BE1004328A3 - METHOD AND DEVICE FOR LIVING CELLS permeabilization. - Google Patents

METHOD AND DEVICE FOR LIVING CELLS permeabilization. Download PDF

Info

Publication number
BE1004328A3
BE1004328A3 BE9000518A BE9000518A BE1004328A3 BE 1004328 A3 BE1004328 A3 BE 1004328A3 BE 9000518 A BE9000518 A BE 9000518A BE 9000518 A BE9000518 A BE 9000518A BE 1004328 A3 BE1004328 A3 BE 1004328A3
Authority
BE
Belgium
Prior art keywords
cells
discharge
voltage
pulse
duration
Prior art date
Application number
BE9000518A
Other languages
French (fr)
Original Assignee
Scient Equipment Design & Dev
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Scient Equipment Design & Dev filed Critical Scient Equipment Design & Dev
Priority to BE9000518A priority Critical patent/BE1004328A3/en
Priority to PCT/BE1991/000030 priority patent/WO1991018103A1/en
Priority to AU77722/91A priority patent/AU7772291A/en
Application granted granted Critical
Publication of BE1004328A3 publication Critical patent/BE1004328A3/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/87Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01HNEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H1/00Processes for modifying genotypes ; Plants characterised by associated natural traits
    • A01H1/06Processes for producing mutations, e.g. treatment with chemicals or with radiation
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M35/00Means for application of stress for stimulating the growth of microorganisms or the generation of fermentation or metabolic products; Means for electroporation or cell fusion
    • C12M35/02Electrical or electromagnetic means, e.g. for electroporation or for cell fusion
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N13/00Treatment of microorganisms or enzymes with electrical or wave energy, e.g. magnetism, sonic waves

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Electromagnetism (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Procédé et dispositif de perméabilisation de membranes cellulaires par décharge électrique (électroporation) dans lequel on applique une solution contenant des cellules à rendre perméables, ainsi que les molécules destinées à être logées à l'intérieur des cellules, successivement, au moins une décharge électrique de haut voltage et de courte durée et ensuite au moins une décharge électrique de bas voltage et de plus longue durée.Method and device for permeabilization of cell membranes by electrical discharge (electroporation) in which a solution containing cells to be made permeable is applied, as well as the molecules intended to be housed inside the cells, successively, at least one electrical discharge of high voltage and short duration and then at least one electrical discharge of low voltage and longer duration.

Description

       

   <Desc/Clms Page number 1> 
 



   PROCÉDÉ ET DISPOSITIF DE PERMÉABILISATION DE
CELLULES VIVANTES objet de l'invention
Le transfert de matériel génétique nouveau ainsi que de protéines étrangères ou autres molécules ou macromolécules dans des cellules vivantes a gagné en importance depuis les derniers développements en biochimie et notamment en génétique. 



   La présente invention est relative à ce domaine et concerne plus particulièrement un procédé de perméabilisation des membranes de cellules vivantes ainsi qu'un dispositif pour la mise en oeuvre de ce procédé. 



  Etat de la technique
Parmi les différentes méthodes destinées à rendre les membranes cellulaires perméables, de façon à permettre l'introduction   de"corps étrangers"on   connaît notamment les techniques de perméabilisation par chocs électriques, couramment   dénommées"électroporation".   



   L'article"Enhancer-dependent expression of human immunoglobulin genes introduced into mouse pre-B lymphocytes by electroporation"de HUNTINGTON POTTER et al., Proc. Natl. 



  Acad. Sci-USA, Vol. 81, pages 7161-7165, Novembre 1984, mentionne l'utilisation d'impulsions de relativement faible intensité (de 1, 2 à 4 kV) pour rendre certaines cellules perméables à l'ADN cloné. En fait, une suspension de cellules et de ADN clone est soumise à une décharge électrique. 



   Par l'article"Electric shock-mediated transfection of cells", Biochem. J. (1988) 251, 427-434, de David J. 



    Winterbourne   et al., il est connu d'appliquer des impulsions 

 <Desc/Clms Page number 2> 

 
 EMI2.1 
 t relativement longues à une solution contenant les cellules à percer ainsi que de l'ADN à faire pénétrer dans lesdites cellules. 



   On y mentionne notamment des impulsions du type rectangulaire créant un champ électrique de l'ordre de 2,5 à 3 kV/cm. Il y a également été découvert une corrélation entre la durée des impulsions (100 s à 500 s) et l'efficacité de l'opération, l'ADN étant ainsi soumis à un mouvement d'électrophorèse. 



