F e seu material reprodutivo, tal como sementes, mudas e semelhantes.
[0012] Preferivelmente, a proteína Cry1F é proteína Cry1Fa.
[0013] Além disso, a proteína Cry1Fa está presente em uma célula que expressa a dita proteína de uma planta, e ela é contatada com Athetis lepigone por ingestão da célula.
[0014] Além disso, a proteína Cry1Fa está presente em uma planta transgênica que expressa a proteína Cry1Fa, e Athetis lepigone contata com a proteína Cry1Fa por ingestão de um tecido da planta transgênica. Como uma consequência, o crescimento de Athetis lepigone é inibido, levando à morte de Athetis lepigone eventualmente, e depois o dano de Athetis lepigone à planta é controlado.
[0015] A planta transgênica pode estar em qualquer período de crescimento.
[0016] O tecido da planta transgênica pode ser raízes, folhas, caules, corutos, espigas, anteras ou filetes.
[0017] O controle do dano de Athetis lepigone à planta não depende da localização do plantio.
[0018] O controle do dano de Athetis lepigone à planta não depende do tempo de plantio.
[0019] A planta é milho.
[0020] Antes da etapa de contato deve-se plantar uma muda transgênica que contém um polinucleotídeo que codifica a proteína Cry1Fa.
[0021] Preferivelmente, a sequência de aminoácido da proteína CrylFa compreende uma sequência de aminoácido da SEQ ID N°: 1 ou SEQ ID N°: 2. A sequência de nucleotídeo que codifica a proteína CrylFa compreende uma sequência de nucleotídeo da SEQ ID N°: 3 ou SEQ ID N°: 4.
[0022] Com base nas soluções técnicas mencionadas acima, a planta pode expressar ainda pelo menos um dos nucleotídeos secundários, que são diferentes da proteína Cry1Fa.
[0023] Além disso, o nucleotídeo secundário codifica uma proteína pesticida semelhante a Cry, uma proteína pesticida semelhante a Vip, um inibidor de protease, lectina, α-amilase ou peroxidase.
[0024] Preferivelmente, o nucleotídeo secundário codifica proteína Cry1Ab, proteína Cry1Ac, proteína Cry1Ba ou proteína Vip3A.
[0025] Além disso, o nucleotídeo secundário compreende uma sequência de nucleotídeo da SEQ ID N°: 5 ou SEQ ID N°: 6.
[0026] Opcionalmente, o nucleotídeo secundário é dsRNA, que inibe um gene importante de uma praga-alvo.
[0027] Na presente invenção, a expressão da proteína Cry1F em uma planta transgênica pode ser acompanhada pela expressão de uma ou mais proteínas pesticidas semelhantes a Cry e/ou proteínas pesticidas semelhantes a Vip. Tal coexpressão de mais do que uma toxina pesticida na mesma planta transgênica pode ser obtida por engenharia genética para preparar a planta contendo e expressando genes de interesse. Além disso, uma planta (o precursor primário) expressa proteína Cry1F por engenharia genética, enquanto uma outra planta (o precursor secundário) expressa uma proteína pesticida semelhante a Cry e/ou uma proteína pesticida semelhante a Vip por engenharia genética. Cruzando o precursor primário com o precursor secundário obtém plantas de progênie que expressam todos os genes introduzidos no precursor primário e no precursor secundário.
[0028] Interferência de RNA (RNAi) é referida como um fenômeno de degradação altamente específica e eficiente de mRNA homólogo induzido por um RNA de filamento duplo (dsRNA), que é altamente conservado durante a evolução. Portanto, a presente invenção pode usar RNAi para especificamente eliminar ou encerrar a expressão de genes de pragas alvos.
[0029] Embora tais Athetis lepigone e Agrotis ypsilon Rottemberg pertençam à ordem Lepidoptera da família Noctuidae, e elas tenham alvos similares e morfologia quase igual, elas são claramente duas espécies distintas na biologia. Athetis lepigone e Agrotis ypsilon Rottemberg têm pelo menos as diferenças seguintes: 1. Hábitos de alimentação diferentes. Além de dano severo ao milho de verão, Athetis lepigone também apresenta uma ameaça sobre amendoim e soja. Ao passo que Agrotis ypsilon Rottermberg, como uma praga polífaga, não apenas causa dano no milho, sorgo e painço, mas também causa dano sério a uma faixa ampla de mudas incluindo lariço, pinheiro, cinzas chinesas e noz da Manchúria no nordeste, pinheiro de Masson, abeto, amoreira e chá no sul, assim como pinheiro vermelho chinês, azambujeiro e outras árvores frutíferas no noroeste. 2. Habitações geográficas diferentes. Correntemente Athetis lepigone foi principalmente encontrada no distrito do milho de verão de Huang- Huai-Hai incluindo seis províncias de Hebei, Shandong, Henan, Shanxi, Jiangsu e Anhui, um total de 47 metrópoles e 297 cidades. Ao passo que Agrotis ypsilon Rottermberg é principalmente encontrada em lugares com clima úmido e chuva abundante na China, tal como o Changjiang River Valley, costa sudeste, e áreas úmidas orientais e meridionais do Nordeste da China. 3. Hábitos de infestação diferentes. Athetis lepigone causa um problema sério em alguns dos distritos de milho de verão de Hebei, particularmente em campos interplantados com trigo. Suas larvas escondem-se sob a palha de trigo comprimida adjacente de mudas de milho ou cavam em 2 a 5 cm do soro arável para danificar mudas de milho. Existem normalmente 1 a 2 e até 10 a 20 larvas por muda individual. Quando mudas de milho estão no estágio foliar 3 a foliar 5, as larvas alimentam-se principalmente de sua base do caule e deixa para trás furos redondos ou ovais de 3 a 4 mm em tamanho, resultando na interrupção do transporte de nutrição às folhas e eventualmente na murchidão e morte das folhas interiores acima do solo. Quando do alvejamento de mudas de milho de estágio foliar 8 ao estágio foliar 10, as larvas principalmente alimentam-se de raízes, incluindo raízes aéreas e raízes principais, resultando em acamamento ou ainda morte das plantas. As plantas danificadas somam 1% a 5% geralmente e atingem até 15% a 20% em canteiros mais seriamente danificados. Larvas de Agrotis ypsilon Rottermberg em torno dos ínstares 1 a 2 podem aglomerar-se nas folhas de topo de mudas dia e noite e alimentam-se delas, mas dispersarão depois do ínstar 3. As larvas são ágeis e têm um hábito de fingir a morte. Elas são extremamente sensíveis à luz, e aninharão por si só quando perturbadas. Durante o dia elas escondem entre as camadas do soro arável úmido e seco, ao passo que elas podem escavar do solo à noite para morder as mudas e arrastar as plantas prejudicadas nos furos subterrâneos, ou morder as sementes desenterradas. Sobre o talo das mudas tornam-se mais duras, elas se alimentarão de folhas frescas e pontos em crescimento. Entretanto, quando carecem de alimento ou encontrando os sítios de inverno seguintes, a migração ocorre a elas. 4. Características morfológicas diferentes 1) Morfologia diferente dos ovos: ovos de Athetis lepigone estão na forma de pãozinho cozido a vapor com um sulco longitudinal. Ovos recentemente postos são amarelo-esverdeados e mudam para cor cáqui em estágios mais tardios. Ovos de Agrotis ypsilon Rottermberg também estão na forma de pãozinho cozido a vapor mas com carina cruzada. Os ovos recentemente postos são brancos cremosos e gradualmente tornam-se amarelos, e uma mancha preta emergiria em um topo dos ovos antes da incubação. 2) Morfologia diferente das larvas: larvas maduras de Athetis lepigone são cerca de 20 mm de comprimento com corpo amarelo claro e cabeça marrom. Larvas recentemente incubadas são de 14 a 18 mm em comprimento e amarelo-cinza ou marrom escuro em cor. As características notáveis destas são uma mancha marrom escura em forma de triângulo invertido sobre somitos individuais e duas linhas dorsais marrons do abdome dorsal ao segmento torácico. Ao contrário, as larvas de Agrotis ypsilon Rottermberg estão na forma de cilindro, e as larvas maduras destas são de 37 a 50 mm de comprimento e de cabeça marrom com listras reticuladas marrons escuras irregulares. Elas têm corpo cinza-amarronzado ou marrom-acinzentado e superfície áspera pontilhadas com partículas classificadas diferentes. Sua linha dorsal, linha subdorsal e linha espiracular são todas pretas-marrons, o protórax é marrom-acinzentado, o pigídio é marrom-amarelado com duas faixas verticais marrons escuras distintas, e os baenopoda e pseudópodos são marrom-amarelados. 3) Morfologia diferente das pupas: as pupas de Athetis lepigone são cerca de 10 mm em comprimento, tendo um cor do corpo castanho- amarelada no estágio inicial depois gradualmente mudando para marrom, e larvas maduras entram em estado de pupa ocultamente no casulo. Ao contrário, pupas de Agrotis ypsilon Rottermberg são de 18 a 24 mm em comprimento e castanho-avermelhado claro em cor. A parte bucal é alinhada com a extremidade dos embriões alados, ambos atingindo a extremidade do quarto segmento abdominal. O centro da parte dianteira de 4 a 7 segmentos abdominais é marrom escuro com manchas grossas, e tem manchas bilaterais como estanho estendidas ao espiráculo. A parte anterior de 5 a 7 segmentos abdominais também tem manchas como estanho. A extremidade do abdome tem um par de suportes de topo curtos. 