   Toutefois, l'application d'un champ électrique entraîne une dissipation d'énergie importante dans la solution qui a pour résultat une mortalité élevée des cellules. 



  L'article"High efficiency transformation of E. COLI by high voltage electroporation", Nucleic Acids Research (1988), volume 16, n 13,6127-6144, de William J. Dower et al. mentionne des essais faisant appel à une électroporation à l'aide d'impulsions de forte intensité mais de courte durée. 



  On y atteint des résultats satisfaisants avec des intensités allant jusqu'à 12,5 kV/cm et 16,7 kV/cm et une corrélation entre l'intensité et la durée des impulsions est également établie. 



   Bien que l'énergie dissipée dans la solution soit réduite, l'efficacité de l'opération est limitée par une mortalité des cellules dues à l'éclatement suite à des chocs électriques trop importants. 



  But de l'invention
La présente opération vise à fournir un procédé de perméabilisation des membranes cellulaires qui ne présente pas les inconvénients de l'état de la technique et qui permet d'améliorer le rendement des manipulations en augmentant le taux de cellules percées et/ou la survie des cellules et/ou l'entrée des molécules étrangères dans les cellules. 



   Un autre but de la présente invention consiste à fournir un dispositif permettant la mise en oeuvre du procédé. 



  Eléments essentiels de l'invention
Conformément à la présente invention, on applique 

 <Desc/Clms Page number 3> 

 à une solution contenant les cellules à rendre perméables ainsi que les molécules destinées à être logées à l'intérieur des cellules, successivement au moins une décharge électrique de haut voltage et de courte durée et ensuite au moins une décharge électrique de bas voltage et de plus longue durée. 



   On a constaté que cette façon de procéder permet de réduire le taux de mortalité des cellules tout en augmentant le taux de pénétration de celles-ci. 



   Il est bien entendu que les deux étapes de   l'inven-   tion doivent se suivre d'un laps de temps très court. En effet, plus le laps de temps séparant les deux étapes est important, plus le taux de mortalité des cellules est élevé déjà à la suite de la première étape. On a constaté qu'un temps d'environ 30 s constitue un seuil à ne pas dépasser. 



   Avantageusement, la décharge de haut voltage et de courte durée consiste en une impulsion à décroissance exponentielle, notamment obtenue par la décharge d'un condensateur. 



   Les amplitudes peuvent atteindre 400 à 20.000 V/cm en fonction de la durée de l'impulsion et du type de cellules à traiter, la durée étant de l'ordre d'l   s   à 1 ms. 



   Par ailleurs, la décharge de bas voltage peut avantageusement consister en une tension essentiellement continue, par exemple fournie par une alimentation stabilisée, de l'ordre de 10 à 400 V/cm, en fonction de la durée de l'impulsion et du type de cellules à traiter, appliquée pendant un temps cumulé de l'ordre de 1 à 100 ms. 



   Selon une autre variante, on peut, dans certains cas d'application, préférer une impulsion courte de forte intensité du type rectangulaire, l'impulsion à basse tension étant éventuellement une impulsion à décroissance exponentielle. 



   Selon une forme d'exécution préférée, la première décharge et/ou la-seconde décharge peut consister en un train d'ondes. Dans ce cas, on peut encore prévoir de permuter la polarité de la différence de potentiel aux bornes de la solution au cours de la décharge. 



   Pour ce qui concerne la décharge de haut voltage, 

 <Desc/Clms Page number 4> 

 un effet de résonance dû à l'inversion de la polarité peut augmenter la création de pores dans la paroi cellulaire. 



   D'autre part, l'inversion de polarité lors de la décharge à bas voltage peut provoquer des mouvements de vaet-vient de la molécule, par exemple l'ADN, à introduire dans les cellules ; ce qui augmente les chances de pénétration dans la cellule. 



   Le procédé de la présente invention permet de percer des parois cellulaires que l'on n'était pas encore arrivé à pénétrer jusqu'à présent. Des expériences sur lymphocytes humains et sur certaines souches de levure ont été particulièrement concluantes. 



   Dans la mesure où la durée de vie des cellules dans le milieu considéré le permet, on peut encore augmenter le taux de pénétration en effectuant successivement plusieurs démarches conformes à l'invention. 



   Le dispositif qui permet la mise en oeuvre du procédé de l'invention comporte au moins un condensateur associé à un circuit de charge et une alimentation stabilisée, la tension dégagée par l'un et l'autre étant alternativement mise aux bornes d'électrodes adaptées à une cuvette destinée à contenir la solution. 



   Avantageusement, la tension maximum et la constante de temps de la décharge du condensateur sont programmables. 



   On comprend aisément que l'appareil conforme à l'invention est moins onéreux et de conception plus simple que les appareils de l'état de la technique. 



   En effet, on évite, conformément à l'invention, d'agencer plusieurs condensateurs destinés à être déchargés successivement ; ce qui en réduit le coût, simplifie le câblage et la commande. En outre, le poids et l'encombrement en sont réduits ; ce qui est toujours bien venu dans un laboratoire devant notamment fonctionner dans des conditions stériles. 



   La combinaison décharge de condensateur/alimentation stabilisée permet en outre d'éviter les pertes de temps entre deux décharges capacitives, dues à la charge des condensateurs ; ce qui est bénéfique pour la survie des 

 <Desc/Clms Page number 5> 

 cellules. 



   Avantageusement, le dispositif de l'invention peut être équipé d'une résistance de shuntage visant à réduire la dissipation d'énergie dans le milieu. 



   Le procédé ainsi que le dispositif de l'invention conviennent particulièrement bien pour la perméabilisation de parois cellulaires afin d'y introduire des molécules telles que l'ADN, des protéines, des anticorps, des drogues ou autres produits chimiques. 



   Une autre application réside dans l'extraction de molécules, notamment de   l'ADN,   de cellules rendues perméables. Cette technique permet notamment d'obtenir de   l'ADN   "propre", n'exigeant quasiment plus d'étape de purification ultérieure. 



   On peut encore trouver une application du procédé de l'invention dans la modification de cellules et éventuellement dans la fusion de celles-ci. 



   L'invention est décrite plus en détail ci-dessous à l'aide d'exemples d'exécution. 



  Exemple 1. 



  Perméabilisation de cellules de la lignée GH (GC, GH3b6, GH4,...)
On prépare les cellules comme pour une électroporation classique. On les concentre à 4 millions de cellules/800   gl,   dans le milieu de culture habituel de ces cellules. On ajoute   l'ADN,   de 3 Mg à 50   pg   suivant le plasmide ou le fragment d'ADN utilisé. On dépose 800   cl   du mélange dans une cuvette d'électroporation classique de 4 mm. On applique une première décharge de 750 V (1875 V/cm), avec une résistance de shuntage de 74 n et un condensateur de   40     MF.   On applique ensuite, une seconde décharge de 100 V (250 V/cm) avec une résistance de shuntage de 74 n et un condensateur de 1800   MF.   



  Les cellules sont ensuite transvasées dans du milieu de culture frais, endéans les 30 s. Par la méthode de mesure enzymatique"CAT", on obtient une réponse 10 fois supérieure par rapport à l'état de la technique. 



  Exemple 2 Perméabilisation de levures 

 <Desc/Clms Page number 6> 

 
On procède de façon analogue à l'exemple l en utilisant les paramètres suivants : - première décharge : 750 V à 1500 V suivant la souche shunt 74 n condensateur 40   MF   cuvettes de 2 mm - deuxième décharge : 100 V shunt 74 n condensateur 1800   MF  
On obtient 103 à 107   transformants/jng   ADN,   c'est-à-   dire 10 à 20 fois plus que selon l'état de la technique. 



  Exemple 3 Perméabilisation de bactéries
On procède de manière analogue avec les paramètres suivants : - première décharge : voltage de 2000 à 2500 V shunt de 74 n condensateur de 40   F   cuvettes de 2 mm - deuxième, décharge : voltage de 100 V shunt de 74 n condensateur de 1800   F  
Dans le cas de bactéries gram-, on obtient 106 à   10ll     transformants/jng   ADN, c'est-à-dire jusqu'à 10 fois plus que selon l'état de la technique. 



   Dans le cas des bactéries gram +, on obtient 104 à 107   transformants/jng   ADN, c'est-à-dire jusqu'à 100 fois plus. 



  Exemple 4 Perméabilisation de protoplastes
On procède de façon analogue aux exemples précédents avec les paramètres suivants : - première décharge : voltage de 150 à 250 V shunt de 74 n condensateur de 40   F   cuvettes de 4 mm - deuxième décharge : voltage de 50 à 100 V shunt de 74 n condensateur de 1800   F   

 <Desc/Clms Page number 7> 

 
On obtient   101     à 103 transformants/g   ADN. 