4) Morfologia diferente do imago: Athetis lepigone adulto é de 10 a 12 mm de comprimento e 20 mm com envergadura. A fêmea é levemente maior do que o macho. Sua cabeça, tórax e abdome são cinza- amarronzados. Suas asas dianteiras são também cinza-amarronzadas mas com marcas mais escuras, linhas divisórias interiores e exteriores marrom-acinzentadas, marcas anulares de uma mancha preta e padrões reniformes pequenos. Pontos pretos estão presentes na borda da concavidade externa com uma mancha branca. A linha divisória exterior é ondulada; a borda das asas tem uma mancha preta. Suas asas traseiras são brancas e levemente marrons, e gradualmente tornam-se marrom-acinzentadas na borda. Seu abdome é cinza- amarronzado. As valvas da genitália do macho é semiaberta ou toda aberta, a margem dorsal é côncava com um úncus protuberante no centro, e o edeago tem dentro agulhas pontudas. Ao contrário, Agrotis ypsilon Rottermberg adulto é de 17 a 23 mm em comprimento, 40 a 54 mm com envergadura. Sua cabeça e a parte posterior do tórax são marrom-acinzentados, e os pés são marrons. A tíbia da pata dianteira e borda do tarso são cinza-amarronzados, e o término de cada segmento das patas medianas e meta-patas tem faixas anulares cinza- amarronzadas. Suas asas dianteiras marrons têm áreas anteriores pretas-marrons, margens externas marrom-acinzentadas, linhas de base marrons claras e linhas transversais internas onduladas pretas de linha dupla. Existe um ponto cinza redondo dentro das faixas anulares pretas. A forma anular reniforme é preta e tem borda preta. O centro do exterior da forma anular reniforme tem forma anular preta cuneiforme, que atinge as linhas transversais externas. A linha transversal mediana é da forma ondulada marrom-acinzentada. As linhas transversais externas onduladas de linha dupla são marrons. A linha divisória subexterna é da forma de dente de serra irregular e cinza, o centro da margem interna da qual tem três dentes pontudos. Existem pontos pretos pequenos em cada nervura entre a linha divisória subexterna e a linha transversal externa. A linha divisória externa é preta. A cor entre a linha transversal externa e a linha divisória subexterna é marrom claro. A cor além da linha divisória subexterna é preta-marrom. As asas traseiras são brancas. A nervura longitudinal e a linha divisória são marrons. A parte posterior do abdome é cinza. 5. Hábito de crescimento e padrão de erupção diferentes. Larvas de Athetis lepigone têm 6 ínstares durando cerca de 18 dias e elas têm uma resistência forte à tensão. A erupção dos adultos tem dois picos distintos. O primeiro ocorre antes do começo de Julho enquanto o segundo é dos meados de Julho a meados de Agosto. Os adultos têm uma capacidade reprodutiva forte: cada fêmea tem uma produção de 300 a 500 ovos em média e o período de postura dos ovos dura 3 a 7 dias, enquanto a taxa de incubação pode atingir até 100%. Eles causam mais dano no plantio rotativo do campo de milho depois do plantio contínuo do algodão, coberto com farelo de trigo do que sem farelo de trigo, semeando de forma tardia do que semeando precocemente, e tendo umidade de campo alta do que tendo umidade de campo baixa. Athetis lepigone se favorece do ambiente escuro e úmido e frequentemente esconde-se sob a palha ou solo, causando uma grande inconveniência para a pulverização de pesticidas. Ao contrário, Agrotis ypsilon Rottermberg tem 3 a 4 gerações em um ano. Larvas maduras ou pupas passam o inverno no solo e imagos começam a aparecer em Março. Geralmente, dois picos de traça ocorrerão: um no final de Março e o outro em meados de Abril. Adultos são inativos durante o dia e tornam-se ativos ao anoitecer até a meia-noite. Eles têm fototaxia e favorecem fermentações azedas, doces, vinosas, e vários tipos de néctares. As larvas passam através de seis ínstares: nos ínstares 1 e 2, larvas se escondem dentro das ervas daninhas ou folhas internas de plantas, alimentam-se por si só dia e noite mas com pouco apetite, e assim causam poucos danos; depois do ínstar 3, elas se escondem sob o soro arável durante o dia e saem para alimento à noite; nos ínstares 5 e 6, as larvas começam a ter um apetite significantemente aumentado e cada indivíduo pode quebrar 4 a 5 mudas em média, até 10 em casos extremos; e desde o ínstar 3, sua resistência pesticida significantemente aumenta. O dano mais severo causado pela primeira geração de larvas ocorre entre o final de Março e os meados de Abril. Gerações ocorrem de Outubro a Abril do ano seguinte e causam danos. O número de gerações em um ano varia geograficamente: 2 a 3 gerações no nordeste, 2 a 3 gerações no norte da Great Wall, 3 gerações na área entre o sul da Great Wall e no norte do Yellow River, 4 gerações na área entre o sul de Yellow River e Yangtze River, 4 a 5 gerações no sul de Yangtze River, e 6 a 7 gerações na área tropical na Ásia do sul. Entretanto, apesar da diferença no número de gerações em um ano, o dano mais severo é sempre causado pelas larvas da primeira geração. Imagos da geração que passa o inverno meridional aparecem em Fevereiro. Entretanto, o pico de eclosão normalmente ocorre do final de Março aos meados de Abril na maioria do país exceto Ningxia e Inner Mongolia, em que ele ocorre no final de Abril. Os Imagos de Agrotis ypsilon Rottermberg são mais prováveis a iniciar a eclosão de 15:00 a 22:00. Eles escondem sob os fragmentos e quebram durante o dia e tornam-se ativos depois do anoitecer, voo e procura de alimento. Depois de 3 a 4 dias, eles começam a acasalar e por ovos. Os ovos são principalmente postos sobre as ervas daninhas e mudas de densidade alta, curtas e algumas vezes em folhas mortas e fendas. A maioria dos ovos estão perto do solo. Cada fêmea pode por 800 a 1000 ovos, ou ainda até 2000 durante seu período de oviposição de cerca de 5 dias. O estágio larval consiste em 6 ínstares, e alguns indivíduos podem atingir 7 a 8 ínstares. O estágio larval varia em locais diferentes, mas normalmente dura 30 a 40 dias para a primeira geração. Uma vezes que completamente amadurecidos, eles se desenvolvem em pupas em uma câmara terrestre em torno de 5 cm ocultamente e o estágio pupal é de 9 a 19 dias. Temperatura alta é prejudicial para o desenvolvimento e reprodução de Agrotis ypsilon Rottemberg, assim menos deles aparecem durante o verão. A temperatura de sobrevivência ideal é de 15°C a 25°C. A mortalidade de larvas de Agrotis ypsilon Rottemberg aumenta quando a temperatura do inverno é muito baixa, e diminui em locais onde o terreno é baixo, úmido e têm chuva abundante. Adicionalmente, condições conducentes à oviposição e alimentação larval tal como chuva abundante no outono, umidade alta do solo e erva daninha crescida em excesso podem levar a uma explosão no ano seguinte. Entretanto, chuva excessiva e muita umidade são ruins para o desenvolvimento larval visto que larvas de primeiro ínstar podem afogar muito facilmente em tal ambiente. Regiões tendo 15 a 20% de teor de umidade do solo durante o período de pico de oviposição sofreriam danos mais severos. O solo franco arenoso é mais adaptado do que o solo argiloso e solo arenoso à reprodução de Agrotis ypsilon Rottemberg, devido à sua melhor permeabilidade em água e drenagem rápida.
[0030] Coletivamente, é evidente que Athetis lepigone e Agrotis ypsilon Rottemberg são duas espécies distintas de pragas e não podem cruzar.
[0031] Na presente invenção, o genoma de plantas, tecidos vegetais ou células vegetais refere-se a qualquer material genético nas plantas, tecidos ou células, incluindo núcleo, plastídeo e genoma mitocondrial.
[0032] Na presente invenção, polinucleotídeos e/ou nucleotídeos constituem um "gene" completo que codifica uma proteína ou polipeptídeo em células hospedeiras desejadas. A pessoa habilitada na técnica reconhecerá facilmente que os polinucleotídeos e/ou nucleotídeos podem ser colocados sob o controle de sequências reguladoras de hospedeiros alvos.
[0033] Seria bem conhecido para a pessoa habilitada na técnica que DNA normalmente existe em uma forma conhecida como estrutura de filamento duplo. Neste arranjo, um filamento é complementar com um outro filamento, e vice versa. O filamento complementar é gerado durante a replicação de DNA em plantas, assim a presente invenção inclui o uso dos polinucleotídeos e seus filamentos complementares que são exemplificados na listagem de sequência. "Filamento de codificação" comumente usado na técnica refere-se ao filamento que liga-se ao filamento de antissentido. De modo a expressar proteínas in vivo, um filamento de DNA é tipicamente transcrito em um filamento complementar como mRNA, que é usado como um padrão para traduzir na proteína. De fato, mRNA é transcrito do filamento de "antissentido" de DNA. Filamento de "sentido" ou "codificação" tem uma série de códons (um códon contém três nucleotídeos, que codificam um aminoácido específico), e o filamento pode ser usado como uma fase de leitura aberta (ORF) para transcrever em uma proteína ou peptídeo. A presente invenção também abrange RNA e ácido nucleico peptídico (PNA), que têm funções consideráveis como o DNA exemplificado.
[0034] Na presente invenção, as moléculas de ácido nucleico ou fragmentos destas hibridizam com o gene Cry1Fa da presente invenção sob condições severas. Qualquer método de hibridização ou amplificação de ácido nucleico convencional pode ser usado para identificar a presença do gene Cry1Fa da presente invenção. As moléculas de ácido nucleico ou fragmentos destas em certos casos podem ser especificamente hibridizados com outras moléculas de ácido nucleico. Na presente invenção, se duas moléculas de ácido nucleico podem formar uma estrutura de ácido nucleico de filamento duplo antiparalela, nós podemos dizer que estas duas moléculas de ácido nucleico podem ser especificamente hibridizadas entre si. Se duas moléculas de ácido nucleico exibem complementaridade completa, uma molécula de ácido nucleico é chamada o "complemento" da outra molécula. Na presente invenção, quando cada nucleotídeo de uma molécula de ácido nucleico é complementar ao nucleotídeo correspondente de uma outra molécula de ácido nucleico, estas duas moléculas são chamadas para exibir "complementaridade completa". Se duas moléculas de ácido nucleico podem hibridizar entre si em um estado eficientemente estável, e ligam entre si depois da hibridação sob condições de "severidade baixa" pelo menos convencionais, estas duas moléculas de ácido nucleico são chamadas de "complementaridade mínima". Do mesmo modo, se duas moléculas de ácido nucleico podem hibridizar entre si em um estado eficientemente estável, e ligam-se entre si depois da hibridação sob condições de "severidade alta" convencionais, estas duas moléculas de ácido nucleico são chamadas para ter "complementaridade". Desvio da complementaridade completa é aceitável contanto que tal desvio não impeça completamente que as duas moléculas formem uma estrutura de filamento duplo. De modo a permitir que uma molécula de ácido nucleico possa ser usada como um iniciador ou sonda, sua sequência deve ter complementaridade suficiente de modo que ela possa formar uma estrutura de filamento duplo estável em solventes e concentrações de sal especiais.