   Le dispositif de l'invention représenté à la figure 1 comporte un condensateur 1 associé à un circuit de charge 3 et une alimentation stabilisée 5. La tension aux bornes du condensateur 1 et de l'alimentation stabilisée 5 est appliquée à la cuvette d'essai 7. Des résistances de shuntage 9 sont prévues en parallèle sur le condensateur 1. L'alimentation stabilisée 5 ainsi que le circuit de charge 3 du condensateur sont commandés par un circuit de régulation Il qui permet de programmer la constante de temps de la décharge et la tension maximum.



   <Desc / Clms Page number 1>
 



   METHOD AND APPARATUS FOR PERMEABILITY OF
LIVING CELLS object of the invention
The transfer of new genetic material as well as foreign proteins or other molecules or macromolecules into living cells has gained importance since the last developments in biochemistry and in particular in genetics.



   The present invention relates to this field and relates more particularly to a process for permeabilization of living cell membranes as well as to a device for implementing this process.



  State of the art
Among the various methods intended to make cell membranes permeable, so as to allow the introduction of "foreign bodies", techniques are known in particular for permeabilization by electric shock, commonly called "electroporation".



   The article "Enhancer-dependent expression of human immunoglobulin genes introduced into mouse pre-B lymphocytes by electroporation" by HUNTINGTON POTTER et al., Proc. Natl.



  Acad. Sci-USA, Vol. 81, pages 7161-7165, November 1984, mentions the use of relatively low intensity pulses (1, 2 to 4 kV) to make certain cells permeable to cloned DNA. In fact, a suspension of cloned cells and DNA is subjected to an electric shock.



   By the article "Electric shock-mediated transfection of cells", Biochem. J. (1988) 251, 427-434, by David J.



    Winterbourne et al., It is known to apply pulses

 <Desc / Clms Page number 2>

 
 EMI2.1
 t relatively long in a solution containing the cells to be pierced as well as DNA to be made to penetrate said cells.



   Mention is made in particular of pulses of the rectangular type creating an electric field of the order of 2.5 to 3 kV / cm. There was also discovered a correlation between the duration of the pulses (100 s to 500 s) and the efficiency of the operation, the DNA being thus subjected to an electrophoresis movement.



   However, the application of an electric field results in significant energy dissipation in the solution which results in high cell mortality.



  The article "High efficiency transformation of E. COLI by high voltage electroporation", Nucleic Acids Research (1988), volume 16, n 13,6127-6144, by William J. Dower et al. mentions tests using electroporation using high intensity but short duration pulses.



  Satisfactory results are achieved with intensities up to 12.5 kV / cm and 16.7 kV / cm and a correlation between the intensity and duration of the pulses is also established.



   Although the energy dissipated in the solution is reduced, the efficiency of the operation is limited by the mortality of the cells due to bursting following excessive electrical shocks.



  Purpose of the invention
The present operation aims to provide a process for permeabilization of cell membranes which does not have the drawbacks of the state of the art and which makes it possible to improve the performance of manipulations by increasing the rate of pierced cells and / or cell survival. and / or the entry of foreign molecules into cells.



   Another object of the present invention consists in providing a device allowing the implementation of the method.



  Essential elements of the invention
In accordance with the present invention,

 <Desc / Clms Page number 3>

 to a solution containing the cells to be made permeable as well as the molecules intended to be housed inside the cells, successively at least one high voltage and short duration electrical discharge and then at least one low voltage electrical discharge and more long duration.



   It has been found that this procedure makes it possible to reduce the mortality rate of the cells while increasing the penetration rate of the latter.



   It is understood that the two stages of the invention must be followed by a very short period of time. In fact, the greater the time separating the two stages, the higher the mortality rate of the cells already following the first stage. It has been found that a time of around 30 s constitutes a threshold not to be exceeded.



   Advantageously, the high voltage and short duration discharge consists of an exponentially decreasing pulse, in particular obtained by the discharge of a capacitor.



   The amplitudes can reach 400 to 20,000 V / cm depending on the duration of the pulse and the type of cells to be treated, the duration being of the order of 1 s to 1 ms.



   Furthermore, the low-voltage discharge can advantageously consist of an essentially continuous voltage, for example supplied by a stabilized supply, of the order of 10 to 400 V / cm, depending on the duration of the pulse and the type of cells to be treated, applied for a cumulative time of the order of 1 to 100 ms.



   According to another variant, it is possible, in certain application cases, to prefer a short high-intensity pulse of the rectangular type, the low-voltage pulse possibly being an exponentially decreasing pulse.



   According to a preferred embodiment, the first discharge and / or the second discharge may consist of a train of waves. In this case, provision can also be made to swap the polarity of the potential difference across the solution during the discharge.