[0035] Na presente invenção, uma sequência substancialmente homóloga é uma molécula de ácido nucleico, que, sob condições altamente severas, pode ser especificamente hibridizada com o filamento complementar emparelhado da outra molécula de ácido nucleico. As condições severas adequadas para hibridização de DNA seriam bem conhecidas à pessoa habilitada na técnica, por exemplo, processando com 6,0x cloreto de sódio/citrato de sódio (SSC) em torno de 45°C, e depois lavando com 2,0x SSC a 50°C. Por exemplo, durante a etapa de lavagem a concentração de sal pode ser selecionada de uma condição de severidade baixa de cerca de 2,0x SSC a uma condição altamente severa de cerca de 0,2x SSC a 50°C. Além disso, a temperatura na etapa de lavagem pode ser selecionada de uma condição de severidade baixa da temperatura ambiente em torno de 22°C a uma condição altamente severa de cerca de 65°C. Tanto a temperatura quanto a concentração de sal são mutáveis, ou uma pode permanecer intacta embora uma outra possa ser mudada. Preferivelmente, as condições severas de acordo com a invenção são: hibridização específica com a SEQ ID N°: 3 ou SEQ ID N°: 4 em uma solução de 6x SSC, 0,5% de SDS a 65°C, e depois lavagem de membrana com 2x SSC, 0,1% de SDS e 1x SSC, 0,1% de SDS uma vez cada.
[0036] Portanto, sequências tendo atividade resistente à praga e capaz de hibridizar com a SEQ ID N°: 3 e/ou SEQ ID N°: 4 sob condições severas são abrangidas na presente invenção. Estas sequências são pelo menos de cerca de 40% a 50% homólogas às sequências da presente invenção, cerca de 60%, 65% ou 70% homólogas, ou ainda pelo menos de cerca de 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% ou mais homólogas às sequências da presente invenção.
[0037] Os genes e proteínas descritos na presente invenção incluem não apenas as sequências especificamente exemplificadas, mas também as porções e/fragmentos (incluindo aqueles tendo supressões internas e/ou terminais em comparação com as proteínas de tamanho natural), variantes, mutantes, substitutos (proteínas com aminoácidos substituídos), proteínas quiméricas e de fusão destes tendo a atividade pesticida das proteínas exemplificadas. Os "mutantes" ou "variante" referem-se a sequências de nucleotídeo que codificam a mesma proteína ou proteína equivalente com a atividade pesticida. A "proteína equivalente" refere-se a uma proteína que apresenta a mesma ou substancialmente a mesma atividade biológica de resistência a Athetis lepigone como as proteínas reivindicadas.
[0038] O "fragmento" ou "truncamento" de sequências de DNA ou proteína descritas na presente invenção referem-se a uma parte ou uma forma artificialmente modificada (tais como sequências adequadas para a expressão na planta) das sequências de DNA ou proteína originais (nucleotídeos ou aminoácidos). O comprimento das sequências acima pode ser variável, mas ele deve ser suficiente para assegurar a proteína (codificada) como uma toxina de praga.
[0039] Variantes de gene podem ser facilmente modificadas e construídas por técnicas padrão. Por exemplo, a tecnologia de mutação de ponto é bem conhecida na técnica. Um outro exemplo com base na Patente U.S. No 5605793 descreve um método que o DNA pode ser aleatoriamente fraturado e reagrupado para gerar a diversidade molecular. Endonucleases comerciais podem ser usadas para compor fragmentos de genes de tamanho natural, e exonucleases podem ser usadas de acordo com procedimentos padrão. Por exemplo, enzimas tais como Bal31 ou mutagênese sítio-dirigida podem ser usadas para remover sistemicamente nucleotídeos da extremidade destes genes. Uma variedade de endonucleases de restrição pode ser usada para obter genes que codificam fragmentos ativos. Também, proteases podem ser usadas para obter fragmentos ativos destas toxinas diretamente.
[0040] Na presente invenção, equivalentes de proteína e/ou genes que codificam estes equivalentes de proteína podem ser derivados de isolados de B.t. e/ou bibliotecas de DNA. Existem vários modos para obter as proteínas pesticidas da presente invenção. Por exemplo, anticorpos de proteínas pesticidas divulgadas e reivindicadas pelo presente invenção podem ser usados para identificar e isolar outras proteínas de uma mistura de proteínas. Em particular, as partes mais constantes e mais diferentes de outras proteínas de B.t. podem produzir anticorpos. Por imunoprecipitação, ensaio imunossorvente ligado à enzima (ELISA) ou western blot, estes anticorpos podem ser usados para identificar especificamente equivalentes de proteína com atividades características. Procedimentos padrão na técnica podem ser usados para preparar anticorpos das proteínas, equivalentes ou fragmentos destes divulgados na presente invenção. Também, os genes que codificam estas proteínas podem ser obtidos de microorganismos.
[0041] Devido à redundância de códigos genéticos, uma variedade de sequências de DNA diferentes pode codificar a mesma sequência de aminoácido. A pessoa habilitada na técnica seria capaz de gerar sequências de DNA alternativas para codificar a mesma ou substancialmente a mesma proteína. Estas sequências de DNA diferentes são incluídas dentro do escopo da presente invenção. "Substancialmente as mesmas" sequências incluindo fragmentos com atividade pesticida, referem-se às sequências com substituição, supressão, adição ou inserção de aminoácido mas a atividade pesticida destas não é essencialmente afetada.
[0042] Na presente invenção, as substituições, supressões ou adições em sequências de aminoácido são técnicas convencionais no ramo. Preferivelmente, as alterações de sequências de aminoácido são: uma mudança leve de características, isto é, substituições de aminoácido conservadoras que não significantemente afetam a dobragem e/ou atividade de proteínas; uma supressão curta, usualmente de 1 a 30 aminoácidos; uma extensão amino- ou carboxila- terminal pequena, tal como uma extensão amino-terminal de um resíduo de metionina; um ligador de peptídeo pequeno com um comprimento de cerca de 20 a 25 resíduos por exemplo.
[0043] Exemplos de substituições conservadoras são selecionados dos grupos seguintes de aminoácidos: aminoácidos básicos, tais como arginina, lisina e histidina; aminoácidos ácidos, tais como ácido glutâmico e ácido aspártico; aminoácidos polares, tais como glutamina, asparagina; aminoácidos hidrofóbicos, tais como leucina, isoleucina e valina; aminoácidos aromáticos, tais como fenilalanina, triptofano e tirosinel; e aminoácidos de molécula pequena, tais como glicina, alanina, serina, treonina e metionina. Tipicamente, as substituições de aminoácido sem atividades específicas mutáveis são bem conhecidas na técnica, e elas foram descritas em outra parte, por exemplo, em "Protein" de N. Neurath e R. L. Hill em 1979, publicado por Academic Press, New York. As substituições mais comuns são Ala/Ser, Val/Ile, Asp/Glu, Thu/Ser, Ala/Thr, Ser/Asn, Ala/Val, Ser/Gly, Tyr/Phe, Ala/Pro,Lys/Arg,Asp/Asn,Leu/Ile,Leu/Val,Ala/Glu e Asp/Gly, assim como as substituições opostas destas.
[0044] Seria óbvio para a pessoa habilitada na técnica que, estas substituições podem ocorrer fora das regiões que desempenham papéis importantes sobre as funções moleculares mas ainda produzem um polipeptídeo ativo. De acordo com a presente invenção, os resíduos de aminoácido dos polipeptídeos que são necessários para sua atividade e assim são selecionados não para serem substituídos podem ser identificados pelos métodos conhecidos na técnica, tais como mutagênese sítio-dirigida ou mutagênese de varredura de alanina (referindo-se a Cunningham e Wells, 1989, Science 244: 1081-1085). Esta técnica deve introduzir mutação(ões) a cada resíduo de carga positiva em uma molécula e detectar atividade resistente à praga dos mutantes resultantes, e depois determinar que resíduos de aminoácido são importantes para a atividade da molécula. Sítios de interação de substrato-enzima podem ser identificados pela análise de suas estruturas tridimensionais que podem ser determinadas ainda por análise de ressonância magnética nuclear, cristalografia ou rotulagem por fotoafinidade, etc (referindo-se a de Vos et al., 1992, Science 255: 306-312; Smith et al., 1992, J. Mol. Biol 224: 899-904; Wlodaver et al., 1992, FEBS Letters 309: 59-64).
[0045] Na presente invenção, as proteínas Cry1F incluem, mas não são limitadas a, proteínas Cry1Fa2, Cry1Fa3, Cry1Fb3, Cry1Fb6 ou Cry1Fb7, fragmentos pesticidas ou regiões funcionais que são pelo menos 70% homólogas às sequências de aminoácido das proteínas mencionadas acima, e elas têm a atividade pesticida para Athetis lepigone.
[0046] Portanto, sequências de aminoácido com certa homologia à SEQ ID N°: 1 e/ou 2 são também incluídas na presente invenção. Tipicamente, a homologia/similaridade/identidade destas sequências às sequências da presente invenção é maior do que 60%, preferivelmente maior do que 75%, mais preferivelmente maior do que 80%, ainda mais preferivelmente maior do que 90% e pode ser maior do que 95%. Também, polinucleotídeos e proteínas preferidos da presente invenção podem ser definidos por uma faixa mais particular de identidade e/ou similaridade e/ou homologia, por exemplo, 49%, 50%, 51%, 52%, 53%, 54%, 55%, 56%, 57%, 58%, 59%, 60%, 61%, 62%, 63%, 64%, 65%, 66%, 67%, 68%, 69%, 70%, 71%, 72%, 73%, 74%, 75%, 76%, 77%, 78%, 79% 80%, 81%, 82%, 83%, 84%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98% ou 99% de identidade e/ou similaridade e/ou homologia às sequências exemplificadas da presente invenção.
[0047] As sequências reguladoras descritas na presente invenção incluem, mas não são limitadas a, promotores, peptídeos de transição, terminadores, realçadores, sequências líderes, íntrons e outras sequências reguladoras que podem ser operativamente ligadas à proteína Cry1F.
[0048] Os promotores são aqueles exprimíveis em plantas; os "promotores exprimíveis em plantas" referem-se aos promotores que garantem a expressão de sequências de codificação conectadas a estes em células vegetais. Os promotores exprimíveis em plantas podem ser promotores constitutivos. Exemplos dos promotores que conduzem a expressão constitutiva em plantas incluem, mas não são limitados a, promotor 35S do vírus do mosaico da couve-flor, promotor Ubi, promotor do gene GOS2 do arroz, etc. Alternativamente, os promotores exprimíveis em plantas podem ser específicos de tecido, isto é, a expressão de sequências de codificação conduzida por tais promotores em alguns tecidos vegetais, tais como tecidos verdes, é mais alta do que aquela em outros tecidos, como determinado por testes de RNA de rotina, por exemplo, promotor de PEP carboxilase. Alternativamente, os promotores exprimíveis em plantas podem ser promotores induzíveis por ferimento. Promotores induzíveis por ferimento ou promotores que conduzem padrões de expressão induzidos por ferimento referem-se a qual a expressão de sequências de codificação regulada por tais promotores é significantemente mais alta em plantas que sofrem de ferimento mecânico ou ferimento causado pela mastigação da praga do que em plantas sob condições de crescimento normal. Exemplos dos promotores induzíveis por ferimento incluem, mas não são limitados a, promotores de genes inibidores de protease de batata e tomate (pin I e pin II) e de gene inibidor de protease do milho (MPI).
[0049] Os peptídeos de transição, também conhecidos como sequências de sinal secretórias ou sequências de guia, podem direcionar produtos transgênicos a organelas ou compartimentos celulares específicos. Os peptídeos de transição podem ser heterólogos para as proteínas alvo. Por exemplo, as sequências que codificam o peptídeo de transição de cloroplasto são usados para alvejar cloroplasto, ou sequências que retêm ‘KDEL' são usadas para alvejar o retículo endoplasmático, ou CTPP do gene de lectina de cevada são usados para alvejar vacúolos.
[0050] As sequências líderes incluem, mas não são limitadas a, sequências líderes de vírus de RNA pequeno, tal como sequência líder de EMCV (região que não de codificação 5'-terminal de EMCV (vírus da encefalomiocardite)); sequências líderes de potyvírus, tal como sequência líder de MDMV (vírus do mosaico anão do milho); proteína de ligação de cadeia pesada de imunoglobulina humana (BiP); sequência líder não traduzida de mRNA de capsídeo do vírus do mosaico da alfafa (AMV RNA4); e sequência líder do vírus do mosaico do tabaco (TMV).
[0051] Os realçadores incluem, mas não são limitados a, realçador do vírus do mosaico da couve-flor (CaMV), realçador do vírus do mosaico de escrofulária (FMV), realçador do vírus do anel da eflorescência do cravo (CERV), realçador do vírus do mosaico das nervuras da mandioca (CsVMV), realçador do vírus do mosaico de mirabilis (MMV), realçador do vírus do encrespamento de folha amarela de cestrum (CmYLCV), realçador do vírus do encrespamento de folha do algodão de Multan (CLCuMV), realçador do vírus do mosqueado amarelo de commelina (CoYMV) e realçador do vírus do risco nas folhas cloróticas do amendoim (PCLSV).
[0052] Para aplicações na monocotiledônea, íntrons incluem, mas não são limitados a, íntron hsp70 do milho, íntron de ubiquitina do milho, íntron 1 de Adh, íntron de sacarose sintase ou íntron Act1 do arroz. Para aplicações na dicotiledônea, íntrons incluem, mas não são limitados a, íntron de CAT-1, íntron de pKANNIBAL, íntron de PIV2 e íntron de "super ubiquitina".
[0053] Os terminadores podem ser sequências de sinal adequadas para a poliadenilação e funcionamento em plantas, incluem mas não são limitados a, sequências de sinal de poliadenilação derivadas de gene de nopalina sintase (NOS) de Agrobacterium tumefaciens, do gene inibidor de protease II (pin II), do gene ssRUBISCO E9 da ervilha e do gene de α-tubulina.
[0054] As "conexões eficazes" descritas na presente invenção significam as conexões de sequências de ácido nucleico e as conexões permitem que as sequências forneçam funções desejadas para sequências conectadas. As "conexões eficazes" descritas na presente invenção podem ser a conexão entre promotores e sequências de interesse, e por meio das quais a transcrição das sequências de interesse é controlada e regulada pelos promotores. Quando as sequências de interesse codificam proteínas e a expressão das proteínas é desejada, as "conexões eficazes" significam que os promotores são conectados com as sequências em um tal modo que torna os transcritos resultantes traduzidos com uma eficiência alta. Se as conexões dos promotores e as sequências de codificação resultam em transcritos de fusão e a expressão das proteínas codificada é desejada, tais conexões permitem que o códon de início dos transcritos resultantes seja o códon inicial das sequências de codificação. Alternativamente, se as conexões de promotores e sequências de codificação resultam em traduções de fusão e a expressão das proteínas é desejada, tais conexões permitem que o primeiro códon de início contido nas sequências não traduzidas 5' seja conectado com os promotores, e os produtos de tradução resultados estejam em estrutura em relação às fases de leitura abertas das proteínas desejadas. Sequências de ácido nucleico para "conexões eficazes" incluem, mas não são limitadas a, sequências fornecendo genes com função de expressão, isto é, elementos de expressão de gene, tais como promotores, região não traduzida 5', íntrons, regiões de codificação de proteína, regiões não traduzidas 3', sítios de poliadenilação e/ou terminadores de transcrição; sequências fornecendo transferência e/ou integração de DNA, isto é, sequências de margem de T-DNA, sítios de reconhecimento de recombinase sítio-específica, sítios de reconhecimento de integrase; sequências que fornecem seleção, isto é, marcadores de resistência a antibiótico, genes biossintéticos; sequências fornecendo um marcador de contagem e operações de assistência in vitro ou in vivo, isto é, sequências multiligadoras, sequências de recombinação sítio-específicas; e sequências que fornecem replicação, isto é, origens bacterianas de replicação, sequências autonomamente de replicação e sequências de centrômero.
[0055] O "pesticida" descrito na presente invenção significa que ele é tóxico às pragas da safra, e mais especificamente a Athetis lepigone.
[0056] Na presente invenção, a proteína Cry1F exibe citotoxicidade a Athetis lepigone. As plantas transgênicas, especialmente milho e sorgo, em que seus genomas contêm DNA exógeno compreendendo sequências de nucleotídeo que codificam proteína Cry1F, podem levar à supressão do crescimento e morte eventual de Athetis lepigone por seu contato com a proteína depois da ingestão dos tecidos vegetais. Supressão refere-se a letal ou sub-letal. Entretanto, as plantas devem ser morfologicamente normais e podem ser cultivadas por métodos convencionais para o consumo e/ou geração de produtos. Além disso, as plantas transgênicas podem terminar basicamente o uso de pesticidas químicos ou biológicos que são alvejados em Cry1F para Athetis lepigone.
[0057] O nível de expressão de proteínas de cristal pesticidas (ICP) em tecidos vegetais pode ser determinado por uma variedade de métodos na técnica, por exemplo, quantificação de mRNA que codifica as proteínas pesticidas por iniciadores específicos, ou quantificação direta de proteínas pesticidas.
[0058] Vários testes podem ser aplicados para determinar os efeitos pesticidas de ICP em plantas. O alvo principal desta presente invenção é Athetis lepigone.
[0059] Na presente invenção, a proteína Cry1F pode ter as sequências de aminoácido mostradas como SEQ ID N°: 1 e/ou SEQ ID N°: 2 na listagem de sequência. Além da região de codificação de proteína Cry1F, outros componentes, tais como regiões que codificam uma proteína marcadora de seleção, podem ser contidos.
[0060] Além disso, o cassete de expressão compreendendo a sequência de nucleotídeo que codifica proteína Cry1A pode expressar adicionalmente pelo menos uma ou mais genes que codificam proteínas com resistência a herbicida. Os genes com resistência a herbicida incluem, mas não são limitados a, genes com resistência a glufosinato tais como gene bar e gene pat; genes com resistência a fenmedifam, tal como gene pmph; genes com resistência a glifosato, tal como gene EPSPS; genes com resistência a bromoxinil; genes com resistência a sulfonilurea; genes com resistência ao herbicida dalapon; gentes com resistência a cianamida; ou genes com resistência ao inibidor de glutamina sintetase tais como PPT, desse modo obtendo plantas transgênicas tendo tanto atividade pesticida quanto resistência a herbicida altas.
[0061] Na presente invenção, DNA estrangeiro é introduzido em plantas; por exemplo, genes ou cassetes de expressão ou vetores recombinantes que codificam a proteína Cry1F são introduzidos em células vegetais. Métodos de transformação convencionais incluem, mas não são limitados a, transformação mediada por Agrobacterium, bombardeamento de micro-emissão, captação de DNA direta de protoplastas, eletroporação, ou introdução de DNA mediada por filamento de silício.