   Regarding the high voltage discharge,

 <Desc / Clms Page number 4>

 a resonance effect due to reverse polarity can increase the creation of pores in the cell wall.



   On the other hand, the reversal of polarity during low voltage discharge can cause back and forth movements of the molecule, for example DNA, to be introduced into cells; which increases the chances of penetration into the cell.



   The process of the present invention makes it possible to pierce cell walls which we had not yet managed to penetrate until now. Experiments on human lymphocytes and certain strains of yeast have been particularly successful.



   Insofar as the lifetime of the cells in the medium allows, the penetration rate can be further increased by successively carrying out several steps in accordance with the invention.



   The device which allows the implementation of the method of the invention comprises at least one capacitor associated with a charging circuit and a stabilized supply, the voltage released by one and the other being alternately placed at the terminals of suitable electrodes to a bowl intended to contain the solution.



   Advantageously, the maximum voltage and the time constant of the discharge of the capacitor are programmable.



   It is easily understood that the device according to the invention is less expensive and simpler in design than the devices of the prior art.



   Indeed, in accordance with the invention, it is avoided to arrange several capacitors intended to be discharged successively; which reduces the cost, simplifies wiring and control. In addition, the weight and size are reduced; which is always welcome in a laboratory which must in particular operate under sterile conditions.



   The combination of capacitor discharge / stabilized supply also makes it possible to avoid time losses between two capacitive discharges, due to the charge of the capacitors; which is beneficial for the survival of

 <Desc / Clms Page number 5>

 cells.



   Advantageously, the device of the invention can be equipped with a shunt resistor aimed at reducing the dissipation of energy in the medium.



   The method and the device of the invention are particularly suitable for permeabilization of cell walls in order to introduce molecules such as DNA, proteins, antibodies, drugs or other chemicals.



   Another application lies in the extraction of molecules, in particular DNA, from cells made permeable. This technique allows in particular to obtain "clean" DNA, requiring almost no further purification step.



   An application of the method of the invention can also be found in the modification of cells and possibly in the fusion of these.



   The invention is described in more detail below with the aid of working examples.



  Example 1.



  Permeabilization of cells of the GH line (GC, GH3b6, GH4, ...)
The cells are prepared as for a conventional electroporation. They are concentrated at 4 million cells / 800 gl, in the usual culture medium for these cells. DNA is added, from 3 Mg to 50 μg depending on the plasmid or the DNA fragment used. 800 cl of the mixture are placed in a conventional 4 mm electroporation cuvette. A first discharge of 750 V (1875 V / cm) is applied, with a shunt resistance of 74 n and a capacitor of 40 MF. Then apply a second discharge of 100 V (250 V / cm) with a shunt resistance of 74 n and a capacitor of 1800 MF.



  The cells are then transferred to fresh culture medium, within 30 s. By the enzymatic measurement method "CAT", one obtains a response 10 times superior compared to the state of the art.



  Example 2 Permeabilization of Yeasts

 <Desc / Clms Page number 6>

 
The procedure is analogous to Example l using the following parameters: - first discharge: 750 V to 1500 V according to the shunt 74 n strain 40 MF capacitor 2 mm cuvettes - second discharge: 100 V shunt 74 n 1800 MF capacitor
103 to 107 transformants / dng DNA are obtained, that is to say 10 to 20 times more than according to the state of the art.



  EXAMPLE 3 Permeabilization of Bacteria
We proceed in an analogous manner with the following parameters: - first discharge: voltage from 2000 to 2500 V shunt of 74 n capacitor of 40 F 2 mm cuvettes - second, discharge: voltage of 100 V shunt of 74 n capacitor of 1800 F
In the case of gram- bacteria, 106 to 10 μl transformants / jng DNA are obtained, that is to say up to 10 times more than according to the state of the art.



   In the case of gram + bacteria, 104 to 107 transformants / jng DNA are obtained, that is to say up to 100 times more.



  Example 4 Permeabilization of Protoplasts
We proceed in a similar way to the previous examples with the following parameters: - first discharge: voltage from 150 to 250 V shunt of 74 n capacitor of 40 F 4 mm cuvettes - second discharge: voltage of 50 to 100 V shunt of 74 n capacitor from 1800 F

 <Desc / Clms Page number 7>

 
101 to 103 transformants / g DNA are obtained.