[0062] A presente invenção fornece um método para controlar pragas, com as vantagens seguintes: 1. Controle interno. Tecnologias existentes são principalmente através de ações externas, isto é fatores externos para controlar a infestação de Athetis lepigone, tais como controle agrícola e controle químico. Embora a presente invenção seja através da proteína Cry1F produzida em plantas para matar Athetis lepigone e subsequentemente controlar Athetis lepigone, isto é, através de fatores internos de controle. 2. Nenhuma poluição e nenhum resíduo. O controle químico na técnica desempenha um certo papel no controle de Athetis lepigone, mas ele traz poluição, destruição e resíduos às pessoas, animais de criação e ecossistema de terra cultivável. O método para controlar Athetis lepigone da presente invenção pode eliminar as consequências adversas acima. 3. Controle por todo o período de crescimento. Os métodos para controlar Athetis lepigone na técnica são graduais, embora a presente invenção forneça plantas com a proteção por todo seu período de crescimento. Isto é, as plantas transgênicas (com Cry1F) da germinação, crescimento, até a floração, frutificação podem evitar o dano a partir de Athetis lepigone. 4. Controle de plantas individuais integrais. Os métodos para controlar Athetis lepigone na técnica, por exemplo pulverização foliar, são principalmente localizados. Embora a presente invenção forneça uma proteção para as plantas individuais integrais, por exemplo, as raízes, folhas, caules, corutos, espigas, anteras, filetes, etc. das plantas individuais transgênicas (com Cry1F) são resistentes a Athetis lepigone. 5. Efeitos estáveis. Os métodos correntes de pulverização de pesticida requerem pulverização direta à superfície das safras, que é provável causar pulverização heterogênea ou nenhuma pulverização. A presente invenção gera plantas que expressam a proteína Cry1F com nível constante in vivo. Também, as plantas transgênicas (proteína Cry1F) têm um efeito constantemente estável de controle em locais diferentes, tempo diferente e bases genéticas diferentes. 6. Simples, conveniente e econômico. Devido à ocorrência dissimulada particular e dano de Athetis lepigone, seu monitoramento e prevenção é difícil, causando um custo de plantio substancialmente aumentado. Ao contrário, a presente invenção apenas requer plantas transgênicas que expressam proteína Cry1F, assim ela economiza muita mão-de-obra, materiais e recursos financeiros. 7. Efeito completo. Métodos para controlar Athetis lepigone na técnica não são completamente eficientes, e apenas reduzem levemente o dano. Ao contrário, as plantas transgênicas (com Cry1F) na presente invenção podem levar a 100% de morte das larvas recentemente incubadas de Athetis lepigone. As larvas raras podem sobreviver, mas elas são muito pequenas devido ao subdesenvolvimento óbvio ou ainda desenvolvimento com interrupção e dificilmente causam quaisquer danos às plantas de milho.
[0063] A presente invenção será descrita em detalhes através dos desenhos e exemplos seguintes.
Breve Descrição dos Desenhos
[0064] A Figura 1 é um fluxograma para construir vetor de clonagem recombinante DBN01-T compreendendo a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01 no método de controle de praga da presente invenção;
[0065] A Figura 2 é um fluxograma para construir vetor de expressão recombinante DBN100014 compreendendo a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01 no método de controle de praga da presente invenção;
[0066] A Figura 3 mostra danos às folhas das plantas de milho transgênicas com inoculação de Athetis lepigone no método de controle de praga da presente invenção;
[0067] A Figura 4 mostra o desenvolvimento de larvas de Athetis lepigone que são inoculadas às plantas de milho transgênicas no método de controle de praga da presente invenção.
Exemplos
[0068] Os exemplos ilustrando o método para o controle de praga da presente invenção são descritos como segue.
Exemplo 1 Aquisição e síntese de CrylFa gene I. Aquisição das sequências de nucleotídeo de CrylFa
[0069] A sequência de aminoácido (605 aminoácidos) da proteína pesticida Cry1Fa-01 é mostrada como SEQ ID N°: 1 na listagem de sequência; a sequência de nucleotídeo (1818 nucleotídeos) de Cry1Fa- 01 que codifica a dita sequência de aminoácido (605 aminoácidos) da proteína pesticida Cry1Fa-01 é mostrada como SEQ ID N°: 3 na listagem de sequência. A sequência de aminoácido (1148 aminoácidos) da proteína pesticida Cry1Fa-02 é mostrada como SEQ ID N°: 2 na listagem de sequência; a sequência de nucleotídeo (3447 nucleotídeos) de Cry1Fa-02 que codifica a sequência de aminoácido (1148 aminoácidos) da proteína pesticida Cry1Fa-02 é mostrada como SEQ ID N°: 4 na listagem de sequência.
II. Aquisição de sequências de nucleotídeo de Cry1Ab e Vip3A
[0070] A sequência de nucleotídeo (1848 nucleotídeos) de Cry1Ab que codifica a sequência de aminoácido (615 aminoácidos) da proteína pesticida CrylAb é mostrada como SEQ ID N°: 5 na listagem de sequência; a sequência de nucleotídeo (2370 nucleotídeos) de Vip3A que codifica a sequência de aminoácido (789 aminoácidos) da proteína pesticida Vip3A é mostrada como SEQ ID N°: 6 na listagem de sequência.
III. Síntese das sequências de nucleotídeo mencionadas acima
[0071] As sequências de nucleotídeo de Cry1Fa-01 (mostrada como SEQ ID N°: 3 na listagem de sequência), Cry1Fa-02 (mostrada como SEQ ID N°: 4 na listagem de sequência), CrylAb (mostrada como SEQ ID N°: 5 na listagem de sequência) e Vip3A (mostrada como SEQ ID N°: 6 na listagem de sequência) são sintetizadas por Nanjing GenScript Ltd.; a extremidade 5' da sequência de nucleotídeo sintetizada da Cry1Fa-01 (SEQ ID N°: 3) é conectada ao sítio de restrição de AscI, a extremidade 3' da sequência de nucleotídeo sintetizada da Cry1Fa-01 (SEQ ID N°: 3) é conectada ao sítio de restrição de BamHI; a extremidade 5' da sequência de nucleotídeo sintetizada da Cry1Fa-02 (SEQ ID N°: 4) é conectada ao sítio de restrição de AscI, a extremidade 3' da sequência de nucleotídeo sintetizada da Cry1Fa-02 (SEQ ID N°: 4) é conectada ao sítio de restrição de BamHI; a extremidade 5' da sequência de nucleotídeo sintetizada da CrylAb (SEQ ID N°: 5) é conectada ao sítio de restrição de NcoI, a extremidade 3' da sequência de nucleotídeo sintetizada da CrylAb (SEQ ID N°: 5) é conectada ao sítio de restrição de SwaI; a extremidade 5' da sequência de nucleotídeo sintetizada da Vip3A (SEQ ID N°: 6) é conectada ao sítio de restrição de ScaI, a extremidade 3' da sequência de nucleotídeo sintetizada da Vip3A (SEQ ID N°: 6) é conectada ao sítio de restrição de SpeI.
Exemplo 2 Construção de vetores de expressão recombinantes e transformação dos mesmos em Agrobacterium I. Construção dos vetores de clonagem recombinantes compreendendo o gene Cry1F
[0072] Como mostrado na Figura 1, a sequência de nucleotídeo sintetizada de Cry1Fa-01 foi ligada com o vetor de clonagem pGEM-T (Promega, Madison, USA, CAT: A3600) de acordo com o protocolo do fabricante para gerar o vetor de clonagem recombinante DBN01-T. (Nota: Amp representa gene de resistência à Ampicilina; f1 ori representa a origem de replicação do fago f1; LacZ é o códon de início de LacZ; SP6 é o promotor de SP6 RNA polimerase; T7 é o promotor de T7 RNA polimerase; Cry1Fa-01 é a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01 (SEQ ID N°: 3); e MCS é um sítio de clonagem múltipla).
[0073] A próxima etapa foi para transformar o vetor de clonagem recombinante DBN01-T em células competentes T1 de E. coli (Transgen, Beijing, China, CAT: CD501) através de um método de choque térmico. Especificamente, 50 μl de células competentes T1 de E. coli foram misturados com 10 μl de DNA plasmídico (o vetor de clonagem recombinante DBN01-T), incubados em um banho de água a 42°C por 30 segundos e depois em um banho de água a 37°C por uma hora (em um agitador a 100 rpm). A mistura depois cresceu durante a noite em uma placa LB (triptona a 10 g/L, extrato de levedura a 5 g/L, NaCl a 10 g/L, ágar a 15 g/L, o valor do pH foi ajustado para 7,5 com NaOH) com Ampicilina (100 mg/l), do qual a superfície foi revestida com IPTG (isopropil-tio-β-D-galactosideo) e X-gal (5-bromo-4-cloro-3-indolil- β-D-galactosideo). Colônias brancas foram obtidas e cultivadas ainda a 37°C durante a noite em meio LB (triptona a 10 g/L, extrato de levedura a 5 g/L, NaCl a 10 g/L, Ampicilina a 100 mg/L, o valor do pH foi ajustado para 7,5 com NaOH). Os plasmídeos foram extraídos por um método alcalino. Especificamente, as bactérias cultivadas no meio foram centrifugadas a 12000 rpm por 1 min. O sobrenadante foi descartado e as células precipitadas foram recolocadas em suspensão em 100 μl de solução I gelada (25 mM de Tris-HCl, 10 mM de EDTA (ácido etilenodiamino tetraacético), 50 mM de glicose, pH 8,0). A seguir da adição de 150 μl de solução II recentemente preparada (0,2 M de NaOH, 1% de SDS (dodecil sulfato de sódio)), o tubo foi invertido por quatro vezes e colocado em gelo por 3 a 5 min. 150 μl de solução III gelada (4 M de acetato de potássio, 2 M de ácido acético) foram adicionados à mistura, misturados imediatamente e completamente e depois colocados em gelo por 5 a 10 min, seguido por uma centrífuga a 12000 rpm por 5 min a 4°C. O sobrenadante foi adicionado em 2 volumes de etanol anidro, misturado completamente e depois incubado por 5 min na temperatura ambiente. A mistura foi centrifugada a 12000 rpm por 5 min a 4°C e o sobrenadante foi descartado. A pelota foi lavada com etanol a 70% (V/V) e depois seca ao ar, seguido adicionando-se 30 μl de TE (10 mM de Tris-HCl, 1 mM de EDTA, pH 8,0) contendo RNase (20 μg/ml) para dissolver a pelota e digerindo-se o RNA em um banho de água a 37°C por 30 minutos. Os plasmídeos obtidos foram armazenados a - 20°C antes do uso.
[0074] AscI e BamHI foram usados para identificar os plasmídeos extraídos, e clones positivos foram verificados ainda por sequenciamento. Os resultados mostraram que, a sequência de nucleotídeo inserida no vetor de clonagem recombinante DBN01-T foi Cry1Fa-01 mostrada como SEQ ID N°: 3 na listagem de sequência, indicando a inserção apropriada da sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01.
[0075] Como o método acima para a construção do vetor de clonagem recombinante DBN01-T, a sequência de nucleotídeo sintetizada de Cry1Fa-02 foi ligada com o vetor de clonagem pGEM-T para gerar o vetor de clonagem recombinante DBN02-T, em que, Cry1Fa-02 é a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02 (SEQ ID N°: 4). Digestão enzimática e sequenciamento foram usados para verificar a inserção apropriada da sequência de nucleotídeo Cry1Fa-02 no vetor de clonagem recombinante DBN02-T.
[0076] De acordo com o método de construção mencionado acima do vetor de clonagem recombinante DBN01-T, a sequência de nucleotídeo sintética de Cry1Ab foi ligada com o vetor de clonagem pGEM-T para gerar o vetor de clonagem recombinante DBN03-T, em que, CrylAb é a sequência de nucleotídeo de CrylAb (SEQ ID N°: 5). Digestão enzimática e sequenciamento foram usados para verificar a inserção apropriada da sequência de nucleotídeo Cry1Ab no vetor de clonagem recombinante DBN03-T.
[0077] Como o método acima para a construção do vetor de clonagem recombinante DBN01-T, a sequência de nucleotídeo sintetizada de Vip3A foi ligada com o vetor de clonagem pGEM-T para gerar o vetor de clonagem recombinante DBN04-T, em que, Vip3A é a sequência de nucleotídeo de Vip3A (SEQ ID N°: 6). Digestão enzimática e sequenciamento foram usados para verificar a inserção apropriada da sequência de nucleotídeo de Vip3A no vetor de clonagem recombinante DBN04-T.
II. Construção de vetores de expressão recombinantes compreendendo o gene Cry1F
[0078] Métodos para construir vetores por digestão enzimática convencional são bem conhecidos na técnica. Como mostrado na Figura 2, o vetor de clonagem recombinante DBN01-T e o vetor de expressão DBNBC-01 (Estrutura principal do vetor: pCAMBIA2301 (disponível da CAMBIA institution)) foram digeridos respectivamente pelas enzimas de restrição AscI e BamHI; e o fragmento resultante da sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01 depois foi inserido no vetor de expressão DBNBC-01 digerido entre os sítios AscI e BamHI para gerar o vetor de expressão recombinante DBN100014. (Nota: Kan representa o gene de Canamicina; RB representa margem direita; Ubi representa o promotor do gene de ubiquitina do milho (SEQ ID N°: 7); Cry1Fa-01 representa a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01 (SEQ ID N°: 3); Nos representa o terminador do gene de nopalina sintase (SEQ ID N°: 8); PMI representa o gene de fosfomanose isomerase (SEQ ID N°: 9); e LB representa a margem esquerda).
[0079] O vetor de expressão recombinante DBN100014 foi transformado em células competentes T1 de E. coli através de um método de choque térmico. Especificamente, 50 μl de células competentes T1 de E. coli foram misturados com 10 μl de DNA plasmídico (o vetor de expressão recombinante DBN1000124), incubado em um banho de água a 42°C por 30 segundos e depois em um banho de água a 37°C por uma hora (em um agitador a 100 rpm). A mistura depois cresceu a 37°C por 12 horas em uma placa LB (triptona 10 g/L, extrato de levedura a 5 g/L, NaCl a 10 g/L, ágar a 15 g/L, o valor do pH foi ajustado para 7,5 com NaOH) com 50 mg/L de Canamicina. Colônias brancas foram obtidas e cultivadas ainda a 37°C durante a noite em meio LB (triptona a 10 g/L, extrato de levedura a 5 g/L, NaCl a 10 g/L, Canamicina a 50 mg/L, o valor do pH foi ajustado para 7,5 com NaOH). Os plasmídeos foram extraídos por um método alcalino. A digestão enzimática com AscI e BamHI foi usada para identificar os plasmídeos extraídos, e os clones positivos foram verificados ainda por sequenciamento. Os resultados mostraram que a sequência de nucleotídeo inserida no vetor de clonagem recombinante DBN0100124 entre os sítios AscI e BamHI foi Cry1Fa-01 mostrada como SEQ ID N°: 3 na listagem de sequência.
[0080] Como o método acima para a construção do vetor de expressão recombinante DBN100014, os vetores de clonagem recombinantes DBN01-T e DBN03-T foram enzimaticamente digeridos por AscI e BamHI, NcoI e SwaI respectivamente para gerar as sequências de nucleotídeo de Cry1Fa-01 e Cry1Ab, que foram inseridas no vetor de expressão DBNBC-01 para obter o vetor de expressão recombinante DBN100012. Como verificado pela digestão enzimática e sequenciamento, o vetor de expressão recombinante DBN100012 incluiu as sequências de nucleotídeo de Cry1Fa-01 e Cry1Ab mostradas como SEQ ID N°: 3 e SEQ ID N°: 5 na listagem de sequência.
[0081] Como o método acima para a construção do vetor de expressão recombinante DBN100014, os vetores de clonagem recombinantes DBN02-T e DBN04-T foram enzimaticamente digeridos por AscI e BamHI, ScaI e SpeI respectivamente para gerar as sequências de nucleotídeo de Cry1Fa-02 e Vip3A, que foram inseridas ainda no vetor de expressão DBNBC-01 para obter o vetor de expressão recombinante DBN100276. Como verificado por digestão enzimática e sequenciamento, o vetor de expressão recombinante DBN100276 incluiu as sequências de nucleotídeo de Cry1Fa-02 e Vip3A mostradas como SEQ ID N°: 4 e SEQ ID N°: 6 na listagem de sequência.
III. Vetores de expressão recombinantes foram transformados em Agrobacterium
[0082] Os vetores de expressão recombinantes corretamente construídos, DBN100014, DBN100012 e DBN100276, foram transformados em LBA4404 de Agrobacterium (Invitrgen, Chicago, USA; Cat No 18313-015) através de um método com nitrogênio líquido. Especificamente, 100 μL de LBA4404 de Agrobacterium e 3 μL de DNA plasmídico (os vetores de expressão recombinantes) foram colocados em nitrogênio líquido por 10 minutos, seguido por incubação em um banho de água a 37°C por 10 minutos. O LBA4404 de Agrobacterium transformado foi inoculado em um tubo LB e depois cultivado a 28°C, 200 rpm por 2 horas. Subsequentemente, a cultura foi aplicada a uma placa LB contendo 50 mg/L de Rifampicina e 100 mg/L de Canamicina até que os clones individuais positivos crescessem. Os clones individuais foram selecionados para cultura adicional para extrair os plasmídeos. Os vetores de expressão recombinantes foram identificados por digestão enzimática, isto é, os vetores de expressão recombinantes DBN100014 e DBN100012 foram digeridos com as enzimas de restrição AhdI e XbaI, enquanto o vetor de expressão recombinante DBN100276 foi digerido com enzimas de restrição AhdI e AatII indicando a construção correta dos vetores de expressão recombinantes, DBN100014, DBN100012 e DBN100276.
Exemplo 3 Aquisição e verificação de plantas do milho transformadas com gene CrylFs IV. Geração de plantas do milho transformadas com gene CrylFs
[0083] De acordo com o método convencional de infecção por Agrobacterium, os embriões imaturos cultivados estéreis do Milho Z31 foram cultivados com cepas de Agrobacterium obtidas em III, Exemplo 2. Os T-DNAs (compreendendo a sequência promotora de gene de ubiquitina do milho, a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02, a sequência de nucleotídeo de Cry1Ab, a sequência de nucleotídeo de Vip3A, gene PMI e a sequência terminadora de Nos) dos vetores de expressão recombinantes DBN100014, DBN100012 e DBN100276, que foram construídos em II, Exemplo 2, foram transferidos no genoma do milho para gerar as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A. As plantas do milho do tipo selvagem foram usadas como controle.