   The device of the invention shown in FIG. 1 comprises a capacitor 1 associated with a charging circuit 3 and a stabilized supply 5. The voltage across the terminals of the capacitor 1 and of the stabilized supply 5 is applied to the test cell 7. Shunt resistors 9 are provided in parallel on the capacitor 1. The stabilized power supply 5 as well as the charging circuit 3 of the capacitor are controlled by a regulation circuit II which makes it possible to program the time constant of the discharge and the maximum voltage.


    

Claims (14)

REVENDICATIONS 1. Procédé de perméabilisation de membranes cellulaires par décharge électrique (électroporation) caractérisée en ce qu'on applique à une solution contenant les cellules à rendre perméables ainsi que les molécules destinées à être logées à l'intérieur des cellules, successivement au moins une décharge électrique de haut voltage et de courte durée et ensuite au moins une décharge électrique de bas voltage et de plus longue durée.  CLAIMS 1. A method of permeabilization of cell membranes by electrical discharge (electroporation) characterized in that one applies to a solution containing the cells to be made permeable as well as the molecules intended to be housed inside the cells, successively at least one discharge short duration high voltage electrical charge and then at least one longer lasting low voltage electrical discharge. 2. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que la décharge de haut voltage et de courte durée consiste en une impulsion à décroissance exponentielle, notamment obtenue par la décharge d'un condensateur.  2. Method according to claim 1 characterized in that the discharge of high voltage and short duration consists of an exponentially decreasing pulse, in particular obtained by the discharge of a capacitor. 3. Procédé selon la revendication 2 caractérisé en ce que les amplitudes atteignent 400 à 20.000 V/cm en fonction de la durée de l'impulsion et du type de cellules à traiter, la durée étant de l'ordre d'l s à 1 ms.  3. Method according to claim 2 characterized in that the amplitudes reach 400 to 20,000 V / cm depending on the duration of the pulse and the type of cells to be treated, the duration being of the order of l s to 1 ms. 4. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que la décharge de bas voltage consiste en une tension essentiellement continue, par exemple fournie par une alimentation stabilisée, de l'ordre de 10 à 400 V/cm, en fonction de la durée de l'impulsion et du type de cellules à traiter.  4. Method according to any one of the preceding claims, characterized in that the low-voltage discharge consists of an essentially continuous voltage, for example supplied by a stabilized supply, of the order of 10 to 400 V / cm, depending on the duration of the pulse and the type of cells to be treated. 5. Procédé selon la revendication 4 caractérisé en ce que la tension essentiellement continue est appliquée pendant un temps cumulé de l'ordre de 1 à 100 ms.  5. Method according to claim 4 characterized in that the essentially continuous voltage is applied for a cumulative time of the order of 1 to 100 ms. 6. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que l'impulsion de haut voltage et de courte durée est du type rectangulaire, l'impulsion à basse tension étant éventuellement une impulsion à décroissance exponentielle.  6. Method according to claim 1 characterized in that the high voltage pulse of short duration is of the rectangular type, the low voltage pulse possibly being an exponential decay pulse. 7. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que la seconde décharge consiste en un train d'ondes.  7. Method according to claim 1 characterized in that the second discharge consists of a train of waves. 8. Procédé selon la revendication 8 caractérisé en ce qu'on permute ; pendant la décharge, la polarité de la différence de potentiel aux bornes de la solution.  8. Method according to claim 8 characterized in that one swaps; during discharge, the polarity of the potential difference across the solution. 9. Dispositif pour la mise en oeuvre du procédé de l'invention caractérisé en ce qu'il comporte au moins un condensateur associé à un circuit de charge et une <Desc/Clms Page number 9> alimentation stabilisée, la tension dégagée par l'un et l'autre étant alternativement mise aux bornes d'électrodes adaptées à une cuvette connue en soi destinée à contenir la solution.  9. Device for implementing the method of the invention characterized in that it comprises at least one capacitor associated with a charging circuit and a  <Desc / Clms Page number 9>  stabilized supply, the voltage released by one and the other being alternately placed at the terminals of electrodes adapted to a well known per se intended to contain the solution. 10. Dispositif selon la revendication 9 caractérisé en ce que la tension maximum et la constante de temps de la décharge du condensateur sont programmables.  10. Device according to claim 9 characterized in that the maximum voltage and the time constant of the discharge of the capacitor are programmable. 11. Dispositif selon la revendication 9 ou 10 caractérisé en ce qu'il est équipé d'une résistance de shuntage.  11. Device according to claim 9 or 10 characterized in that it is equipped with a shunt resistor. 12. Utilisation du dispositif selon la revendication 9, 10 ou 11 pour l'introduction dans les cellules de molécules telles que l'ADN, des protéines, des anticorps, des drogues ou autres produits chimiques.  12. Use of the device according to claim 9, 10 or 11 for the introduction into the cells of molecules such as DNA, proteins, antibodies, drugs or other chemicals. 13. Utilisation du dispositif selon la revendication 9, 10 ou 11 pour l'extraction de molécules, notamment de l'ADN, de cellules.  13. Use of the device according to claim 9, 10 or 11 for the extraction of molecules, in particular DNA, from cells. 14. Utilisation du dispositif selon la revendication 9, 10 ou 11 pour la modification ou la fusion de cellules.,  14. Use of the device according to claim 9, 10 or 11 for the modification or fusion of cells.,
BE9000518A 1990-05-16 1990-05-16 METHOD AND DEVICE FOR LIVING CELLS permeabilization. BE1004328A3 (en)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
BE9000518A BE1004328A3 (en) 1990-05-16 1990-05-16 METHOD AND DEVICE FOR LIVING CELLS permeabilization.
PCT/BE1991/000030 WO1991018103A1 (en) 1990-05-16 1991-05-16 Method and device for making living cells permeable
AU77722/91A AU7772291A (en) 1990-05-16 1991-05-16 Method and device for making living cells permeable