[0084] O processo de transformação mediada por Agrobacterium do milho foi brevemente descrito como segue. Os embriões imaturos isolados do milho foram contatados com a suspensão de Agrobacterium, por meio da qual as sequências de nucleotídeo de Cry1Fa-01, Cry1Fa-01-Cry1Ab e/ou Cry1Fa-02-Vip3A foram liberadas em pelo menos uma célula de qualquer embrião imaturo por Agrobacterium (etapa 1: Infecção). Nesta etapa, os embriões imaturos foram preferivelmente imersos em suspensão de Agrobacterium (OD660 = 0,4 a 0,6, meio de infecção (sal de MS a 4,3 g/L, vitaminas de MS, caseína a 300 mg/L, sacarose a 68,5 g/L, glicose a 36 g/L, Acetosiringona (AS) a 40 mg/L, ácido 2,4-diclorofenoxiacético (2,4-D) a 1 mg/L, pH 5,3)) para iniciar a inoculação. Os embriões imaturos foram cultivados com cepas de Agrobacterium por um período de tempo (3 dias) (etapa 2: Co-cultura). Preferivelmente, depois da etapa of infecção, os embriões imaturos foram cultivados em um meio sólido (sal de MS a 4,3 g/L, vitaminas de MS, caseína a 300 mg/L, sacarose a 20 g/L, glicose a 10 g/L, Acetosiringona (AS) a 100 mg/L, ácido 2,4- diclorofenoxiacético (2,4-D) a 1 mg/L, ágar a 8 g/L, pH 5,8). Depois da etapa de co-cultura, uma etapa de "recuperação" é opcional, em que existe pelo menos um antibiótico conhecido como inibir o crescimento de Agrobacterium (Cefalosporinas) e nenhum agente de seleção para transformantes de planta no meio de recuperação (sal de MS a 4,3 g/L, vitaminas de MS, caseína a 300 mg/L, sacarose a 30 g/L, ácido 2,4- diclorofenoxiacético (2,4-D) a 1 mg/L, ágar a 8 g/L, pH 5,8) (etapa 3: Recuperação). Preferivelmente, os embriões imaturos foram cultivados no meio sólido com um antibiótico mas sem agentes de seleção para eliminar Agrobacterium e fornecer um período de recuperação para células transformadas. Em seguida, os embriões imaturos inoculados foram cultivados no meio com um agente de seleção (manose) e os calos transformados crescentes foram selecionados (etapa 4: Seleção). Preferivelmente, os embriões imaturos foram cultivados em um meio de seleção sólido com um agente de seleção (sal de MS a 4,3 g/L, vitaminas de MS, caseína a 300 mg/L, sacarose a 5 g/L, manose a 12,5g/L, ácido 2,4-diclorofenoxiacético (2,4-D) a 1 mg/L, ágar a 8 g/L, pH 5,8), o que resultou em um crescimento seletivo de células transformadas. Além disso, os calos regeneraram em plantas (etapa 5: Regeneração). Preferivelmente, os calos cultivados no meio com o agente de seleção foram cultivados em um meio sólido (meio de diferenciação de MS e meio de enraizamento de MS) para regenerar plantas.
[0085] Os calos resistentes selecionados foram transferidos sobre o meio de diferenciação de MS (sal de MS a 4,3 g/L, vitaminas de MS, caseína a 300 mg/L, sacarose a 30 g/L, 6-benziladenina a 2 mg/L, manose a 5 g/L, ágar a 8 g/L, pH 5,8), e cultivados para a diferenciação a 25°C. As mudas diferenciadas foram transferidas sobre o meio de enraizamento de MS (sal de MS a 2,15 g/L, vitaminas de MS, caseína a 300 mg/L, sacarose a 30 g/L, ácido indol-3-acético a 1 mg/L, ágar a 8 g/L, pH 5,8), e cultivados a 25°C até a altura de cerca de 10 cm. As mudas foram depois transferidas em uma estufa e cresceram até a frutificação. Durante a cultura na estufa, as mudas foram incubadas a 28°C por 16 horas e depois incubadas a 20°C por 8 horas todo dia.
V. . Verificação das plantas do milho transformadas com o gene Cry1Fs pelo método de TaqMan
[0086] Usando cerca de 100 mg de folhas de cada uma das plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A como amostras, o DNA genômico foi extraído com DNeasy Plant Maxi Kit da Qiagen, e os números de cópia do gene Cry1F, gene Cry1Ab e gene Vip3A foram determinados pelo método de PCR quantitativo de fluorescência com sonda Taqman. As plantas do milho do tipo selvagem foram analisadas como controle de acordo com o método mencionado acima. Os experimentos foram repetidos por 3 times e os resultados foram ponderados.
[0087] O protocolo detalhado para determinar os números de cópia do gene Cry1F, gene Cry1Ab e gene Vip3A foi como segue:
[0088] Etapa 11: 100 mg das folhas de cada uma das plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, das plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e das plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A, e aquela das plantas do milho do tipo selvagem foram experimentados e homogeneizados em um almofariz com nitrogênio líquido. Cada amostra foi em triplicata.
[0089] Etapa 12: O DNA genômico das amostras mencionadas acima foi extraído com DNeasy Plant Maxi Kit da Qiagen, e o método detalhado refere-se ao protocolo do fabricante.
[0090] Etapa 13: NanoDrop 2000 (Thermo Scientific) foi utilizado para medir as concentrações de DNA genômico das amostras mencionadas acima.
[0091] Etapa 14: As concentrações de DNA genômico das amostras mencionadas acima foram ajustadas para as mesmas concentrações em uma faixa de 80 a 100 ng/μl.
[0092] Etapa 15: Os números de cópia das amostras foram determinados por um método de PCR quantitativo de fluorescência com sonda Taqman. Uma amostra que teve um número de cópia conhecido foi usada como padrão, e uma amostra das plantas do milho do tipo selvagem foi usada como controle. Cada amostra foi triplicada e os resultados foram ponderados. Os iniciadores e sondas usados no método de PCR quantitativo de fluorescência são como segue.
[0093] Os iniciadores e sondas seguintes foram usados para detectar a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01:
[0094] Iniciador 1 (CF1): CAGTCAGGAACTACAGTTGTAAGAGGG, mostrado como a SEQ ID N°: 10 na listagem de sequência;
[0095] Iniciador 2 (CR1): ACGCGAATGGTCCTCCACTAG, mostrado como a SEQ ID N°: 11 na listagem de sequência;
[0096] Sonda 1 (CP1): CGTCGAAGAATGTCTCCTCCCGTGAAC, mostrada como a SEQ ID N°: 12 na listagem de sequência;
[0097] Os iniciadores e sondas seguintes foram usados para detectar a sequência de nucleotídeo de Cry1Ab:
[0098] Iniciador 3 (CF2): TGGTGGAGAACGCATTGAAAC, mostrado como a SEQ ID N°: 13 na listagem de sequência;
[0099] Iniciador 4 (CR2): GCTGAGCAGAAACTGTGTCAAGG, mostrado como a SEQ ID N°: 14 na listagem de sequência;
[00100] Sonda 2 (CP2): CGGTTACACTCCCATCGACATCTCCTTG, mostrada como a SEQ ID N°: 15 na listagem de sequência;
[00101] Os iniciadores e sondas seguintes foram usados para detectar a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02:
[00102] Iniciador 5 (CF3): CAGTCAGGAACTACAGTTGTAAGAGGG, mostrado como a SEQ ID N°: 16 na listagem de sequência;
[00103] Iniciador 6 (CR3): ACGCGAATGGTCCTCCACTAG, mostrado como a SEQ ID N°: 17 na listagem de sequência;
[00104] Sonda 3 (CP3): CGTCGAAGAATGTCTCCTCCCGTGAAC, mostrada como a SEQ ID N°: 18 na listagem de sequência;
[00105] Os iniciadores e sondas seguintes foram usados para detectar a sequência de nucleotídeo de Vip3A:
[00106] Iniciador 7 (CF4): ATTCTCGAAATCTCCCCTAGCG, mostrado como a SEQ ID N°: 19 na listagem de sequência;
[00107] Iniciador 8 (CR4): GCTGCCAGTGGATGTCCAG, mostrado como a SEQ ID N°: 20 na listagem de sequência;
[00108] Sonda 4 (CP4): CTCCTGAGCCCCGAGCTGATTAACACC, mostrada como a SEQ ID N°: 21 na listagem de sequência; Sistema de reação de PCR: JumpStart™ Taq ReadyMix™ (Sigma) 10 μl Mistura em 50* de iniciadores/sondas 1 μl DNA genômico 3 μl Água (ddH2O) 6 μl
[00109] A mistura em 50* de iniciadores/sondas, contendo 1 mM de cada iniciador a 45 μl, 100 μM das sondas a 50 μl e 1 x tampão de TE a 860 μl, foi armazenada a 4°C em um tubo âmbar. Condições de PCR foram como segue: Etapa Temperatura Tempo 21 95°C 5 min 22 95°C 30 s 23 60°C 1 min 24 voltando para a etapa 22, repetir 40 vezes
[00110] Os dados foram analisados pelo software SDS2.3 (Applied Biosystems).
[00111] Como mostrado pelos resultados, as sequências de nucleotídeo de Cry1Fa-01, Cry1Fa-01-Cry1Ab e Cry1Fa-02-Vip3A foram integradas com êxito nos genomas das plantas do milho detectadas respectivamente. As plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A obtiveram uma cópia única de gene Cry1F, gene Cry1Ab e/ou gene Vip3A.
Exemplo 4 Detecção de proteínas pesticidas em plantas do milho transgênicas I. A detecção dos teores de proteínas pesticidas em plantas do milho transgênicas
[00112] As soluções envolvidas neste experimento foram como segue:
[00113] Tampão de extração: 8 g/L de NaCl, 0,2 g/L de KH2PO4, 2,9 g/L de Na2HPO4^12H2O, 0,2 g/L de KCl, 5,5 ml/L de Tween-20, pH 7,4;
[00114] Tampão de lavagem PBST: 8 g/L de NaCl, 0,2 g/L de KH2PO4, 2,9 g/L de Na2HPO4^12H2O, 0,2 g/L de KCl, 0,5 ml/L de Tween-20, pH 7,4;
[00115] Solução de terminação: HCl 1M.
[00116] 3 mg de folhas frescas de cada uma das plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, das plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e das plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A foram experimentados e homogeneizados com nitrogênio líquido, seguido pela adição de 800 μl do tampão de extração. A mistura foi centrifugada a 4000 rpm por 10 min, depois o sobrenadante foi diluído 40 vezes com o tampão de extração e 80 μl de sobrenadante diluído foram usados para o teste ELISA. Kits de ELISA (ensaio imunossorvente ligado à enzima) (ENVIRLOGIX Company, Kits de Cry1Fa, Cry1Fa/Cry1Ac e Vip3A) foram utilizados para determinar a razão do teor de proteínas pesticidas (proteínas Cry1Fa, Cry1Ab e Vip3A) dividida pelo peso das folhas frescas. O método detalhado refere-se ao protocolo do fabricante.