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
BE9000518A BE1004328A3 (en) 1990-05-16 1990-05-16 METHOD AND DEVICE FOR LIVING CELLS permeabilization.

Publications (1)

Publication Number Publication Date
BE1004328A3 true BE1004328A3 (en) 1992-11-03

Family

ID=3884795

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
BE9000518A BE1004328A3 (en) 1990-05-16 1990-05-16 METHOD AND DEVICE FOR LIVING CELLS permeabilization.

Country Status (3)

Country Link
AU (1) AU7772291A (en)
BE (1) BE1004328A3 (en)
WO (1) WO1991018103A1 (en)

Families Citing this family (24)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IL108775A (en) * 1994-02-25 2003-09-17 Univ Ramot Method for efficient incorporation of molecules into cells
US5642035A (en) * 1994-06-16 1997-06-24 Bio-Rad Laboratories Transfection high-voltage controller
US5720921A (en) * 1995-03-10 1998-02-24 Entremed, Inc. Flow electroporation chamber and method
US6074605A (en) * 1995-03-10 2000-06-13 Entremed, Inc. Flow electroporation chamber and method
US6773669B1 (en) 1995-03-10 2004-08-10 Maxcyte, Inc. Flow electroporation chamber and method
US5869326A (en) * 1996-09-09 1999-02-09 Genetronics, Inc. Electroporation employing user-configured pulsing scheme
US5874268A (en) * 1996-09-23 1999-02-23 Duke University Method of introducing exogenous compounds into cells by electroporation and apparatus for same
FR2763957B1 (en) * 1997-05-29 2001-09-14 Bio Merieux METHOD FOR ISOLATING INTRACELLULAR MATERIAL AND METHOD FOR TREATING NUCLEIC MATERIAL
DE19752961C1 (en) * 1997-11-28 1999-07-15 Fraunhofer Ges Forschung Method and device for disrupting biological cells for extracting and analyzing the cell contents
US6150148A (en) * 1998-10-21 2000-11-21 Genetronics, Inc. Electroporation apparatus for control of temperature during the process
WO2001068889A2 (en) * 2000-03-16 2001-09-20 Malone Robert W Method for gene transfection and vaccination through skin using electropermeabilization
DE10031179A1 (en) * 2000-06-27 2002-01-31 Amaxa Gmbh Introducing active molecules into the nucleus of eukaryotic cells, useful for transfection and gene therapy, by applying controlled electrical pulse
DE60136379D1 (en) * 2000-07-14 2008-12-11 Archer Daniels Midland Co TRANSFORMATION SYSTEMS FOR FLAVINOGEN YEAST
US7009045B2 (en) 2000-07-14 2006-03-07 Archer-Daniels-Midland Company Transformation systems for flavinogenic yeast
US7029916B2 (en) 2001-02-21 2006-04-18 Maxcyte, Inc. Apparatus and method for flow electroporation of biological samples
DE50201240D1 (en) 2001-04-23 2004-11-11 Amaxa Gmbh BUFFER SOLUTION FOR ELECTROPORATION AND METHOD COMPREHENSIVE USE
DE10119901A1 (en) 2001-04-23 2002-10-24 Amaxa Gmbh Apparatus for electrophoretic transfer of biologically active molecules into cells comprises capacitors connected to high voltage sources, which discharge via power transistor into cuvette holding sample
DK2574662T3 (en) 2001-08-22 2021-09-20 Maxcyte Inc Method for electroporation of biological samples
DE60232995D1 (en) * 2001-12-06 2009-08-27 Biorad Lab Inc KTROPORATIONSINSTRUMENTE
CA2926068C (en) 2003-07-18 2022-05-03 Eastern Virginia Medical School Apparatus for generating electrical pulses and methods of using the same
CN102268425B (en) 2004-05-12 2015-02-25 麦克赛特股份有限公司 Methods and devices related to regulation flow electroporation chamber
EP1607484B1 (en) 2004-06-14 2014-04-02 Lonza Cologne GmbH Method and circuitry for treating biological material
US7750605B2 (en) * 2006-09-21 2010-07-06 Bio-Rad Laboratories, Inc. Controlling an electrical signal sent to a sample load using a pulse modulated resistance
EP2208778A1 (en) * 2009-01-20 2010-07-21 Lonza Cologne AG Method and device for electric processing of reaction areas

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4663292A (en) * 1984-12-21 1987-05-05 Wong Daniel T High-voltage biological macromolecule transfer and cell fusion system
US4910140A (en) * 1988-04-18 1990-03-20 Bio-Rad Laboratories, Inc. Electroporation of prokaryotic cells

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1989003426A2 (en) * 1987-10-09 1989-04-20 Baylor College Of Medicine Method of and apparatus for cell poration and cell fusion using radiofrequency electrical pulses

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4663292A (en) * 1984-12-21 1987-05-05 Wong Daniel T High-voltage biological macromolecule transfer and cell fusion system
US4910140A (en) * 1988-04-18 1990-03-20 Bio-Rad Laboratories, Inc. Electroporation of prokaryotic cells

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
TRENDS IN BIOTECHNOLOGY, vol. 6, no. 12, décembre 1988, pages 303-309, Elsevier Publications, Cambridge, GB; B.M. CHASSY et al.: "Transformation of bacteria by electroporation" *

Also Published As

Publication number Publication date
WO1991018103A1 (en) 1991-11-28
AU7772291A (en) 1991-12-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
BE1004328A3 (en) METHOD AND DEVICE FOR LIVING CELLS permeabilization.
EP1472358B1 (en) Non-linear amplitude dielectrophoresis waveform for cell fusion
WO2000063408A3 (en) Apparatus for, and method of, introducing a substance into a cell by electroporation
ATE216155T1 (en) ELECTROPORATION DEVICE WITH USER-CONFIGURATE PULSES
WO2003095019A3 (en) Dynamic electroporation apparatus and method
Maruyama et al. Introduction of foreign DNA into Chlorella saccharophila by electroporation
FR2825504A1 (en) Method of resetting a plasma display, involves holding voltage on first display lines at first voltage while second voltage on second electrode lines is reduced
TW200511174A (en) An electrophoretic display, a driving circuit for such an eletrophoretic display, a display apparatus comprising such an electrophoretic display and a method of driving such an eletrophoretic display
Onimaru et al. Electrical properties of Tetrahymena, a suitable tool for studies on membrane excitation
Iritani et al. Analysis of filtration mechanism of dead-end electro-ultrafiltration for proteinaceous solutions
EP0316903A3 (en) Plasma display apparatus
EP3467112A3 (en) Methods for transfecting nucleic acids into live cells
JPS6435871A (en) Lithium secondary cell
Bradshaw Jr et al. Design, construction, and use of an electroporator for plant protoplasts and animal cells
Solioz et al. Bacterial genetics by electric shock
Jones et al. Contraction of protoplasm. III. Cinematographic analysis of the contraction of some heterotrichs
JP2012213353A (en) Cell modification method
CN217418704U (en) Multiple synchronous sorting unit of sperm
SU1514777A1 (en) Method of producing biomass of saccharomyces cerevisial yeast
Kono et al. GFP Introduction for RAW264. 7 Cells by Combining Nanosecond High Voltage Pulse and Millisecond pulse
FR2583769A1 (en) IMPROVED CELL FUSION PROCESS
Tomov et al. Electroinduction of long-lived membrane potentials in yeasts
JPH0438477B2 (en)
CA2426698A1 (en) Method for producing proteins by electroporation
FR3134289A1 (en) Non-destructive extraction of compounds of nutritional interest from living algae

Legal Events

Date Code Title Description
RE Patent lapsed

Effective date: 20040531