[00117] Entretanto, as plantas do milho do tipo selvagem e as plantas do milho não transgênicas identificadas por Taqman foram usadas como controles, e a determinação seguiu os métodos como descrito acima. Para três linhagens transformadas com Cry1Fa-01 (S1, S2 e S3), com Cry1Fa-01-Cry1Ab (S4, S5 e S6) e com Cry1Fa-02-Vip3A (S7, S8 e S9), uma linhagem identificada como planta não transgênica (NGM) por Taqman e uma linhagem como (CK) do tipo selvagem, três plantas para cada linhagem foram usadas e cada planta foi repetida seis vezes.
[00118] Resultados experimentais dos teores de proteína pesticida Cry1Fa em plantas transgênicas foram mostrados na tabela 1. Resultados experimentais dos teores de proteína pesticida Cry1Ab em plantas transgênicas foram mostrados na tabela 2. Resultados experimentais dos teores de proteína pesticida Vip3A em plantas transgênicas foram mostrados na tabela 3. As razões das expressões ponderadas da proteína pesticida Cry1Fa divididas pelo peso das folhas frescas das plantas do milho transformadas com as sequências de nucleotídeo de Cry1Fa-01, Cry1Fa-01-Cry1Ab e Cry1Fa-02-Vip3A foram determinadas como 3475,52, 3712,48 e 3888,76 respectivamente; a razão das expressões ponderadas da proteína pesticida Cry1Ab divididas pelo peso das folhas frescas nas plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01- Cry1Ab foi 8234,7, e a razão das expressões ponderadas da proteína pesticida Vip3A dividida pelo peso das folhas frescas nas plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02- Vip3A foi 3141,02. Estes resultados sugerem que as plantas do milho transgênicas receberam uma expressão relativamente alta e estável de proteína Cry1Fa, proteína Cry1Ab e proteína Vip3A. Tabela 1. A quantidade média de proteína CrylFa expressada nas plantas do milho transgênicas
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Tabela 2. A quantidade média de proteína CrylAb expressada nas plantas do milho transgênicas
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Tabela 3. A quantidade média de proteína Vip3A expressada nas plantas do milho transgênicas
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II. Detecção da resistência à praga das plantas do milho transgênicas
[00119] As plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A, as plantas do milho do tipo selvagem e as plantas do milho não transgênicas confirmadas por Taqman foram detectadas quanto à sua resistência a Athetis lepigone.
[00120] Folhas frescas das plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A, e aquelas das plantas do milho do tipo selvagem e das plantas do milho identificadas como plantas não transgênicas (estágio V3-V4) por Taqman foram experimentadas respectivamente. As folhas foram enxaguadas com água estéril e a água nas folhas foi totalmente seca por gaze. As nervuras das folhas foram removidas, e as folhas foram cortadas em tiras de aproximadamente 1 cm x 2 cm. Duas tiras das folhas foram colocadas em papel de filtro umedecido com água destilada no fundo de placas de Petri plásticas redondas. 10 cabeças de Athetis lepigone (larvas recentemente incubadas) foram colocadas em cada placa, e as placas com as pragas foram cobertas com tampas e colocadas a 25 a 28°C, umidade relativa de 70% a 80% e fotoperíodo (luz/escuro) 16:8 por 3 dias. De acordo com três indicadores, o progresso de desenvolvimento, mortalidade e taxa de dano à folha das larvas de Athetis lepigone, a contagem de resistência foi adquirida: contagem = 100 x mortalidade + [100 x mortalidade + 90 x (o número de pragas recentemente incubadas/o número total de pragas inoculadas) + 60 x (o número de pragas recentemente incubadas - o número de pragas de controle negativo/o número total de pragas inoculadas) + 10 x (o número de pragas de controle negativo/o número total de pragas inoculadas)] + 100 x (1 - taxa de dano à folha). Três linhagens foram transformadas com Cry1Fa-01 (S1, S2 e S3), e 3 linhagens foram transformadas com Cry1Fa-01- Cry1Ab (S4, S5 e S6), e 3 linhagens foram transformadas com Cry1Fa- 02-Vip3A (S7, S8 e S9), e 1 linhagem foi identificada como planta não transgênica (NGM) por Taqman, e 1 linhagem foi do tipo selvagem (CK); 3 plantas foram escolhidas para o teste de cada linhagem, repetido seis vezes por plantas. Os resultados foram mostrados na tabela 4, Figura 3 e Figura 4. Tabela 4. A resistência à praga das plantas do milho transgênicas inoculadas com Athetis lepigone
Figure img0005
[00121] Como mostrado na tabela 4, as contagens das plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, das plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e das plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A foram principalmente de mais do que 280; enquanto a contagem das plantas do milho do tipo selvagem foi geralmente de cerca de 150 ou menos.
[00122] Como mostrado na Figura 3 e Figura 4, comparado com as plantas do milho do tipo selvagem, as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A mataram aproximadamente 100% da Athetis lepigone recentemente incubada, e inibiram muito o desenvolvimento de larvas que raramente sobreviveram de modo que as larvas ainda permaneceram no estado recentemente incubado depois de 3 dias. Adicionalmente, as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A apenas tiveram um dano menor, apresentando uma quantidade muito pequena de danos semelhantes a furo feito por alfinete em algumas folhas que podem apenas ser observados sob um ampliador.
[00123] Assim, é provado que as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e as plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A todas mostraram resistência alta a Athetis lepigone, que é suficiente para causar efeitos adversos sobre o crescimento de Athetis lepigone de modo que os mesmos possam ser controlados.
[00124] Os resultados acima também mostraram que o controle eficaz de Athetis lepigone resultou da proteína Cry1F produzida pelas plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01, pelas plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-01-Cry1Ab e pelas plantas do milho transformadas com a sequência de nucleotídeo de Cry1Fa-02-Vip3A. Seria bem conhecido à pessoa habilitada na técnica que, plantas transgênicas similares que podem expressar Cry1F podem ser produzidas para controlar Athetis lepigone, com base no mesmo efeito tóxico da proteína Cry1F à Athetis lepigone. Proteínas Cry1F descritas na presente invenção incluem, mas não são limitadas a, proteínas Cry1F mostradas nas modalidades específicas pelas sequências específicas. As plantas transgênicas também podem gerar pelo menos um tipo de proteína pesticida adicional que é diferente de Cry1F, por exemplo, Cry1Ab, Cry1Ac, Cry1Ba e Vip3A.
[00125] Em conclusão, a presente invenção pode controlar Athetis lepigone permitindo-se que as plantas produzam proteína Cry1F in vivo, o que é tóxico para Athetis lepigone. Em comparação com métodos de controle agrícola e químico correntes, os método descritos pela presente invenção podem controlar Athetis lepigone por todo o período de crescimento das plantas e fornecer uma proteção total às plantas. Adicionalmente, o método é estável, completo, simples, conveniente, econômico, isento de poluição e isento de resíduo.
[00126] Finalmente, deve ser observado que, as modalidades acima ilustram meramente as soluções técnicas da presente invenção e não devem ser limitadas a estas, embora as modalidades preferidas com referência à presente invenção tenham sido descritas em detalhe, a pessoa habilitada na técnica deveria avaliar que as soluções técnicas da presente invenção podem ser modificadas ou equivalentemente substituídas sem divergir do espírito e escopo das soluções técnicas da invenção.

Claims (10)

1. Método para controlar Athetis lepigone, o método compreendendo contatar Athetis lepigone com proteína Cry1F, em que a proteína Cry1F é uma proteína Cry1Fa; em que a proteína Cry1Fa está presente em uma célula de planta que expressa a proteína Cry1Fa, e Athetis lepigone contata com a proteína Cry1Fa por ingestão da célula de planta, caracterizado pelo fato de que a sequência de aminoácido da proteína Cry1Fa compreende uma sequência de aminoácido da SEQ ID N°: 1 ou SEQ ID N°: 2; e a sequência de nucleotídeo que codifica a proteína Cry1Fa compreende uma sequência de nucleotídeo da SEQ ID N°: 3 ou SEQ ID N°: 4.
2. Método, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo fato de que a proteína Cry1Fa está presente em uma planta transgênica que expressa a proteína Cry1Fa, e Athetis lepigone contata com a proteína Cry1Fa por ingestão de um tecido da planta transgênica; posteriormente, o crescimento de Athetis lepigone é suprimido, e este eventualmente leva à morte de Athetis lepigone e consegue controlar o dano de Athetis lepigone à planta.
3. Método, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo fato de que a planta transgênica está em quaisquer períodos de crescimento.
4. Método, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo fato de que o tecido da planta transgênica é raízes, folhas, caules, corutos, espigas, anteras ou filetes.
5. Método, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo fato de que o controle do dano de Athetis lepigone à planta não depende da localização do plantio.
6. Método, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo fato de que o controle do dano de Athetis lepigone à planta não depende do tempo de plantio.
7. Método, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo fato de que a planta é milho.
8. Método, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo fato de que antes da etapa de contato, o método compreende uma etapa para plantar uma muda transgênica que contém um polinucleotídeo que codifica a proteína Cry1Fa.
9. Método, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo fato de que um nucleotídeo secundário expresso pela planta codifica proteína Cry1Ab, proteína Cry1Ac, proteína Cry1Ba ou proteína Vip3A, e o nucleotídeo secundário compreende uma sequência de nucleotídeo da SEQ ID N°: 5 ou SEQ ID N°: 6.
10. Método, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo fato de que o nucleotídeo secundário é dsRNA, que inibe um gene importante de uma praga alvo.
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